Summary

Mikrodalyse af excitatoriske aminosyrer under EEG optagelser i frit flytte rotter

Published: November 08, 2018
doi:

Summary

Her, beskriver vi en metode til i vivo mikrodalyse til at analysere aspartat og glutamat udgivelse i den ventrale hippocampus epileptiske og ikke-epileptiske rotter i kombination med EEG optagelser. Ekstracellulære koncentrationer af aspartat og glutamat kan være korreleret med de forskellige faser af sygdommen.

Abstract

Mikrodalyse er en veletableret neurovidenskab teknik, der korrelerer ændringer af neurologisk lægemiddelstoffer spreder ind i hjernen interstitielle rum med adfærd og/eller specifikke resultatet af en patologi (fx anfald for epilepsi). Når man studerer epilepsi, er den mikrodalyse teknik ofte kombineret med kortsigtede eller endda langsigtede video-electroencefalografi (EEG) overvågning for at vurdere spontane anfald hyppigheden, sværhedsgrad, progression og klyngedannelse. Den kombinerede mikrodalyse-EEG er baseret på brug af flere metoder og instrumenter. Her, udførte vi i vivo mikrodalyse og kontinuerlig video-EEG optagelse til skærm glutamat og aspartat udstrømning over tid, i forskellige faser af den naturlige historie af epilepsi i en rotte model. Dette kombinerede tiltag giver mulighed for parring af ændringer i neurotransmitter frigivelse med bestemte faser af udvikling af sygdom og progression. Koncentrationen af aminosyren i den dialysat var bestemt af væskekromatografi. Her, vi beskrive metoder og skitsere de vigtigste forebyggende foranstaltninger man skal tage under i vivo mikrodalyse-EEG, med særlig vægt på de stereotaxisk kirurgi, basal og høj kalium stimulering under mikrodalyse, dybde elektrode EEG registrering og højtydende væskekromatografi analyse af aspartat og glutamat i den dialysat. Denne tilgang kan tilpasses til at teste forskellige stof eller sygdom induceret ændringer af de fysiologiske koncentrationer af aspartat og glutamat i hjernen. Afhængigt af tilgængeligheden af en passende analytisk assay, kan det yderligere bruges til at teste forskellige opløselige molekyler, når ansætte EEG optagelse på samme tid.

Introduction

For at give indsigt i den funktionelle svækkelse af glutamat-medieret excitatoriske og GABAergic hæmmende neurotransmission resulterer i spontane anfald i FLE (TLE) har overvåges vi systematisk ekstracellulære koncentrationer af GABA1 og senere niveauer af glutamat og aspartat2 af mikrodalyse i den ventrale hippocampus af rotter på forskellige tidspunkter af sygdommens naturlige kursus, dvs, i løbet af udvikling og progression af epilepsi. Vi tog fordel af TLE pilocarpin model i rotter, som efterligner sygdom meget præcist med hensyn til adfærdsmæssige, elektrofysiologiske og histopatologiske forandringer3,4 og vi korreleret dialysat koncentrationen af amino syrer til sine forskellige faser: den akutte fase efter den epileptogenic fornærmelse, latency fase, tidspunktet for den første spontane anfald og kronisk phass5,6,7. Indramning sygdom faser blev aktiveret af video-EEG langtidsovervågning og præcise EEG og klinisk karakterisering af spontane anfald. Anvendelsen af mikrodalyse teknik forbundet med langsigtede video-EEG overvågning tilladt os at foreslå mekanistiske hypoteser for TLE neuropatologiske. I Resumé tillader teknikken beskrevet i dette håndskrift bindingen af neurokemiske forandringer inden for et defineret hjernen område med udvikling og progression af epilepsi i en dyremodel.

