Summary

Un test Flow Cytometry pour mesurer le potentiel de Membrane Mitochondrial dans les Myocytes cardiaques après l’hypoxie/réoxygénation

Published: July 13, 2018
doi:

Summary

Nous présentons ici un protocole qui utilise JC-1 colorant pour évaluer le potentiel de la membrane mitochondriale des cellules après avoir été exposés à une hypoxie/réoxygénation avec ou sans agent de protection.

Abstract

Méthode rapide et efficace de reperfusion de l’artère coronaire obstruée, c’est la meilleure stratégie pour diminuer la taille de l’infarctus du myocarde chez les patients avec un segment ST élevée d’infarctus du myocarde. Toutefois, reperfusion en soi peut entraîner en outre du cardiomyocyte, un phénomène appelé lésion de reperfusion. L’ouverture de la pore de transition de perméabilité mitochondriale (mPTP), avec la diminution du potentiel membranaire mitochondrial (MMP), ou la dépolarisation mitochondriale, est universellement reconnue comme la dernière étape de la lésion de reperfusion et est responsable mitochondriale et du cardiomyocyte. JC-1 est un colorant cationique lipophile qui s’accumule dans les mitochondries selon la valeur de MMP. Plus le PSM est, plus JC-1 s’accumule dans les mitochondries. Les quantités croissantes de JC-1 dans les mitochondries peuvent se traduire par un changement de d’émission de fluorescence du vert (~ 530 nm) au rouge (~ 590 nm). Par conséquent, la réduction du ratio d’intensité de la fluorescence rouge/vert peut indiquer la dépolarisation des mitochondries. Ici, nous prenons le parti de JC-1 pour mesurer les MMP, ou l’ouverture du mPTP dans les myocytes cardiaques humaines après l’hypoxie/réoxygénation, détectée par cytométrie en flux.

Introduction

Maladie coronarienne est la principale cause de décès dans le monde. Le traitement de choix pour réduire une lésion ischémique et de limiter la taille de l’infarctus chez les patients avec segment ST élevé l’infarctus du myocarde est une reperfusion myocardique en temps opportun et efficace via une intervention coronarienne percutanée primaire (PCI)1, 2. Toutefois, la reperfusion provoque des dégâts supplémentaires, ce qui peuvent représenter jusqu’à 30 pour cent de la taille finale infarctus3. Il est universellement reconnu que le pore de transition de perméabilité mitochondriale (mPTP) n’est pas seulement central dans les mitochondries des dommages et la mort cellulaire durant l’ischémie/reperfusion (I / R), mais est aussi une cible convergente de cardioprotecteurs signalisation4 , 5. comme l’ouverture du mPTP entraînerait une dépolarisation de la membrane mitochondriale interne potentielle (MMP)4, nous avons détecté des PFMP ouverture utilisant le 5, 5′, 6, 6′-tétrachloro-1, 1′, 3, test de tétraéthyle-3′-imidacarbocyanineiodide (JC-1).

L’analyse de JC-1 est une méthode de cytofluorométrique qui est tant qualitatives que quantitatives, et elle a été validée plus loin en analysant les MMP au niveau d’une mitochondrie unique6. JC-1 existe sous une forme agrégée, ce qui donne un rouge aux émissions couleur orange (590 ± 17,5 nm) dans la matrice des mitochondries avec MMP normale ; avec la perte de MMP, JC-1 est converti en la forme monomère qui donne une fluorescence verte avec une émission de 530 nm ± 15. Par conséquent, une diminution du ratio d’intensité de fluorescence rouge/vert pourrait indiquer la réduction de MMP dans des conditions telles que l’ischémie/reperfusion (I / R).

En plus de JC-1, MMP a également été étudié avec membrane perméable cations lipophiles comme la Rhodamine 123 et 3, l’iodure de 3′-dihexyloxadicarbocyanine [DiOC6(3)]. Toutefois, par rapport à ces deux sondes, JC-1 est plus fiable pour l’analyse des MMP. La rhodamine 123 a une sensibilité relativement médiocre (surtout en trempe mode7,,8) et la spécificité médiocre. Le changement dans la rhodamine 123 est parfois si petit qu’il est difficile pour les chercheurs ou les équipements à observer/détecter. En outre, dans une seule cellule, il existe des sites de liaison différents mitochondrie pour la rhodamine 123 et donc qu’elle peut avoir différentes fluorescence émissions9. DiOC6(3) n’est pas recommandé pour la détection des MMP soit comme il réagit sensiblement à la dépolarisation de la membrane plasmique10.

Donc, ici, nous utilisons le test JC-1 pour évaluer la MMP de ces mesures après avoir été exposés à une hypoxie/réoxygénation avec ou sans agent de protection.

