Summary

Yanıt Merkezi sinir sistemi manipülasyonlar imzalat Sıçanlarda Böbrek sempatik sinir faaliyette akut değişiklikler miktarının

Published: September 11, 2018
doi:

Summary

Sempatik ve kardiyovasküler Yanıt Merkezi sinir sistemi (MSS) manipülasyonlar ölçme yöntemleri ilerleyen nörolojik için önemlidir. Bu iletişim kuralı ile ölçme ve böbrek sempatik sinir etkinliği (RSNA) (hayatta kalma olmayan) imzalat sıçanlarda akut değişiklikler miktarının bilim adamları yardımcı olmak için geliştirilmiştir.

Abstract

Böbrek sempatik sinir etkinliği (RSNA) ve ortalama arteriyel basınç kardiyovasküler ve otonomik araştırmada önemli parametreler şunlardır; Ancak, sınırlı kaynakları bilim adamları ölçme ve bu değişkenlerin analiz teknikleri yönetmenlik vardır. Bu iletişim kuralı RSNA ve imzalat sıçanlarda ortalama arter basıncı ölçüm yöntemlerini açıklar. Protokolü de merkezi sinir sistemi (MSS) manipülasyon için RSNA kayıtlar sırasında beyin erişmek için yaklaşımları içerir. RSNA kayıt tekniği ile uyumludur farmakolojik, optogenetic, veya MSS elektrik stimülasyon. Bir dedektif kısa vadeli (min h) otonomik yanıt anatomik olarak CNS çekirdeği ile ilişkilendirmek için hayatta kalma sigara deneylerde ölçtüğünüzde yararlı bir yaklaşımdır. Yaklaşım içinde rats RSNA kronik (hayatta kalma) kayıtları elde etmek için kullanılmak üzere tasarlanmamıştır. RSNA, ortalama deşarj RSNA doğrultucu ve ortalama arteriyel basınç olabilir sayılabilir ve daha fazla parametrik istatistik testleri kullanılarak analiz. Venöz erişim, ortalama arteriyel basınç telemetrically kayıt ve beyin fiksasyon gelecekteki histolojik analizler için edinme yöntemleri de makalesinde açıklanmıştır.

Introduction

Kalp-damar sisteminin otonom kontrolü hakkında önceden klinik keşifler hipertansiyon, kalp yetmezliği ve kronik böbrek hastalığı gibi hastalıkları yönetme stratejileri bilgilendirmek. Sempatik sinir sistemi ve düşük kardiyak vagus aşırı aktivite yüksek kan basıncı (tansiyon)1olarak katkıda bulunur. Kronik olarak yükseltilmiş böbrek sempatik çıkış katekoiamin salgılanmasını artırır ve kalp-damar/böbrek sistemleri2,3zararlı sonuçları ile renal kan akımı azalır. Otonomik disfonksiyon için önde gelen nörobiyolojik yolları tanımlamak için çalışmalar Rodents nasıl düzenleyen merkezi sinir sistemi (MSS) nöronlar sempatik parametreleri belirlemek için önemlidir. Böbrek sempatik sinir etkinliği (RSNA) ölçme hakkında teknik bilgiler sağlamak için bu protokolü amacı olduğunu ve BP ve yanıt CNS manipülasyonlar imzalat sıçanlarda akut sempatik değişiklikleri miktarının teknikleri anahat.

Akut (hayatta kalma olmayan) RSNA ölçümleri (h kalıcı min) bilim adamları MSS araştıracağını farmakolojik, elektrikle, ya da optogenetically içinde belirli çekirdek işlevlerini belirlemek için fareler anestezi olduğunda yararlıdır. Bu yöntemler, yalnız çekirdek, periaqueductal gri, gibi yapıları kullanarak pedunculopontine tegmentum ve rostral ventrolateral medulla nörobiyolojik yolları sempatik parametreleri4düzenleyen tanımlamak için araştırdık, 5,6,7. Bu yaklaşım araştırılması için CNS hedefler belirlemek için önemlidir otonomik disfonksiyon8,9kronik modellerinde daha fazla. Bu deneyler tamamlamak için havya, cerrahi mikroskop, stereotaksik çerçeve, elektrot amplifikatör ve ses monitör laboratuvar gerektirir. Elektriksel gürültü için katkıda bulunan etkenleri bağlı olarak laboratuvarda mevcut, cerrahi/kayıt alan RSNA kayıt elektriksel gürültü azaltmak kafes/kayış topraklama bir Faraday gerektirebilir. Beyin analizleri doku fiksasyon gerektiriyorsa, perfüzyon pompa ve duman hood gereklidir. Veriler sayısallaştırılmış ve farklı analiz seçenekleri ve telemetric sinyalleri dahil etmek için uyumlulukları ile birden çok fizyolojik yazılım/veri toplama (analog-dijital çevirici) adet4,5, kullanarak kaydedilen .