Forbundne enheder, der består af en dybde elektrode sammenstillet til en mikrodalyse kanyle, er ofte beskæftiget i epilepsi forskningsundersøgelser hvor ændringer i neurotransmittere, deres metabolitter eller energi substrater bør være korreleret til neuronal aktivitet. I langt de fleste tilfælde, det bruges i frit opfører dyr, men det også kan gennemføres på samme måde i mennesker, fxi farmako-resistente epileptiske patienter i dybde elektrode undersøgelse før kirurgi8. Både EEG registrering og dialysat samling kan udføres særskilt (f.eks.implantering elektrode i en halvkugle og mikrodalyse sonde i anden halvkugle eller selv udføre mikrodalyse i én gruppe af dyr, mens de udfører den eneste EEG i en anden gruppe af dyr). Dog kobling elektroder til sonder kan have flere fordele: det forenkler stereotaxisk kirurgi, begrænser vævsskader til kun én halvkugle (mens den anden intakt, som et kontrolelement for histologiske undersøgelser), og homogenizes resultater som disse er fremstillet af det samme område af hjernen og de samme dyr.

På den anden side kræver forberedelse af koblede mikrodalyse sonde-elektrode enhed færdigheder og tid, hvis det er hjemmelavet. Man kunne bruge relativt store mængder af penge, hvis købt fra markedet. Desuden, hvornår mikrodalyse sonder (sonde tips er typisk 200-400 µm i diameter og 7-12 mm lange)9og EEG elektroder (elektrode tips er normalt af 300-500 µm i diameter, og lang nok til at nå den hjerne struktur af interesse10) kombineret, repræsenterer de monterede enhed en pladskrævende og relativt tunge objekt på den ene side af hovedet, som er besværlige for dyr og tilbøjelige til at være tabt, især når det er tilsluttet til dialyse pumpen og hårdt-wire EEG optagelse system. Dette aspekt er mere relevante i epileptiske dyr, der er svære at håndtere og mindre adaptive til mikrodalyse sessioner. Korrekte kirurgiske teknikker og passende postoperativ pleje kan resultere i langvarig implantater, der forårsager minimal animalske ubehag og bør videreføres for combinatory mikrodalyse-EEG eksperimenter10,11, 12.

Fordele og begrænsninger af den mikrodalyse teknik er blevet behandlet i detaljer af mange neuroforskere. Dens primære fordel over andre i vivo perfusion teknikker (f.eks., hurtigt flow push-pull eller kortikale cup perfusion) er en lille diameter af sonden, der dækker et relativt præcise område af interesse13,14, 15. For det andet skaber den mikrodalyse membran en fysisk barriere mellem væv og perfusate; derfor høj Molekylær vægt stoffer krydse ikke og forstyrrer ikke analysen16,17. Desuden, væv er beskyttet fra turbulent strømning af perfusate18. En anden vigtig fordel er muligheden for at ændre perfusate strømmen for at maksimere analysandens koncentration i perfusate (dvs., processen med mikrodalyse godt kan defineres matematisk og kan ændres til at give høj koncentrationer af analysand i prøveopløsningen)19. Endelig, teknikken kan bruges til at indgyde stoffer eller restkoncentrationer af farmakologisk virksomme stoffer i væv af interesse og bestemme deres virkning i stedet for intervention20. På den anden side har mikrodalyse en begrænset løsningstid (typisk mere end 1 min på grund af den nødvendige tid til indsamling af prøver) i forhold til elektrokemisk eller biologiske sensorer; Det er en invasiv teknik, der forårsager vævsskader; Det bringer den neurokemiske balance i rummet omkring membran på grund af den fortsatte koncentration graduering af alle opløselige stoffer, der træder perfusate sammen med analysanden af interesse. Endelig, den mikrodalyse teknik er stærkt påvirket af grænserne for de analytiske teknikker anvendes til kvantificering af stoffer i perfusate9,21,22,23 . High-performance væskekromatografi (HPLC) efter forædling med orthophthaldialdehyde for glutamat og aspartat analyse i biologiske prøver er blevet godt valideret24,25,26 , 27 og dens omfattende diskussion er ikke omfattet af dette manuskript, men de data, der er produceret ved hjælp af denne metode vil blive beskrevet i detaljer.

Når udført korrekt og uden ændringer af perfusate sammensætning, kan mikrodalyse give pålidelige oplysninger om de basale niveauer af neurotransmitter frigivelse. Den største del af de basale niveauer er sandsynligvis et resultat af senderen afsmitning fra synapser9. Fordi i mange tilfælde enkel prøveudtagning af neurotransmitter i det ekstra synaptic rum ikke er tilstrækkelige til at forfølge målene i en undersøgelse, kan mikrodalyse teknik anvendes også, at stimulere neuroner eller at fratage dem vigtige fysiologiske ioner som K+ eller Ca2 +, at fremmane eller forhindre frigivelse af neurotransmitter.

