Målet med protokollen er å optimalisere parameterne brudd generasjon å gi konsekvent frakturer. Denne protokollen står for variasjoner i bein størrelse og morfologi som finnes mellom dyr. I tillegg er en kostnadseffektiv, justerbar brudd apparater beskrevet.
Pålitelig generering av konsekvent stabilisert frakturer i dyremodeller er viktig for å forstå biologi bein regenerasjon og utvikle legemiddelselskap og enheter. Imidlertid er tilgjengelige skade modeller plaget av inkonsekvens bortkastet dyr og ressurser og imperfektum data. For å løse dette problemet med brudd heterogenitet, er formålet med metoden beskrevet her å optimalisere brudd generasjon parametere gjelder for hvert dyr og gir en konsekvent brudd plassering og mønster. Denne protokollen står for bein størrelse og morfologi som finnes mellom musen stammer og kan tilpasses til å generere konsistent frakturer i andre arter, som rotte. I tillegg er en kostnadseffektiv, justerbar brudd apparater beskrevet. Sammenlignet med dagens stabilisert brudd teknikker, viser optimalisering protokollen og nye brudd apparatet økt konsistens i stabilisert brudd mønstre og steder. Bruke optimalisert parametere gjelder for eksempel type, beskrevet protokollen øker presisjonen for indusert traumer, minimere den frakturstedet heterogenitet vanligvis observert i lukket brudd generasjon prosedyrer.
Forskning på brudd healing er nødvendig å ta en stor klinisk og økonomisk problem. Hvert år over 12 millioner sprekker behandles i USA1, koster $80 milliarder pr år2. Sannsynligheten for en mannlig eller kvinnelig lidelse brudd i livet er 25% og 44%, henholdsvis3. Problemer i forbindelse med brudd healing forventes å øke med økt samtidige som befolkningen aldre. Å studere og løse dette problemet, kreves det robust modeller av brudd generasjon og stabilisering. Gnager modeller er ideell for dette formålet. De gir kliniske relevans og kan endres til adressen bestemte betingelser (dvs.flere skader, åpne, lukket, iskemiske og infiserte brudd). Replikere klinisk scenarier, er dyr brudd modeller viktig for å forstå bein biologi og utvikle legemiddelselskap og enheter. Men kan forsøk på å studere forskjellene mellom intervensjoner kompliseres av variasjon introdusert av inkonsekvent brudd generasjon. Dermed er generere reproduserbare og konsekvent lukket brudd i dyremodeller avgjørende for feltet muskel forskning.
Til tross for riktig kontrollere for potensielle emnet heterogenitet ved å sikre riktig genetisk bakgrunn, kjønn, alder og miljøforhold, produksjon av klinisk relevante konsekvent Ben skader er en viktig variabel påvirker reproduserbarhet som må kontrolleres. Statistiske sammenligninger med inkonsekvente frakturer er plaget med eksperimentelle støy og høye variasjon4; i tillegg kan brudd variasjon føre unødvendig dyr død behovet for å øke utvalgsstørrelsen eller nødvendigheten av å avlive dyrene med comminuted eller malpositioned sprekker. Formålet med metoden beskrevet her er å optimalisere brudd generasjon parametrene som er spesifikke for eksempel type og gir en konsekvent brudd plassering og mønster.
Aktuelle modeller for brudd generasjon faller inn i to hovedkategorier, hver med sine egne styrker og svakheter. Åpne-brudd (osteotomi) modeller gjennomgår kirurgi for å avsløre bein, hvoretter brudd er indusert av kutte beinet eller svekket det og deretter manuelt bryte den5,6,7,8. Fordelene med denne metoden er den direkte visualiseringen av bruddet sted og en mer konsekvent brudd plassering og mønster. Men er tilnærmingen fysiologiske og klinisk relevans og mekanisme for skade begrenset. I tillegg krever åpne metoder for brudd generasjon kirurgisk tilnærming og avslutning med lengre perioder der gnagere er utsatt for en økt risiko for smitte.
Lukkede teknikker tar mange åpne teknikkens begrensninger. Lukkede teknikker produsere frakturer bruker et eksternt anvendt blunt force traume som induserer skader bein og omkringliggende vev, mer like de sett i menneskets kliniske skader. Den vanligste metoden ble beskrevet av Bonnarens og Einhorn i 19849. De beskrevet en vektet giljotinen brukes til å formidle stumpe traumer å bryte bein uten å forårsake noen eksterne huden sår. Denne metoden er allment vedtatt for å studere effekten av genetikk10,11, farmakologisk behandling12,13,14,15, mekanikk16, 17, og fysiologi18,19,20 på bein i mus og rotter. Fordelen med lukket metoder er fysiologisk relevante frakturer, er eksperimentelle reproduserbarhet og stringens begrenset av brudd heterogenitet. Inkonsekvent brudd generasjon resulterer i en begrenset mellom-gruppe differensiering, tapt prøver og en økning i dyr måtte oppnå statistiske betydning.