Protocol

Tüm yöntemleri açıklanan Chicago Illinois Üniversitesi’nde kurumsal hayvan bakımı Komitesi tarafından kabul edildi. 1. iki kutuplu RSNA elektrotlar oluşturun Elektrot oluşturmak için yaklaşık 18 mm uzun paslanmaz çelik tel her iki parçalar kesin. Yaklaşık 15 mm uzun Boru polietilen (PE-50) bir parça kesti. Tel tel her iki tarafın çıkıntılı bırakarak borulama, içine iki adet yem. Yalıtım tellerin uçları kaldır; 2-3 mm maruz tel bırakarak telle…

Representative Results

Şekil 1 bir örnek RSNA ve BP kaydından tedavisiydi anestezi sıçan göstermektedir. Phenylephrine bir İntravenöz enjeksiyon ortalama arteriyel basınç artışı teşvik ve baroreflex ve geçici sympathoinhibition4,6uyandırmak için kullanıldı. RSNA ölçmek için ham RSNA doğrultucu ve üst üste 10 s segmentler için Ortalama olarak; gürültü tahmin her kesiminden düşülen. <p clas…

Discussion

RSNA ölçmek için önemli adımlar şunlardır: (1) kaçınarak renal arter ve sinirler, böbrek paraspinal kas ayıran zaman germe ve sinir segment üzerinde kayıt elektrotları yerleştirirken, böbrek sinir lifleri (2) dikkatle anatomi çevreleyen doku/gemi, doku, kan veya lenf sıvısı ve (4) önlenmesi sinir böbrek sinir ve silika jel sinir-elektrot birimine madeni yağ uygulayarak kurutma üzerinden ücretsiz (3) sağlanması bu elektrot teller var. Sorun giderme için kayıt sistemi yeterince topraklı olduğ…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu çalışmada hemşirelik araştırma (K99/R00NR014369) için Ulusal Enstitüsü tarafından desteklenen bir durumdu.

Materials

Stainless steel wire A-M Systems; Sequim, WA 791000 RSNA electrode
Polyethylene (PE-50) tubing VWR; Radnor, PA 63019-048 RSNA electrode; vessel cannulation
Miniature pin connector A-M Systems; Sequim, WA 520200 RSNA electrode
Crimping tool Daniels Manufacturing Corp.; Orlando, FL M22520 RSNA electrode
Connector strip Amphenol; Clinton Township, MI 221-2653 RSNA electrode
J-B Kwik Epoxy J-B Weld, Sulphur Springs, TX 8270 RSNA electrode
Silicone Permatex; Hartford, CT 2222 RSNA electrode
Heparin sodium; Injectable (10 mL vial, 1000 U/mL) KV Veterinary Supply; David City, NE P03466 Venous line patency
Phenylephrine HCl; Injectable (1 mL vial; 10 mg/mL) ACE Surgical Supply; Brockton, MA 950-6312 Testing renal sympathoinhibition
Single-hook elastic surgical stays Harvard Apparatus; Holliston, MA 72-2595 Incision
Silk surgical tape 3M, Minneapolis, MN 1538-0 Secure surgical stays
Needles, 20 G Sigma-Aldrich; St. Louis, MO Z192554-100EA Vessel cannulation
Dumont #7 curved forceps Fine Science Tools; Foster City, CA 11274-20 Vessel cannulation
5-0 silk suture ties Braintree Scientific; Braintree, MA SUT-S 106 Vessel cannulation
Delicate hemostatic forceps Roboz Surgical Instrument Co.; Gaithersburg, MD RS-7117 Vessel cannulation and RSNA surgery
Crile Hemostatic forceps Fine Science Tools; Foster City, CA 13004-14 Needle bending
Telemetry transmitter Data Sciences International; Minneapolis, MN PA-10 Mean arterial pressure monitoring (telemetry)
Re-gel syringe Data Sciences International; Minneapolis, MN 276-0038-001 Transmitter reuse (telemetry)
Disposable pressure transducer Transpac; San Clemente, CA MI-1224 Mean arterial pressure monitoring
Clear-Cuff pressure infuser MILA International Inc.; Florence, KY 2281339 Mean arterial pressure monitoring
Vessel cannulation forceps Fine Science Tools; Foster City, CA 00574-11 Catheter insertion
Black monofilament nylon 4-0 suture on reverse cutting needle McKesson Medical-Surgical; San Francisco, CA S661GX Secure telemetry transmitter
Telemetry receiver Data Sciences International; Minneapolis, MN RPC-1 Mean arterial pressure monitoring (telemetry)
LabChart Pro (software), PowerLab (acquisition hardware) AD Instruments; Colorado Springs, CO ML846, MX2 matrix 2.0 (Compatible with Data Science International telemetry) 3 options for software/acquisition hardware
SciWorks (software), DataWave (acquisition hardware) DataWave Technologies, Loveland, CO N/A
Spike 2 (software), Micro1401-3 Cambridge Electronic Design Ltd., London UK 1401-3
Micro-drill Roboz Surgical Instrument Co.; Gaithersburg, MD RS-6300 CNS surgery
Stereotaxic surgery frame Stoelting; Wood Dale, IL 51600 CNS surgery
Microelectrode amplifier with 10X pre-amplifier A-M Systems; Sequim, WA 1800-2 RSNA recording
Retractors Fine Science Tools; Foster City, CA 17009-07 RSNA surgery
Micro-dissecting tweezers Fine Science Tools; Foster City, CA 11251-10 RSNA surgery
Micro-hook Fine Science Tools; Foster City, CA 10064-14 RSNA surgery
Mineral oil Fisher Scientific; Waltham, MA 8042-47-5 RSNA surgery
Audio monitor A-M Systems; Sequim, WA 3300 RSNA surgery
Silica gel Wacker, Munchen; Germany RT601A-B RSNA surgery
Electrical clips Tyco Electronics; Schaffhausen, Switzerland EB0283-000 Grounding or securing perfusion needle
Bonn scissors, straight/sharp points Roboz Surgical Instrument Co; Gaithersburg, MD RS-5840 Perfusion
Gavage needle Harvard Apparatus; Holliston, MA 75-0286 Perfusion
Masterflex perfusion pump Cole-Parmer; Vernon Hills, IL 7524-10 Perfusion
Masterflex platinum-cured silicone tubing Cole-Parmer; Vernon Hills, IL 96410-15 Perfusion
Formalin (10% buffered solution; 4 L) Sigma-Aldrich; St. Louis, MO HT501128 Perfusion
Sucrose Sigma-Aldrich; St. Louis, MO S0389 Cryoprotection