Høj K+ stimulation er ofte brugt i neurobiologi for at stimulere neuronal aktivitet ikke blot i vågen dyr, men også i grundskolen og organotypic kulturer. Udsættelse af en sund centralnervesystemet til løsninger med høje koncentrationer af K+ (40-100 mM) fremkalder udstrømningen af neurotransmittere28. Denne evne af neuroner til at give en yderligere frigivelse i svar til høj K+ kan blive kompromitteret i epileptiske dyr1 og andre neurodegenerative sygdomme29,30. Ligeledes frigive Ca2 + afsavn (fremstillet ved perfusing Ca2 + gratis løsninger) bruges til at etablere calcium-afhængige af de fleste neurotransmittere målt ved mikrodalyse. Det menes generelt, Ca2 + afhængige frigivelse er af neuronal oprindelse, hvorimod Ca2 + selvstændig frigivelsen stammer fra glia, men mange undersøgelser rejst kontrovers over betydningen af Ca2 +-følsomme målinger af f.eks. glutamat eller GABA9: således, hvis det er muligt, er det tilrådeligt at støtte mikrodalyse undersøgelser med mikrosensorer undersøgelser, som sidstnævnte har højere spatial opløsning og elektroderne giver mulighed for at komme tættere på synapser31.

Vedrørende mikrodalyse undersøgelser i epileptiske dyr er det vigtigt at understrege, at oplysninger indhentet fra de fleste af dem afhængige af video eller video-EEG overvågning af anfald, dvs, forbigående forekomsten af tegn og/eller symptomer på grund af unormale overdreven eller synkron neuronal aktivitet i hjernen32. Der er noget specielt for electrographic anfald i pilocarpin behandlet dyr, som bør overvejes, når du forbereder eksperimentet. Spontane anfald efterfølges af deprimeret aktivitet med hyppige EEG interictal pigge3 og forekomme i klynger33,34. Forlorne drives ikke-epileptiske dyr kan udstille beslaglæggelse-lignende aktivitet35 og derfor parametre for EEG optagelser evaluering bør være standardiseret36 og, hvis det er muligt, timingen af mikrodalyse sessioner skal være veldefineret. Endelig, vi varmt anbefale følgende principper og metodologiske standarder for video-EEG overvågning i kontrol voksen gnavere skitseret af eksperter fra internationale liga mod epilepsi og amerikanske epilepsi samfund i deres meget nylige rapporterne37 ,38.

Her beskriver vi mikrodalyse af glutamat og aspartat parallelt med de langsigtede video-EEG optagelser i epileptiske dyr og deres analyse i den dialysat ved HPLC. Vi vil understrege de kritiske trin i den protokol, som man bør tage sig af for bedste resultat.

Protocol

Alle eksperimentelle procedurer er blevet godkendt af universitetet i Ferrara institutionelle Animal Care og brug udvalget og af det italienske sundhedsministerium (tilladelse: D.M. 246/2012-B) i overensstemmelse med retningslinjerne i de Europæiske Fællesskabers Rådets direktiv af 24 November 1986 (86/609/EØF). Denne protokol er specielt tilpasset glutamat og aspartat bestemmelse i rat brain dialysates opnået under EEG kontrol af mikrodalyse sessioner i epileptiske og ikke-epileptiske rotter. Mange af de materialer…

Representative Results

Sonden opsving Den gennemsnitlige genfindelse (dvs. den gennemsnitlige aminosyre indhold i perfusate som en procentdel af indholdet i et lige saa stort volumen af hætteglasset løsning) var 15.49 ± 0,42% med en væskehastighed på 2 μl/min og 6,32 ± 0,64 3 μL/min. for glutamat og 14.89 ± 0,36% med en væskehastighed på 2 ΜL/min og 10.13 ± 0,51 3 μL/min. for aspartat når du bruger cuprophane membran sonde. Hvis …

Discussion

I dette arbejde viser vi, hvordan en kontinuerlig video-EEG registrering kombineret med mikrodalyse kan udføres i en eksperimentel model af FLE. Video-EEG optagelse teknikker bruges til at korrekt diagnosticere de forskellige faser af sygdomsprogression i dyr og mikrodalyse teknik bruges til at beskrive de ændringer i glutamat udgivelse, der forekommer i tid (ingen ændringer er blevet fundet for aspartat i en tidligere offentliggjort undersøgelse2). Vi anbefaler brugen af en enkelt enhed/impla…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne vil gerne takke Anna Binaschi, Paolo Roncon og Eleonora Palma for deres bidrag til manuskripter udgivet i forrang.

