Summary

Genetisk analyse af arvelige Transthyretin Ala97Ser vedrørende amyloidose

Published: June 09, 2018
doi:

Summary

Vi præsenterer her, en protokol for at bekræfte tilstedeværelsen af punkt mutation til diagnosticering af arvelige transthyretin amyloidose, ved hjælp af Ala97Ser, den mest almindelige endemiske mutation i Taiwan, som et eksempel.

Abstract

Genetiske test er den mest pålidelige test for arvelige transthyretin relaterede amyloidose og skal udføres i de fleste tilfælde af transthyretin amyloidose (ATTR). ATTR er en sjælden men alvorlig sygdom med heterogene fænotyper; Derfor, diagnosen er undertiden forsinkes. Med stigende opmærksomhed og bredere anerkendelse på tidlige manifestationer af ATTR samt nye behandlinger, relevante diagnostiske undersøgelser, herunder transthyretin (TTR) genetiske test for at bekræfte typerne og varianter af ATTR er derfor grundlæggende at forbedre prognosen. Genetiske analyser med polymerase kædereaktion (PCR) metoder bekræfte tilstedeværelsen af TTR punktmutationer langt hurtigere og sikrere end konventionelle metoder som sydlige skamplet. Heri, vise vi genetisk bekræftelse af ATTR Ala97Ser mutation, den mest almindelige endemiske mutation i Taiwan. Protokollen omfatter fire hovedtrin: indsamling fuldblod modellen, DNA-ekstraktion, genetisk analyse af alle fire TTR exons med PCR, og DNA-sekventering.

Introduction

Transthyretin (TTR) amyloidose (ATTR) er den mest almindelige form for arvelig Systemisk amyloidose1, og kan være forårsaget af en autosomal overvejende nedarvede mutation i transthyretin (TTR) gen2. TTR mutationer destabilisere tetramert protein struktur og føre til dens dissociation i monomerer, der samler ind amyloid fibriller2. Mere end 100 amyloidogenic TTR mutationer har været rapporteret på verdensplan1. Genetiske analyser med polymerase kædereaktion (PCR) metoder bekræfte tilstedeværelsen af TTR punkt mutation og har fordele, herunder at undgå håndtering af radioaktivt mærket sonder i forhold til det sydlige skamplet3. PCR er en hurtig, nem, billig og pålidelig teknik, der er blevet anvendt på mange områder i moderne videnskaber4.

Tidlig diagnosticering af denne progressive og dødelig sygdom er udfordrende givet sin fænotypiske heterogenitet. Med stigende opmærksomhed og bredere anerkendelse på de tidlige manifestationer af ATTR samt de nye behandlinger5, er relevante diagnostiske undersøgelser herunder TTR genetiske test derfor kritisk grundlæggende at forbedre prognose. Desuden forskellige mutationer er forbundet med forskellige penetrans af træk, symptomdebut, mønstre af progression, sygdommens sværhedsgrad, median overlevelse, effekten af levertransplantation, eller TTR stabilisatorer2,6, og varierende grader af neurologisk og Kardiologisk engagement, som har store konsekvenser for genetisk rådgivning7,8,9. Desuden en meget nøjagtig genetisk test er det eneste værktøj, der adskiller de to forskellige typer af ATTR: arvelig (mutant) og vildtype (ikke-mutant form, senil Systemisk amyloidose, SSA)7. Det er bydende nødvendigt at bekræfte slags ATTR, fordi behandlingsformer varierer meget2. Derfor er der en voksende nødvendighed at beskrive trinvis protokollen af TTR genetiske test.

Den molekylære tilgang til at påvise mutationen vil blive illustreret ved hjælp af Ala97Ser, den mest almindelige endemiske mutation i Taiwan, som et eksempel. Ændringer i DNA ekstraktionstrinet reducere mængden af de tre løsninger anvendes og giver en tilstrækkelig mængde af DNA. I denne protokol, alle fire TTR exons blev analyseret, mens regioner herunder 5′ opstrøms, 3′ nedstrøms, initiativtagere, introns, og utranslaterede regioner (UTR) var ikke sekventeret.