Protocol

1. préparation des réactifs et des Solutions Préparer les myocytes cardiaques humaines (ces mesures) milieu complet en ajoutant 25 mL de mélange de supplément de milieu de culture des myocytes dans 500 mL de milieu de culture des myocytes selon les instructions du fabricant. Conserver à 4 ° C et chaud à 37 ° C avant d’utiliser. Préparer la Solution de Tongxinluo (TXL) en dissolvant la poudre ultrafine TXL en milieu sans sérum/glucose de Dulbecco aigle modifié (DMEM) et ajuster la concent…

Representative Results

Avant d’effectuer le test de JC-1 afin d’évaluer les changements de MMP, il est fortement recommandé que des expériences effectués pour confirmer les conditions correctement définie par les chercheurs. Comme le montrent les résultats de la cytométrie en flux (Figure 2), comparées au groupe normal, hypoxie/réoxygénation (H/R) induit significativement l’apoptose de ces mesures (annexine V + /PI±), indiquant que nous avions établi un modèle ce…

Discussion

Ici, nous présentons un protocole qui utilise JC-1 colorant pour évaluer la MMP des cellules après avoir été exposés à H/R. détecté par JC-1 dosage, le PSM de cellules est indépendant des facteurs comme la taille mitochondriale, forme et densité qui peut-être influencer la fluorescence mono-composant signaux de14. Par conséquent, les résultats du test de JC-1 sont relativement fiables. En outre, il est pratique et gain de temps pour effectuer le test de JC-1. Ce test a une faible exi…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Cette étude a été financée par des subventions de The National Key Research and Development Programme of China (no 2017YFC1700503), le Programme National de la recherche fondamentale (973 Program) de la Chine (No.2012CB518602), la Fondation nationale des sciences naturelles de Chine (n ° 81370223 et no 81573957) et novateurs Research Foundation du troisième cycle of Peking Union Medical College (2016-1002-01-02).

Materials

Mitochondrial membrane potential assay kit with JC-1 Beyodtime, China C2006 In the kit there are JC-1 stock solution (200×), stock staining buffer (5×) and CCCP(10mM)
Tongxinluo ultrafine powder Shijiazhuang Yiling Pharmaceutical Co., China 071201
Annexin V-FITC/PI Kit Becton-Dickinson, USA 556547
DMEM Life Technologies, Grand Island Biological Company, USA 11966-025
Human cardiac myocyte Promocell, Germany C-12810
Myocyte Growth Medium
(SupplementMix)
Promocell, Germany C-39275
Myocyte Growth Medium (Ready-to-use) Promocell, Germany C-22070 used with Myocyte Growth Medium SupplementMix
GENbox BioMérieux, Marcy l’Etoile, France 96127 2.5L
Catalyst (AnaeroPack) MITSUBISHI GAS CHEMICAL COMPANY, INC. , Japan  C-1
Anaerobic indicator BioMérieux, Marcy l’Etoile, France 96118
Flow cytometer Becton-Dickinson, USA FACSAria 2
BD FACSDiva Software Becton-Dickinson, USA Version8.0.1
Sample tube Corning science, USA 352054 12*75mm
PBS Hyclone, USA SH30256.01