Kontrollere variasjon i brudd generasjon og stabilisering er viktig å gi meningsfulle resultater. For å riktig studere biologi brudd reparasjon, er en enkel men robust brudd modell nødvendig. Modellen skal oversettbare til gnagerarter, bein typer (femur eller tibiae, for eksempel), og over variabel musen genetisk bakgrunn og indusert mutasjoner. Videre bør ideelt fremgangsmåten være teknisk enkelt og gi konsistente resultater. Til adressen brudd heterogenitet, metoden beskrevet heri er bygging av en godt kontrollerte sprekken enhet som kan brukes til å optimalisere parametrene og generere konsekvent lukket frakturer uansett alder, kjønn eller genotype.
Denne brudd optimalisering og generasjon protokollen gir forskere effektiv metode til å utlede at brudd parametere og utføre en minimal invasiv prosedyre, som produserer nøyaktig, repeterbare, tverrstilt frakturer. I tillegg oppretter denne protokollen et felles sett brudd generasjon parametere som fremmer metoden konsekvens mellom forskere. Disse parametrene kan etablering av en felles brudd database å etablere brudd standarder basert på en rekke parametere (f.eks, alder, kjønn, kjønn og genotype). En op…
The authors have nothing to disclose.
Forskning rapportert i denne publikasjonen ble støttet av nasjonalt Institutt for Arthritis og Musculoskeletal og hudsykdommer av National Institutes of Health under prisen nummer F30AR071201 og R01AR066028.
Support Subassembly | Supplementary Figure 1 | ||
Beam, Support–Jaw Section | 80/20 | 1003 x 9.00 | w/ #7042 at A, C, in Left End |
Beam, Support–Horizontal Section | 80/20 | 1002 x 14.00 | |
Beam, Support–Vertical 1 | 80/20 | 1050 x 10.50 | w/ #7042 at A in Left End and at A in Right End |
Beam, Support–Vertical 2 | 80/20 | 1010 x 10.50 | w/ #7042 at D, B in Left End and at A in Right End |
Beam, Support–Plate Mount | 80/20 | 1030 x 8.00 | w/ #7036 at Left End |
Beam, Support–Magnet | 80/20 | 1010 x 13.50 | w/ #7042 at A, C, in Right End |
Anchors (3) | 80/20 | 3392 | |
Double Anchor (3) | 80/20 | 3091 | |
Bolt Assembly (6) | 80/20 | 3386 | 1/4-20 x 3/8" |
Button Head Socket Cap Screw (6) | 80/20 | 3604 | 1/4-20 x 3/4" |
Ram Subassembly | Supplementary Figure 2 | ||
Block, Stop | Custom | Supplementary Figure 3 | |
Block, Guide | Custom | Supplementary Figure 3 | |
Rod, Ram | Custom | Supplementary Figure 4 | |
Alignment Screw | Custom | Supplementary Figure 5 | |
Plate, Mounting | Custom | Supplementary Figure 6 | |
Linear Sleeve Bearing (2) | McMaster-Carr | 8649T2 | |
Hex Nut (3) | McMaster-Carr | 92673A125 | 3/8-16 UNC |
Socket Cap Screw (8) | McMaster-Carr | 92196A108 | 4/40 x 3/8" |
Socket Cap Screw (6) | McMaster-Carr | 92196A032 | 4/40 x 1 1/8" |
Socket Cap Screw (1) | McMaster-Carr | 92196A267 | 10/32 3/8" |
Magnet Subassembly | Supplementary Figure 7 | ||
Mount, Magnet | Custom | Supplementary Figure 8 | |
Power Supply | McMaster-Carr | 70235K23 | |
Foot Switch | McMaster-Carr | 7376k2 | |
Electromagnet | McMaster-Carr | 5698k111 | |
Wire – 10 feet | McMaster-Carr | 9936k12 | |
Rod, Magnet | McMaster-Carr | 95412A566 | 1/4" Threaded Rod x 7" |
Corner Bracket (6) | 80/20 | 4108 | |
Socket Cap Screw (1) | McMaster-Carr | 92196A705 | 10/32 1 1/4" |
Hex Nut (4) | McMaster-Carr | 92673A113 | 1/4-20 UNC |
Complete Assembly | Supplementary Figure 9 | ||
Bracket, Leg Jaw (2) | Custom | Supplementary Figure 10 | |
Platform, Fracture | Custom | Supplementary Figure 11 | |
Jig, Positioning-Fracture | Custom | Supplementary Figure 12 | |
Other | |||
Pin Cutter | Medical Supplies and Equipment | 150S | |
Needles | Sigma | Z192430, Z192376 | 23g x 1.5" – mouse femur, 27g x 1.25" – mouse tibia |