Protocol

Afprøvning udføres i laboratoriet blev gennemført i overensstemmelse med kravene i den kliniske laboratorium forbedring ændringsforslag (CLIA) i 1988, de forordninger, der er godkendt af den institutionelle Review Board af Chang Gung Memorial Hospital og Universitet (licens nummer 100 – 4470A3 og 104-2462A3). Informeret samtykke blev opnået fra alle patienter. 1. blod prøvetagning Indsamle fuldblods til kommercielt tilgængelige EDTA-behandlede rør. Bland forsigtigt og gemme b…

Representative Results

Agarosen gelelektroforese af to patienter og en sund individuelle afslørede bands af de forventede størrelser, herunder en 454 bp PCR produkt til exon 4 af TTR gen (figur 1). Figur 1 . Gelelektroforese skildrer PCR forstærket TTR gen. Normal: en sund person. Lane M: 1…

Discussion

Der er to kritiske trin i protokollen. Først, for at have tilstrækkeligt antal hvide blodlegemer, et hemodiluted eksemplar bør undgås11. Andet, anvendelsen af passende PCR primere er grundlæggende at opnå pålidelige resultater12. Vi brugte Primer-BLAST webværktøj til at designe primere4,13; et minimum af 40 basepar på hver side af de fire TTR exons skal dækkes. Vi kører også BLAST på NCBI at kontroller…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vil gerne takke Miss Shin-sjov Wu for hendes hjælp i eksperimenter. Denne undersøgelse blev støttet af en bevilling fra Chang Gung Medical Research Program (CMRPG3C0371, CMRPG3C0372, CMRPG3C0373) og IRB 100-4470A3, 104-2462A3, Taiwan.

Materials

EDTA-treated tubes BD
DNA Extraction Kit Stratagen 200600
NanoDrop ND2000 spectrophotometer  Thermo Fisher Scientific NanoDrop 2000
Delicate Task Wipers Kimberly-Clark Kimtech Science Kimwipes
AmpliTaq Gold 360 DNA Polymerase kit Applied Biosystems 4398823
TTR gene intronic primers  Exon1 F: 5’-TCAGATTGGCAGGGATAAGC-3’
Exon1 R: 5’-GCAAAGCTGGAAGGAGTCAC-3’
Exon2 F: 5’-TCTTGTTTCGCTCCAGATTTC-3’
Exon2 R: 5’-TCTACCAAGTGAGGGGCAAA-3’
Exon3 F: 5’-GTGTTAGTTGGTGGGGGTGT-3’
Exon3 R: 5’-TGAGTAAAACTGTGCATTTCCTG-3’
Exon4 F: 5’-GACTTCCGGTGGTCAGTCAT-3’
Exon4 R: 5’-GCGTTCTGCCCAGATACTTT-3’
thermocycler Applied Biosystems GeneAmp PCR System 9700
electrophoresis cell  ADVANCE Mupid-2plus
DNA ladder Protech PT-M1-100
dye BioLabs B7021
AlphaImager EC Alpha Innotech AlphaImager EC
automatic sequencer  Applied Biosystems 3730xl DNA Analyzer