Materials

3-channel two-twisted electrode Invivo1, Plastic One, Roanoke, Virginia, USA MS333/3-B/SPC Material
guide cannula Agn Tho's, Lindigö, Sweden MAB 4.15.IC Material
Resin KK2 Plastik Elettra Sport, Lecco, Italy KK2 Material
Super Attack gel Loctite Henkel Italia Srl, Milano, Italy 2047420_71941 Material
Imalgene-Ketamine Merial, Toulouse, France 221300288 (AIC) Solution
Xylazine Sigma, Milano, Italy X1251 Material
Isoflurane-Vet Merial, Toulouse, France 103120022 (AIC) Solution
Altadol 50 mg/ ml – tramadol Formevet, Milano, Italy 103703017 (AIC) Solution
Gentalyn 0.1% crm – gentamycine MSD Italia, Roma, Italy 20891077 (AIC) Material
simplex rapid dental cement Kemdent, Associated Dental Products Ltd, Swindon, United Kingdom ACR811 Material
GlasIonomer CX-Plus Cement Shofu, Kyoto, Japan PN1167 Material
probe clip holder Agn Tho's, Lindigö, Sweden p/n 100 5001 Equipment
Histoacryl® Blue Topical Skin Adhesive TissueSeal, Ann Arbor, Michigan, USA TS1050044FP Material
Valium 10 mg/2 ml – diazepam Roche, Monza, Italy 019995063 (AIC) Material
1 mL syringe with 25G needle Vetrotecnica, Padova, Italy 11.3500.05 Material
rat flexible feeding needle 17G Agn Tho's, Lindigö Sweden 7206 Material
Grass Technology apparatus Grass Technologies, Natus Neurology Incorporated, Pleasanton, California, USA M665G08 Equipment (AS40 amplifier, head box, interconnecting cables, telefactor model RPSA S40)
modular data acquisition and analysis system MP150 Biopac, Goleta, California, USA MP150WSW Equipment
digital video surveillance system AverMedia Technologies, Fremont, California, USA V4.7.0041FD Equipment
microdialysis probe Agn Tho's, Lindigö Sweden MAB 4.15.1.Cu Material
microdialysis probe Synaptech, Colorado Springs, Colorado, USA S-8010 Material
block heater Grant Instruments, Cambridge, England QBD2 Equipment
stirrer Cecchinato A, Aparecchi Scientifici, Mestre, Italy 711 Equipment
infusion pump Univentor, Zejtun, Malta 864 Equipment
fine bore polythene tubing Smiths Medical International Ltd., Keene, New Hampshire, USA 800/100/100/100 Material
blue tubing adapters Agn Tho's, Lindigö Sweden 1002 Material
red tubing adapters Agn Tho's, Lindigö Sweden 1003 Material
2.5 mL syringe with 22G needle Chemil, Padova, Italy S02G22 Material
vial cap Cronus, Labicom, Olomouc, Czech Republic VCA-1004TB-100 Material
septum Thermo Scientific, Rockwoood, Tennessee, USA National C4013-60 8 mm TEF/SIL septum Material
glass insert with bottom spring Supelco, Sigma, Milano, Italy 27400-U Material
autosampler vial National Scientific, Thermo Fisher Scientific, Monza, Italy C4013-2 Material
Smartline manager 5000 system controller and degasser unit Knauer, Berlin, Germany V7602 Equipment
Smartline 1000 quaternary gradient pump Knauer, Berlin, Germany V7603 Equipment
spectrofluorometric detector Shimadzu, Kyoto, Japan RF-551 Equipment
chromatogrphic column Knauer, Berlin, Germany 25EK181EBJ Material
chromatogrphic pre-column Knauer, Berlin, Germany P5DK181EBJ Material
mobile phase solution A 0.1 M sodium phosphate buffer, pH 6.0 Solution
mobile phase solution B 40% 0.1 M sodium phosphate buffer, 30% methanol, 30% acetonitrile, pH 6.5 Solution
Ringer solution composition in mM: MgCl2 0.85, KCl 2.7, NaCl 148, CaCl2 1.2, 0.3% BSA Solution
modified Ringer solution composition in mM: MgCl2 0.85, KCl 100, NaCl 50.7, CaCl2 1.2, 0.3% BSA Solution
saline 0.9% NaCl, ph adjusted to 7.0 Solution
sucrose solution 10% sucrose in distilled water Solution