Referências

  1. Mancia, G., Grassi, G. The autonomic nervous system and hypertension. Circulation Research. 114 (11), 1804-1814 (2014).
  2. Kannan, A., Medina, R. I., Nagajothi, N., Balamuthusamy, S. Renal sympathetic nervous system and the effects of denervation on renal arteries. World Journal of Cardiology. 6 (8), 814-823 (2014).
  3. Johns, E. J., Kopp, U. C., DiBona, G. F. Neural control of renal function. Comprehensive Physiology. 1 (2), 767 (2011).
  4. Fink, A. M., Dean, C., Piano, M. R., Carley, D. W. The pedunculopontine tegmentum controls renal sympathetic nerve activity and cardiorespiratory activities in Nembutal-anesthetized rats. PLoS One. 12 (11), e0187956 (2017).
  5. Dean, C. Endocannabinoid modulation of sympathetic and cardiovascular responses to acute stress in the periaqueductal gray of the rat. American Journal of Physiology, Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. 300 (3), R771-R779 (2011).
  6. Seagard, J. L., et al. Anandamide content and interaction of endocannabinoid/GABA modulatory effects in the NTS on baroreflex-evoked sympathoinhibition. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 286 (3), H992-H1000 (2004).
  7. Ferreira, C. B., Cravo, S. L., Stocker, S. D. Airway obstruction produces widespread sympathoexcitation: Role of hypoxia, carotid chemoreceptors, and NTS neurotransmission. Physiological Reports. 6 (3), (2018).
  8. Stocker, S. D., Muntzel, M. S. Recording sympathetic nerve activity chronically in rats: Surgery techniques, assessment of nerve activity, and quantification. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 305 (10), H1407-H1416 (2013).
  9. Miki, K., Kosho, A., Hayashida, Y. Method for continuous measurements of renal sympathetic nerve activity and cardiovascular function during exercise in rats. Experimental Physiology. 87 (1), 33-39 (2002).
  10. Huetteman, D. A., Bogie, H. Direct blood pressure monitoring in laboratory rodents via implantable radio telemetry. Methods in Molecular Biology. 573, 57-73 (2009).
  11. Jespersen, B., Knupp, L., Northcott, C. A. Femoral arterial and venous catheterization for blood sampling, drug administration and conscious blood pressure and heart rate measurements. Journal of Visualized Experiments. (59), 3496 (2012).
  12. Paxinos, G., Watson, C. . The rat brain in stereotaxic coordinates. , (2014).
  13. Scislo, T. J., Augustyniak, R. A., O’Leary, D. S. Differential arterial baroreflex regulation of renal, lumbar, and adrenal sympathetic nerve activity in the rat. American Journal of Physiology. 275, R995-R1002 (1998).
  14. Kopp, U. C., Jones, S. Y., DiBona, G. F. Afferent renal denervation impairs baroreflex control of efferent renal sympathetic nerve activity. American Journal of Physiology, Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. 295 (6), R1882-R1890 (2008).
  15. Guild, S. J., et al. Quantifying sympathetic nerve activity: problems, pitfalls and the need for standardization. Experimental Physiology. 95 (1), 41-50 (2010).
  16. Stocker, S. D., Hunwick, K. J., Toney, G. M. Hypothalamic paraventricular nucleus differentially supports lumbar and renal sympathetic outflow in water-deprived rats. Journal of Physiology. 15 (563 Pt 1), 249-263 (2005).
