Summary

一种基于液滴的单链 dna 放大术和微球 pcr 扩增法

Published: November 14, 2018
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Summary

本工作为液滴基微流体平台的制备和聚丙烯酰胺微球在微球 pcr 扩增中的应用提供了一种方法。微球 pcr 方法可以在不分离双链 dna 的情况下获得单链 dna 扩增器。

Abstract

液滴基微流体能够在微流体通道中可靠地生产均匀的微球, 从而提供所获得的微球的控制大小和形态。成功地制备了一种与丙烯酸-dna 探针共聚的微球。不同的方法, 如不对称 pcr, 外切酶消化, 和隔离条纹包覆磁珠可以用来合成单链 dna (ssdna)。然而, 这些方法不能有效地使用大量高度纯化的 ssdna。在这里, 我们描述了一个微球 pcr 协议, 详细介绍了如何通过从 pcr 反应管中移液来有效地扩增和分离 ssdna。ssdna 的扩增可作为 dna 微阵列和 dna-selex (通过指数富集的配体系统演化) 过程的潜在试剂。

Introduction

单链 dna (ssdna) 由于其 dna-dna 杂交 1,2 的固有特性, 被广泛认为是一种分子识别元素(mre)。ssdna 合成系统的发展可导致生物应用, 如 dna 微阵列3、寡糖学、诊断和基于互补相互作用4,5的综合分子传感。

迄今为止, 微尺度聚合物颗粒已成功地使用微流体器件进行了演示。在微通道环境67中, 几种微流体技术已被证明是在连续流动上产生高度均匀微球的强大技术。

在李等人的研究中.8、基于液滴的微流体平台, 用于共聚寡微球的微流体合成和 ssdna 扩增。微流体平台由两个 pdms (聚二甲基硅氧烷) 层组成: 一个上部具有用于产生微球的微流体通道网络和一个底部平面部分。其中包括三种 pdms 流体通道: 1) 用于液滴生成的流聚焦通道, 2) 混合两个溶液的蛇形通道, 以及 3) 用于微球凝固的连续聚合通道。一旦两个不混溶的流被引入到一个单一的 pdms 流体通道中, 这些流就可以通过狭窄的孔口结构来强制。通道几何形状、流速和粘度等流动行为影响微球的大小和形态。因此, 主流可分为尺度单圈9、10.

本文提供了一种详细的微球 pcr 扩增方法。首先, 介绍了一种基于液滴的微流体器件的设计过程。然后, 阐述了用随机 dna 模板互补化聚丙烯酰胺微球的方法。最后, 给出了一种扩增 ssdna 的微球 pcr 协议。

Protocol

1. pdms 微流体平台的制作 采用体积比为10:1 的基础聚合物和催化剂制备20毫升液体 pdms 预聚物。将液体 pdms 的10毫升倒在微流体网络上部的硅片上制备的 su-8 模具上。对于底部扁平部分, 在没有模具结构的硅片上倒入相同体积的液体 pdms。注: 微流体网络是在 cad 程序中设计的, 然后转换为光刻机, 以便使用典型的光刻工艺制造母版 (参见补充数字)。这位大师是由硅片11上的负光?…

Representative Results

基于聚合物液滴的微流体平台由两个 pdms 层组成 (图 1a)。三种微流体通道网络用于产生微球: 1) 流动聚焦几何, 如图 1b所示, 2) 用于混合溶液 i 和溶液 ii 的蛇形通道, 3) 微球聚合通道凝固。所有通道的高度为60微米。混合和聚合的通道长度分别为74.35 毫米和94.45 毫米。两个不混溶流体流动的微通道宽度和矿物油流动的微通道宽度?…

Discussion

dsdna 的污染物是 ssdna 扩增中的一个主要问题。在传统的不对称 pcr 扩增中, 仍然很难将 dsdna 扩增降至最低。此外, 尽管生成 ssdna 的技术改进使我们能够提高样品吞吐量的效率, 但由于其成本高、纯化产量不完整, ssdna 分离仍然存在问题。

不对称 pcr 是处理 ssdna 时最具挑战性的方法之一。这种方法应用不等数量的引物 (例如, 20:1 比率), 以产生大量的 ssdna?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

这项研究得到了题为 “农业科技发展合作研究方案” 的项目 (项目号) 的支持。pj0011642) “由大韩民国农村发展管理局提供资金。这项研究还得到了大韩民国科学、信息和通信技术和未来规划部资助的基础科学研究方案赠款 (nrf-2017ra2b4012253) 的部分支持。这项研究还得到了大韩民国贸易、工业和能源部资助的创意和工业融合教育方案赠款 (n0000717) 的支持。