Referências

  1. Soukupova, M., et al. Impairment of GABA release in the hippocampus at the time of the first spontaneous seizure in the pilocarpine model of temporal lobe epilepsy. Experimental Neurology. 257, 39-49 (2014).
  2. Soukupova, M., et al. Increased extracellular levels of glutamate in the hippocampus of chronically epileptic rats. Neurociência. 301, 246-253 (2015).
  3. Curia, G., Longo, D., Biagini, G., Jones, R. S., Avoli, M. The pilocarpine model of temporal lobe epilepsy. Journal of Neuroscience Methods. 172 (2), 143-157 (2008).
  4. Scorza, F. A., et al. The pilocarpine model of epilepsy: what have we learned?. Anais da Academia Brasileira de Ciencias. 81 (3), 345-365 (2009).
  5. Pitkanen, A., Sutula, T. P. Is epilepsy a progressive disorder? Prospects for new therapeutic approaches in temporal-lobe epilepsy. The Lancet Neurology. 1 (3), 173-181 (2002).
  6. Pitkanen, A., Lukasiuk, K. Mechanisms of epileptogenesis and potential treatment targets. The Lancet Neurology. 10 (2), 173-186 (2011).
  7. Reddy, D. S. Role of hormones and neurosteroids in epileptogenesis. Frontiers in Cellular Neuroscience. 7 (115), (2013).
  8. Engel, J. Research on the human brain in an epilepsy surgery setting. Epilepsy Research. 32 (1-2), 1-11 (1998).
  9. Watson, C. J., Venton, B. J., Kennedy, R. T. In vivo measurements of neurotransmitters by microdialysis sampling. Analytical Chemistry. 78 (5), 1391-1399 (2006).
  10. Jeffrey, M., et al. A reliable method for intracranial electrode implantation and chronic electrical stimulation in the mouse brain. BMC Neuroscience. 14, 82 (2013).
  11. Oliveira, L. M. O., Dimitrov, D. Chapter 2. Surgical techniques for chronic implantation of microwire arrays in rodents and primates. Methods for Neural Ensemble Recordings. , (2008).
  12. Fornari, R. V., et al. Rodent stereotaxic surgery and animal welfare outcome improvements for behavioral neuroscience. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (59), e3528 (2012).
  13. Horn, T. F., Engelmann, M. In vivo microdialysis for nonapeptides in rat brain–a practical guide. Methods. 23 (1), 41-53 (2001).
  14. Kennedy, R. T., Thompson, J. E., Vickroy, T. W. In vivo monitoring of amino acids by direct sampling of brain extracellular fluid at ultralow flow rates and capillary electrophoresis. Journal of Neuroscience Methods. 114 (1), 39-49 (2002).
  15. Renno, W. M., Mullet, M. A., Williams, F. G., Beitz, A. J. Construction of 1 mm microdialysis probe for amino acids dialysis in rats. Journal of Neuroscience Methods. 79 (2), 217-228 (1998).
  16. Nirogi, R., et al. Approach to reduce the non-specific binding in microdialysis. Journal of Neuroscience Methods. 209 (2), 379-387 (2012).
  17. Zhou, Y., Wong, J. M., Mabrouk, O. S., Kennedy, R. T. Reducing adsorption to improve recovery and in vivo detection of neuropeptides by microdialysis with LC-MS. Analytical Chemistry. 87 (19), 9802-9809 (2015).
  18. Wisniewski, N., Torto, N. Optimisation of microdialysis sampling recovery by varying inner cannula geometry. Analyst. 127 (8), 1129-1134 (2002).
  19. Morrison, P. F., et al. Quantitative microdialysis: analysis of transients and application to pharmacokinetics in brain. Journal of Neurochemistry. 57 (1), 103-119 (1991).
  20. Westerink, B. H., De Vries, J. B. A method to evaluate the diffusion rate of drugs from a microdialysis probe through brain tissue. Journal of Neuroscience Methods. 109 (1), 53-58 (2001).
  21. Chefer, V. I., Thompson, A. C., Zapata, A., Shippenberg, T. S. Overview of brain microdialysis. Current Protocols in Neurosciences. , (2009).
  22. Westerink, B. H. Brain microdialysis and its application for the study of animal behaviour. Behavioural Brain Research. 70 (2), 103-124 (1995).