  17. Stocker, S. D., Gordon, K. W. J. Glutamate receptors in the hypothalamic paraventricular nucleus contribute to insulin-induced sympathoexcitation. Neurophysiology. 113 (5), 1302-1309 (2015).
  18. Saponjic, J., Radulovacki, M., Carley, D. W. Injection of glutamate into the pedunculopontine tegmental nuclei of anesthetized rat causes respiratory dysrhythmia and alters EEG and EMG power. Sleep and Breathing. 9 (2), 82-91 (2005).
  19. DiBona, G. F., Jones, S. Y. Dynamic analysis of renal nerve activity responses to baroreceptor denervation in hypertensive rats. Hypertension. 37 (4), 1153-1163 (2001).
  20. Kunitake, T., Kannan, H. Discharge pattern of renal sympathetic nerve activity in the conscious rat: spectral analysis of integrated activity. Journal of Neurophysiology. 84 (6), 2859-2867 (2000).
  21. Machado, B. H., Bonagamba, L. G. Microinjection of L-glutamate into the nucleus tractus solitarii increases arterial pressure in conscious rats. Brain Research. 576 (1), 131-138 (1992).
  22. Murakami, M., et al. Inhalation anesthesia is preferable for recording rat cardiac function using an electrocardiogram. Biological and Pharmaceutical Bulletin. 37 (5), 834-839 (2014).
  23. Nakamura, T., Tanida, M., Niijima, A., Hibino, H., Shen, J., Nagai, K. Auditory stimulation affects renal sympathetic nerve activity and blood pressure in rats. Neuroscience Letters. 416 (2), 107-112 (2007).
  24. Bardgett, M. E., McCarthy, J. J., Stocker, S. D. Glutamatergic receptor activation in the rostral ventrolateral medulla mediates the sympathoexcitatory response to hyperinsulinemia. Hypertension. 55 (2), 284-290 (2010).
  25. Brozoski, D. T., Dean, C., Hopp, F. A., Seagard, J. L. Uptake blockade of endocannabinoids in the NTS modulates baroreflex-evoked sympathoinhibition. Brain Research. 1059 (2), 197-202 (2005).
  26. Barman, S. M. What can we learn about neural control of the cardiovascular system by studying rhythms in sympathetic nerve activity?. International Journal of Psychophysiology. 103, 69-78 (2016).
  27. Charkoudian, N., Wallin, B. G. Sympathetic neural activity to the cardiovascular system: integrator of systemic physiology and interindividual characteristics. Comprehensive Physiology. 4 (2), 825-850 (2014).
  28. Malpas, S. C. Sympathetic nervous system overactivity and its role in the development of cardiovascular disease. Physiological Reviews. 90 (2), 513-557 (2010).
  29. Chen, W. W., Xiong, X. Q., Chen, Q., Li, Y. H., Kang, Y. M., Zhu, G. Q. Cardiac sympathetic afferent reflex and its implications for sympathetic activation in chronic heart failure and hypertension. Acta Physiologica. 213 (4), 778-794 (2015).
  30. Linz, D., et al. Modulation of renal sympathetic innervation: Recent insights beyond blood pressure control. Clinical Autonomic Research. , (2018).
check_url/pt/58205?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Fink, A. M., Dean, C. Quantifying Acute Changes in Renal Sympathetic Nerve Activity in Response to Central Nervous System Manipulations in Anesthetized Rats. J. Vis. Exp. (139), e58205, doi:10.3791/58205 (2018).

View Video