Materials

liquid polydimethylsiloxane, PDMS Dow Corning Inc. Sylgard 184 Components of chip
40% Acrylamide:bis solution (19:1) Bio-rad 1610140 Components of Copolymerizable oligo-microsphere
Ammonium persulfate, APS Sigma Aldrich A3678 Hardener of acrylamide:bis solution
N,N,N′,N′-Tetramethylethylenediamine, TEMED Sigma Aldrich T9281 Catalyst of ammonium persulfate
Mineral oil Sigma Aldrich M5904 Table 1. Solution III. Component of microsphere reagents
Cy3 labeled complementary oligonucleotide probes Bioneer synthesized Table 3. Sequence information 
ssDNA acrydite labeled probe Bioneer synthesized Table 1. Solution I. Component of microsphere reagents
Tris Biosesang  T1016 Components of TE buffer, pH buffer solution
EDTA Sigma Aldrich EDS Components of TE buffer, removal of ion (Ca2+)
Ex taq Takara RR001A ssDNA amplification
Confocal microscope  Carl Zeiss LSM 510 Identifying oligonucleotides expossure of microsphere surface
Light Microscope Nikon Instruments Inc. eclipse 80i Caculating number of microspheres
T100 Thermal Cycler Bio-rad 1861096 ssDNA amplification
Hand-held Corona Treater Electro-Technic BD-20AC Laboratory Corona Treater Hydrophilic surface treatment
Hot plate As one HI-1000 heating plate for curing of liquid PDMS
Syringe pump kd Scientific 78-1100 Uniform flow of Solution I and Solution II
Compressor Kohands KC-250A Flow control of Solution III
Bright-Line Hemacytometer Sigma Aldrich Z359629 Caculating number of microspheres

Referências

  1. Smith, A. J. The use of exonuclease III for preparing single stranded DNA for use as a template in the chain terminator sequencing method. Nucleic Acids Research. 6 (3), 831-848 (1979).
  2. Sekhon, S. S., et al. Aptabody-aptatope interactions in aptablotting assays. Nanoscale. 9 (22), 7464-7475 (2017).
  3. Ng, J. K., Ajikumar, P. K., Stephanopoulos, G., Too, H. P. Profiling RNA polymerase-promoter interaction by using ssDNA-dsDNA probe on a surface addressable microarray. Chembiochem. 8 (14), 1667-1670 (2007).
  4. Sekhon, S. S., et al. Defining the copper binding aptamotif and aptamer integrated recovery platform (AIRP). Nanoscale. 9 (8), 2883-2894 (2017).
  5. Mikhailov, V. S., Bogenhagen, D. F. Effects of Xenopus laevis mitochondrial single-stranded DNA-binding protein on primer-template binding and 3′–>5′ exonuclease activity of DNA polymerase gamma. Journal of Biological Chemistry. 271 (31), 18939-18946 (1996).
  6. Yu, X., Cheng, G., Zhou, M. D., Zheng, S. Y. On-demand one-step synthesis of monodisperse functional polymeric microspheres with droplet microfluidics. Langmuir. 31 (13), 3982-3992 (2015).
  7. Akamatsu, K., Kanasugi, S., Nakao, S., Weitz, D. A. Membrane-Integrated Glass Capillary Device for Preparing Small-Sized Water-in-Oil-in-Water Emulsion Droplets. Langmuir. 31 (25), 7166-7172 (2015).
  8. Lee, S. H., et al. On-Flow Synthesis of Co-Polymerizable Oligo-Microspheres and Application in ssDNA Amplification. PLoS One. 11 (7), e0159777 (2016).
  9. Anna, S. L., Bontoux, N. B., Stone, H. A. Formation of dispersions using "flow focusing" in microchannels. Applied Physics Letters. 82 (3), 364-366 (2003).
  10. Gupta, A., Matharoo, H. S., Makkar, D., Kumar, R. Droplet formation via squeezing mechanism in a microfluidic flow-focusing device. Computers & Fluids. 100, 218-226 (2014).
  11. McDonald, J. C., Whitesides, G. M. Poly(dimethylsiloxane) as a material for fabricating microfluidic devices. Accounts of Chemical Research. 35 (7), 491-499 (2002).
  12. Haubert, K., Drier, T., Beebe, D. PDMS bonding by means of a portable, low-cost corona system. Lab on a Chip. 6 (12), 1548-1549 (2006).
  13. Olsen, T. R., et al. Integrated Microfluidic Selex Using Free Solution Electrokinetics. Journal of the Electrochemical Society. 164 (5), B3122-B3129 (2017).
  14. Dorris, D. R., et al. Oligodeoxyribonucleotide probe accessibility on a three-dimensional DNA microarray surface and the effect of hybridization time on the accuracy of expression ratios. BMC Biotechnology. 3, 6 (2003).
  15. Heiat, M., Ranjbar, R., Latifi, A. M., Rasaee, M. J., Farnoosh, G. Essential strategies to optimize asymmetric PCR conditions as a reliable method to generate large amount of ssDNA aptamers. Biotechnology and Applied Biochemistry. 64 (4), 541-548 (2017).
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Citar este artigo
Lee, S. H., Lee, H. W., Kim, D. S., Kwon, H. G., Lee, J. H., Kim, Y., Jeong, O. C., Ahn, J. A Droplet-Based Microfluidic Approach and Microsphere-PCR Amplification for Single-Stranded DNA Amplicons. J. Vis. Exp. (141), e57703, doi:10.3791/57703 (2018).

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