  23. Zhang, M. Y., Beyer, C. E. Measurement of neurotransmitters from extracellular fluid in brain by in vivo microdialysis and chromatography-mass spectrometry. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis. 40 (3), 492-499 (2006).
  24. Allison, L. A., Mayer, G. S., Shoup, R. E. o-Phthalaldehyde derivatives of amines for high-speed liquid chromatography/electrochemistry. Analytical Chemistry. 56 (7), 1089-1096 (1984).
  25. Boyd, B. W., Witowski, S. R., Kennedy, R. T. Trace-level amino acid analysis by capillary liquid chromatography and application to in vivo microdialysis sampling with 10-s temporal resolution. Analytical Chemistry. 72 (4), 865-871 (2000).
  26. Hanczko, R., Jambor, A., Perl, A., Molnar-Perl, I. Advances in the o-phthalaldehyde derivatizations. Comeback to the o-phthalaldehyde-ethanethiol reagent. Journal of Chromatography A. 1163 (1-2), 25-42 (2007).
  27. Molnar-Perl, I. Quantitation of amino acids and amines in the same matrix by high-performance liquid chromatography, either simultaneously or separately. Journal of Chromatography A. 987 (1-2), 291-309 (2003).
  28. Solis, J. M., et al. Variation of potassium ion concentrations in the rat hippocampus specifically affects extracellular taurine levels. Neuroscience Letters. 66 (3), 263-268 (1986).
  29. Boatell, M. L., Bendahan, G., Mahy, N. Time-related cortical amino acid changes after basal forebrain lesion: a microdialysis study. Journal of Neurochemistry. 64 (1), 285-291 (1995).
  30. Sutton, A. C., et al. Elevated potassium provides an ionic mechanism for deep brain stimulation in the hemiparkinsonian rat. The European Journal of Neuroscience. 37 (2), 231-241 (2013).
  31. Hascup, K. N., Hascup, E. R. Electrochemical techniques for subsecond neurotransmitter detection in live rodents. Comparative Medicine. 64 (4), 249-255 (2014).
  32. Fisher, R. S., et al. Epileptic seizures and epilepsy: definitions proposed by the International League Against Epilepsy (ILAE) and the International Bureau for Epilepsy (IBE). Epilepsia. 46 (4), 470-472 (2005).
  33. Goffin, K., Nissinen, J., Van Laere, K., Pitkanen, A. Cyclicity of spontaneous recurrent seizures in pilocarpine model of temporal lobe epilepsy in rat. Experimental Neurology. 205 (2), 501-505 (2007).
  34. Pitsch, J., et al. Circadian clustering of spontaneous epileptic seizures emerges after pilocarpine-induced status epilepticus. Epilepsia. 58 (7), 1159-1171 (2017).
  35. Pearce, P. S., et al. Spike-wave discharges in adult Sprague-Dawley rats and their implications for animal models of temporal lobe epilepsy. Epilepsy and Behavior. 32, 121-131 (2014).
  36. Twele, F., Tollner, K., Bankstahl, M., Loscher, W. The effects of carbamazepine in the intrahippocampal kainate model of temporal lobe epilepsy depend on seizure definition and mouse strain. Epilepsia Open. 1 (1-2), 45-60 (2016).
  37. Kadam, S. D., et al. Methodological standards and interpretation of video-electroencephalography in adult control rodents. A TASK1-WG1 report of the AES/ILAE Translational Task Force of the ILAE. Epilepsia. 58, 10-27 (2017).
  38. Hernan, A. E., et al. Methodological standards and functional correlates of depth in vivo electrophysiological recordings in control rodents. A TASK1-WG3 report of the AES/ILAE Translational Task Force of the ILAE. Epilepsia. 58, 28-39 (2017).
  39. Bernal, J., et al. Guidelines for rodent survival surgery. Journal of Investigative Surgery: the official journal of the Academy of Surgical Research. 22 (6), 445-451 (2009).
  40. Flecknell, P. Rodent analgesia: Assessment and therapeutics. Veterinary Journal. , 70-77 (2018).
