Summary

Mesure échocardiographique des paramètres diastoliques ventriculaires droits dans la souris

Published: April 27, 2019
doi:

Summary

Ici, nous décrivons et comparons deux positions pour obtenir la vue apical à quatre chambres chez les souris. Ces positions permettent la quantification de la fonction ventriculaire droite, fournissent des résultats comparables, et peuvent être utilisées de façon interchangeable.

Abstract

Le dysfonctionnement diastolique est une caractéristique proéminente du remodelage ventriculaire droit (RV) associé aux conditions de surcharge de pression. Cependant, la fonction diastolique de RV est rarement quantifiée dans les études expérimentales. Cela pourrait être dû à des difficultés techniques dans la visualisation du RV dans la vue apaïque à quatre chambres chez les rongeurs. Ici nous décrivons deux positions facilitant la visualisation de la vue aconique de quatre chambres chez les souris pour évaluer la fonction diastolique de RV.

La vue apical à quatre chambres est activée en inclinant la plate-forme de fixation de la souris vers la gauche et caudally (LeCa) ou vers la droite et cranially (RiCr). Les deux positions fournissent des images de qualité comparable. Les résultats de la fonction diastolique DE RV obtenus à partir de deux positions ne sont pas sensiblement différents. Les deux positions sont relativement faciles à exécuter. Ce protocole peut être incorporé dans les protocoles publiés et permet des enquêtes détaillées de la fonction RV.

Introduction

Le dysfonctionnement diastolique est une caractéristique proéminente du remodelage ventriculaire droit (RV)1 et est associé aux conditions de pression-surcharge2. L’échocardiographie (EchoCG) peut être utilisée pour la caractérisation du dysfonctionnement diastolique DE RV3,4. En dépit des développements récents dans l’échocardiographie de petit animal, des mesures des paramètres diastoliques sont rarement rapportées. En revanche, les mesures de la fonction systolique sont largement utilisées pour la caractérisation des souris transgéniques5, ainsi que pour l’évaluation d’une réponse de traitement6.

Cela peut s’expliquer en partie par les difficultés dans la mesure des paramètres diastoliques de la vue apaïque à quatre chambres. La visualisation du cœur dans cette position peut être facilitée en inclinant la plate-forme de fixation LeCa ou RiCr. Même si ces manipulations sont utilisées, les échocardiographes ne les rapportent pas dans leurs manuscrits4,7. Par conséquent, il n’est pas clair si ces manipulations donnent des résultats comparables. En outre, ceci empêche également un développement de nomenclature normalisée de cette position pour des souris.

Le but de cette étude était de décrire deux positions pour la visualisation aconique de vue à quatre chambres et de comparer leurs résultats. Pour déterminer les différences entre les deux positions, nous avons utilisé le modèle de baguage de l’artère pulmonaire de souris (PAB), dans lequel un clip de tantale conduit à une occlusion partielle de l’artère pulmonaire. Cette occlusion a comme conséquence le remodelage droit de ventricule et le dysfonctionnement. Tous les détails de l’opération PAB peuvent être trouvés dans les travaux publiés précédemment3. Des souris Sham-opérées, où le clip a été placé à côté de l’artère pulmonaire, ont été employées pour la comparaison. Des investigations d’EchoCG ont été exécutées trois semaines après opération utilisant le système d’imagerie avec une tête de balayage de 30 MHz (voir tableau des matériaux pour les deux). Nomenclature pour la description des positions et des orientations entre la souris et le faisceau d’ultrasons est utilisé comme décrit par Zhou et al.7.

Protocol

L’étude a été réalisée conformément à la réglementation nationale pour l’expérimentation animale et à la directive de l’UE 2010/63. Préparer l’équipement tel que décrit précédemment par Brittain et coll.8. 1. Préparation de la souris Obtenir des souris C57Bl6/J mâles de 12 à 13 semaines et les loger avec un cycle de lumière/obscurité de 12 h, à une température ambiante constante, et avec un accès ad libitum à la chow et à l’ea…

Representative Results

La vue apicale à quatre chambres est difficile à obtenir chez la souris. Par conséquent, les manipulations de la position de la plate-forme peuvent aider à visualiser le cœur en changeant sa position dans le thorax. L’inclinaison de la plate-forme vers la gauche et vers la droite a amélioré la fenêtre acoustique et fourni des images de qualité comparable en mode B (Figure 1). Après avoir obtenu les positions correctes, les mesures dans les modes PW,…

Discussion

La fonction et l’évaluation de dimension échocardiographiques de RV des positions parasternal ont été bien décrites. En revanche, la position apanique dans l’échocardiographie de souris a été négligée en partie en raison des difficultés techniques. À l’aide d’une position horizontale de la plate-forme, il est difficile d’obtenir une fenêtre acoustique suffisante pour l’imagerie de vue à quatre chambres. Pour faciliter l’imagerie de cette position, la plate-forme peut être inclinée vers la gauche, une mani…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

L’étude a été financée par l’Institut Ludwig Boltzmann pour la recherche vasculaire pulmonaire.

Materials

RMV-707B scan head 30 MHz Visual Sonics P/N 11459 mouse scan head
VisualSonics Vevo 770® High-Resolution Imaging System Visual Sonics 770-230 ultrasound machine
Veet depilation creme for sensitive skin Veet 07768307 
Surgical tape Durapore 3M 3M Deutschland GmbH 1538-1 for fixation
Askina Brauncel cellulose swabs B.Braun 9051015
Aquasonic ultrasound gel Parker Laboratories Inc. BT025-0037L
Electrode Gel GE medical systems information technologies Inc. 2034731-002 apply to extremities for countinous ECG and heart rate monitoring
Thermasonic gel warmer Parker Laboratories Inc. 82-04-20 to reduce heat loss warm up the ultrasound gel before use

Referências

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Citar este artigo
Egemnazarov, B., Kwapiszewska, G., Marsh, L. M. Echocardiographic Measurement of Right Ventricular Diastolic Parameters in Mouse. J. Vis. Exp. (146), e58021, doi:10.3791/58021 (2019).

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