Referências

  1. Planté-Bordeneuve, V., Said, G. Familial amyloid polyneuropathy. The Lancet Neurology. 10 (12), 1086-1097 (2011).
  2. Planté-Bordeneuve, V., et al. Long-term treatment of transthyretin familial amyloid polyneuropathy with tafamidis: a clinical and neurophysiological study. Journal of Neurology. 264 (2), 268-276 (2017).
  3. Nichols, W. C., Benson, M. D. Hereditary amyloidosis: detection of variant prealbumin genes by restriction enzyme analysis of amplified genomic DNA sequences. Clinical Genetics. 37 (1), 44-53 (1990).
  4. Lorenz, T. C. Polymerase Chain Reaction: Basic Protocol Plus Troubleshooting and Optimization Strategies. Journal of Visualized Experiments. (63), e3998 (2012).
  5. Hsu, H. C., et al. Phenotypic expressions of hereditary Transthyretin Ala97Ser related Amyloidosis (ATTR) in Taiwanese. BMC Neurology. 17 (1), 178 (2017).
  6. Barroso, F. A., et al. Long-term safety and efficacy of tafamidis for the treatment of hereditary transthyretin amyloid polyneuropathy: results up to 6 years. Amyloid. 24 (3), 194-204 (2017).
  7. Rapezzi, C., et al. Disease profile and differential diagnosis of hereditary transthyretin-related amyloidosis with exclusively cardiac phenotype: an Italian perspective. European Heart Journal. 34 (7), 520-528 (2013).
  8. Mariani, L. L., et al. Genotype-phenotype correlation and course of transthyretin familial amyloid polyneuropathies in France. Annals of Neurology. 78 (6), 901-916 (2015).
  9. Hammarström, P., Jiang, X., Hurshman, A. R., Powers, E. T., Kelly, J. W. Sequence-dependent denaturation energetics: A major determinant in amyloid disease diversity. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 99, 16427-16432 (2002).
  10. Johnson, M., Zaretskaya, I., Raytselis, Y., Merezhuk, Y., McGinnis, S., Madden, T. L. NCBI BLAST: a better web interface. Nucleic Acids Research. 36, 5-9 (2008).
  11. Fox, A. J., et al. Next generation sequencing for the detection of actionable mutations in solid and liquid tumors. Journal of Visualized Experiments. (115), (2016).
  12. Date, Y., Nakazato, M., Kangawa, K., Shirieda, K., Fujimoto, T., Matsukura, S. Detection of three transthyretin gene mutations in familial amyloidotic polyneuropathy by analysis of DNA extracted from formalin-fixed and paraffin-embedded tissues. Journal of the Neurological Sciences. 150 (2), 143-148 (1997).
  13. Ye, J., Coulouris, G., Zaretskaya, I., Cutcutache, I., Rozen, S., Madden, T. L. Primer-BLAST: a tool to design target-specific primers for polymerase chain reaction. BMC Bioinformatics. 13, 134 (2012).
  14. Green, M. R., Sambrook, J. . Molecular cloning: A laboratory manual. , (2012).
  15. Buckingham, L., Flaws, M. L. . Molecular diagnostics: Fundamentals, methods, and clinical applications. , (2012).
  16. Tan, S. C., Yiap, B. C. DNA, RNA, and Protein Extraction: The Past and The Present. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2009, (2009).
  17. Rapezzi, C., et al. Systemic cardiac amyloidoses: disease profiles and clinical courses of the 3 main types. Circulation. 120 (13), 1203-1212 (2009).
  18. Gertz, M. A., Dispenzieri, A., Sher, T. Pathophysiology and treatment of cardiac amyloidosis. Nature Reviews Cardiology. 12 (2), 91-102 (2015).
  19. Vrana, J. A., et al. Clinical diagnosis and typing of systemic amyloidosis in subcutaneous fat aspirates by mass spectrometry-based proteomics. Haematologica. 99 (7), 1239-1247 (2014).
  20. Nakamura, M., et al. Identification of a new transthyretin variant (Ile49) in familial amyloidotic polyneuropathy using electrospray ionization mass spectrometry and nonisotopic RNase cleavage assay. Human Heredity. 49 (4), 186-189 (1999).
  21. Ueda, M., Ando, Y. Recent advances in transthyretin amyloidosis therapy. Translational Neurodegeneration. 3, 19 (2014).
  22. Brown, E. E., et al. Genetic testing improves identification of transthyretin amyloid (ATTR) subtype in cardiac amyloidosis. Amyloid. 24 (2), 92-95 (2017).
  23. Tasaki, M., et al. Rapid detection of wild-type and mutated transthyretins. Annals of Clinical Biochemistry. 53 (4), 508-510 (2015).
  24. Plante-Bordeneuve, V., et al. Diagnostic pitfalls in sporadic transthyretin familial amyloid polyneuropathy (TTR-FAP). Neurology. 69 (7), 693-698 (2007).
  25. Hsu, J. L., et al. A prospective, observational study of patients with uncommon distal symmetric painful small-fiber neuropathy. PLoS ONE. 12 (9), 0183948 (2017).
  26. Salvi, F., Pastorelli, F., Plasmati, R., Bartolomei, I., Dall’Osso, D., Rapezzi, C. Genotypic and phenotypic correlation in an Italian population of hereditary amyloidosis TTR-related (HA-TTR): Clinical and neurophysiological aids to diagnosis and some reflections on misdiagnosis. Amyloid. 19, 58-60 (2012).
  27. Suhr, O. B., Lundgren, E., Westermark, P. One mutation, two distinct disease variants: Unravelling the impact of transthyretin amyloid fibril composition. Journal of Internal Medicine. 281 (4), 337-347 (2017).
  28. Vilà-Rico, M., et al. Quantitative analysis of post-translational modifications in human serum transthyretin associated with familial amyloidotic polyneuropathy by targeted LC-MS and intact protein MS. Journal of Proteomics. 127, 234-246 (2015).
check_url/pt/57743?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Hsu, H., Liao, M., Hsu, J., Lee, Y., Ro, L. Genetic Analysis of Hereditary Transthyretin Ala97Ser Related Amyloidosis. J. Vis. Exp. (136), e57743, doi:10.3791/57743 (2018).

View Video