  41. Miller, A. L., Richardson, C. A. Rodent analgesia. The Veterinary Clinics of North America. Exotic Animal Practice. 14 (1), 81-92 (2011).
  42. Geiger, B. M., Frank, L. E., Caldera-Siu, A. D., Pothos, E. N. Survivable stereotaxic surgery in rodents. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (20), (2008).
  43. Gardiner, T. W., Toth, L. A. Stereotactic Surgery and Long-Term Maintenance of Cranial Implants in Research Animals. Contemporary Topics in Laboratory Animal Science. 38 (1), 56-63 (1999).
  44. Williams, P. A., et al. Development of spontaneous recurrent seizures after kainate-induced status epilepticus. The Journal of Neuroscience: The official journal of the Society for Neuroscience. 29 (7), 2103-2112 (2009).
  45. Paradiso, B., et al. Localized overexpression of FGF-2 and BDNF in hippocampus reduces mossy fiber sprouting and spontaneous seizures up to 4 weeks after pilocarpine-induced status epilepticus. Epilepsia. 52 (3), 572-578 (2011).
  46. Kanamori, K. Faster flux of neurotransmitter glutamate during seizure – Evidence from 13C-enrichment of extracellular glutamate in kainate rat model. PLoS One. 12 (4), e0174845 (2017).
  47. Kanamori, K., Ross, B. D. Chronic electrographic seizure reduces glutamine and elevates glutamate in the extracellular fluid of rat brain. Brain Research. 1371, 180-191 (2011).
  48. Kanamori, K., Ross, B. D. Electrographic seizures are significantly reduced by in vivo inhibition of neuronal uptake of extracellular glutamine in rat hippocampus. Epilepsy Research. 107 (1-2), 20-36 (2013).
  49. Luna-Munguia, H., Meneses, A., Pena-Ortega, F., Gaona, A., Rocha, L. Effects of hippocampal high-frequency electrical stimulation in memory formation and their association with amino acid tissue content and release in normal rats. Hippocampus. 22 (1), 98-105 (2012).
  50. Mazzuferi, M., Binaschi, A., Rodi, D., Mantovani, S., Simonato, M. Induction of B1 bradykinin receptors in the kindled hippocampus increases extracellular glutamate levels: a microdialysis study. Neurociência. 135 (3), 979-986 (2005).
  51. Meurs, A., Clinckers, R., Ebinger, G., Michotte, Y., Smolders, I. Seizure activity and changes in hippocampal extracellular glutamate, GABA, dopamine and serotonin. Epilepsy Research. 78 (1), 50-59 (2008).
  52. Ueda, Y., et al. Collapse of extracellular glutamate regulation during epileptogenesis: down-regulation and functional failure of glutamate transporter function in rats with chronic seizures induced by kainic acid. Journal of Neurochemistry. 76 (3), 892-900 (2001).
  53. Wilson, C. L., et al. Comparison of seizure related amino acid release in human epileptic hippocampus versus a chronic, kainate rat model of hippocampal epilepsy. Epilepsy Research. 26 (1), 245-254 (1996).
  54. Lidster, K., et al. Opportunities for improving animal welfare in rodent models of epilepsy and seizures. Journal of Neuroscience Methods. 260, 2-25 (2016).
  55. Parrot, S., et al. High temporal resolution for in vivo monitoring of neurotransmitters in awake epileptic rats using brain microdialysis and capillary electrophoresis with laser-induced fluorescence detection. Journal of Neuroscience Methods. 140 (1-2), 29-38 (2004).
  56. Kennedy, R. T., Watson, C. J., Haskins, W. E., Powell, D. H., Strecker, R. E. In vivo neurochemical monitoring by microdialysis and capillary separations. Current Opinion in Chemical Biology. 6 (5), 659-665 (2002).
  57. Kennedy, R. T. Emerging trends in in vivo neurochemical monitoring by microdialysis. Current Opinion in Chemical Biology. 17 (5), 860-867 (2013).