Referências

  1. Anderson, J. L., Morrow, D. A. Acute Myocardial Infarction. New England Journal of Medicine. 376 (21), 2053-2064 (2017).
  2. Ibanez, B., et al. ESC Guidelines for the management of acute myocardial infarction in patients presenting with ST-segment elevation: The Task Force for the management of acute myocardial infarction in patients presenting with ST-segment elevation of the European Society of Cardiology (ESC). European Heart Journal. 39 (2), 119-177 (2017).
  3. Yellon, D. M., Hausenloy, D. J. Myocardial reperfusion injury. New England Journal of Medicine. 357 (11), 1121-1135 (2007).
  4. Ong, S. B., Samangouei, P., Kalkhoran, S. B., Hausenloy, D. J. The mitochondrial permeability transition pore and its role in myocardial ischemia reperfusion injury. Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 78, 23-34 (2015).
  5. Heusch, G. Molecular basis of cardioprotection: signal transduction in ischemic pre-, post-, and remote conditioning. Circulation Research. 116 (4), 674-699 (2015).
  6. Cossarizza, A., Ceccarelli, D., Masini, A. Functional heterogeneity of an isolated mitochondrial population revealed by cytofluorometric analysis at the single organelle level. Experimental Cell Research. 222 (1), 84-94 (1996).
  7. Ward, M. W., Rego, A. C., Frenguelli, B. G., Nicholls, D. G. Mitochondrial membrane potential and glutamate excitotoxicity in cultured cerebellar granule cells. Journal of Neuroscience. 20 (19), 7208-7219 (2000).
  8. Perry, S. W., Norman, J. P., Barbieri, J., Brown, E. B., Gelbard, H. A. Mitochondrial membrane potential probes and the proton gradient: a practical usage guide. Biotechniques. 50 (2), 98-115 (2011).
  9. Cossarizza, A., Salvioli, S. Flow cytometric analysis of mitochondrial membrane potential using JC-1. Current Protocols in Cytometry. , 14 (2001).
  10. Salvioli, S., Ardizzoni, A., Franceschi, C., Cossarizza, A. JC-1, but not DiOC6(3) or rhodamine 123, is a reliable fluorescent probe to assess delta psi changes in intact cells: implications for studies on mitochondrial functionality during apoptosis. FEBS Letters. 411 (1), 77-82 (1997).
  11. Chen, G. H., et al. Inhibition of miR-128-3p by Tongxinluo Protects Human Cardiomyocytes from Ischemia/reperfusion Injury via Upregulation of p70s6k1/p-p70s6k1. Frontiers in Pharmacology. 8, 775 (2017).
  12. Cui, H., et al. Induction of autophagy by Tongxinluo through the MEK/ERK pathway protects human cardiac microvascular endothelial cells from hypoxia/reoxygenation injury. Journal of Cardiovascular Pharmacology. 64 (2), 180-190 (2014).
  13. Chen, J., et al. Lysophosphatidic acid protects mesenchymal stem cells against hypoxia and serum deprivation-induced apoptosis. Stem Cells. 26 (1), 135-145 (2008).
  14. Chazotte, B. Labeling mitochondria with JC-1. Cold Spring Harbor Protocols. (9), (2011).
  15. Pravdic, D., et al. Anesthetic-induced preconditioning delays opening of mitochondrial permeability transition pore via protein Kinase C-epsilon-mediated pathway. Anesthesiology. 111 (2), 267-274 (2009).
  16. Wu, Y., et al. Suppression of Excessive Histone Deacetylases Activity in Diabetic Hearts Attenuates Myocardial Ischemia/Reperfusion Injury via Mitochondria Apoptosis Pathway. Journal of Diabetes Research. 2017, 8208065 (2017).
  17. Qiu, Y., et al. Curcumin-induced melanoma cell death is associated with mitochondrial permeability transition pore (mPTP) opening. Biochemical and Biophysical Research Communications. 448 (1), 15-21 (2014).
  18. Zhen, Y. F., et al. P53 dependent mitochondrial permeability transition pore opening is required for dexamethasone-induced death of osteoblasts. Journal of Cell Physiology. 229 (10), 1475-1483 (2014).
  19. Nazarewicz, R. R., Dikalova, A. E., Bikineyeva, A., Dikalov, S. I. Nox2 as a potential target of mitochondrial superoxide and its role in endothelial oxidative stress. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 305 (8), H1131-H1140 (2013).
  20. Wang, T., Zhang, Z. X., Xu, Y. J. Effect of mitochondrial KATP channel on voltage-gated K+ channel in 24 hour-hypoxic human pulmonary artery smooth muscle cells. Chinese Medical Journal (Engl). 118 (1), 12-19 (2005).
  21. Kuter, N., Aysit-Altuncu, N., Ozturk, G., Ozek, E. The Neuroprotective Effects of Hypothermia on Bilirubin-Induced Neurotoxicity in vitro. Neonatology. 113 (4), 360-365 (2018).
  22. Zheng, Y. Y., Wang, M., Shu, X. B., Zheng, P. Y., Ji, G. Autophagy activation by Jiang Zhi Granule protects against metabolic stress-induced hepatocyte injury. World Journal of Gastroenterology. 24 (9), 992-1003 (2018).
  23. El Gamal, H., Eid, A. H., Munusamy, S. Renoprotective Effects of Aldose Reductase Inhibitor Epalrestat against High Glucose-Induced Cellular Injury. Biomed Research International. 2017, 5903105 (2017).
  24. Renault, T. T., Luna-Vargas, M. P., Chipuk, J. E. Mouse Liver Mitochondria Isolation, Size Fractionation, and Real-time MOMP Measurement. Bio-Protocols. 6 (15), (2016).
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Citar este artigo
Chen, G., Yang, Y., Xu, C., Gao, S. A Flow Cytometry-based Assay for Measuring Mitochondrial Membrane Potential in Cardiac Myocytes After Hypoxia/Reoxygenation. J. Vis. Exp. (137), e57725, doi:10.3791/57725 (2018).

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