  58. Ferry, B., Gifu, E. P., Sandu, I., Denoroy, L., Parrot, S. Analysis of microdialysate monoamines, including noradrenaline, dopamine and serotonin, using capillary ultra-high performance liquid chromatography and electrochemical detection. Journal of Chromatography B, Analytical Technologies in the Biomedical and Life Sciences. 951, 52-57 (2014).
  59. Jung, M. C., Shi, G., Borland, L., Michael, A. C., Weber, S. G. Simultaneous determination of biogenic monoamines in rat brain dialysates using capillary high-performance liquid chromatography with photoluminescence following electron transfer. Analytical Chemistry. 78 (6), 1755-1760 (2006).
  60. Parrot, S., Lambas-Senas, L., Sentenac, S., Denoroy, L., Renaud, B. Highly sensitive assay for the measurement of serotonin in microdialysates using capillary high-performance liquid chromatography with electrochemical detection. Journal of Chromatography B, Analytical Technologies in the Biomedical and Life Sciences. 850 (1-2), 303-309 (2007).
  61. Hershey, N. D., Kennedy, R. T. In vivo calibration of microdialysis using infusion of stable-isotope labeled neurotransmitters. ACS Chemical Neuroscience. 4 (5), 729-736 (2013).
  62. Vander Weele, C. M., et al. Rapid dopamine transmission within the nucleus accumbens: dramatic difference between morphine and oxycodone delivery. The European Journal of Neuroscience. 40 (7), 3041-3054 (2014).
  63. Zestos, A. G., Kennedy, R. T. Microdialysis Coupled with LC-MS/MS for In Vivo Neurochemical Monitoring. The AAPS journal. 19 (5), 1284-1293 (2017).
  64. Benturquia, N., Parrot, S., Sauvinet, V., Renaud, B., Denoroy, L. Simultaneous determination of vigabatrin and amino acid neurotransmitters in brain microdialysates by capillary electrophoresis with laser-induced fluorescence detection. Journal of Chromatography B, Analytical Technologies in the Biomedical and Life Sciences. 806 (2), 237-244 (2004).
  65. Chefer, V., et al. Repeated exposure to moderate doses of ethanol augments hippocampal glutamate neurotransmission by increasing release. Addiction Biology. 16 (2), 229-237 (2011).
  66. Morales-Villagran, A., Pardo-Pena, K., Medina-Ceja, L., Lopez-Perez, S. A microdialysis and enzymatic reactor sensing procedure for the simultaneous registration of online glutamate measurements at high temporal resolution during epileptiform activity. Journal of Neurochemistry. 139 (5), 886-896 (2016).
  67. Petit-Pierre, G., et al. In vivo neurochemical measurements in cerebral tissues using a droplet-based monitoring system. Nature Communication. 8 (1), 1239 (2017).
  68. Renaud, P., Su, C. K., Hsia, S. C., Sun, Y. C. A high-throughput microdialysis-parallel solid phase extraction-inductively coupled plasma mass spectrometry hyphenated system for continuous monitoring of extracellular metal ions in living rat brain. Nature Communication. 1326, 73-79 (2014).
  69. Zilkha, E., Obrenovitch, T. P., Koshy, A., Kusakabe, H., Bennetto, H. P. Extracellular glutamate: on-line monitoring using microdialysis coupled to enzyme-amperometric analysis. Journal of Neuroscience Methods. 60 (1-2), 1-9 (1995).
  70. Ngernsutivorakul, T., White, T. S., Kennedy, R. T. Microfabricated Probes for Studying Brain Chemistry: A Review. Chemphyschem: a Eurepean journal of chemical physics and physical chemistry. 19 (10), 1128-1142 (2018).
  71. Mirzaei, M., Sawan, M. Microelectronics-based biosensors dedicated to the detection of neurotransmitters: a review. Sensors. 14 (10), 17981-18008 (2014).
check_url/pt/58455?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Soukupová, M., Falcicchia, C., Lovisari, F., Ingusci, S., Barbieri, M., Zucchini, S., Simonato, M. Microdialysis of Excitatory Amino Acids During EEG Recordings in Freely Moving Rats. J. Vis. Exp. (141), e58455, doi:10.3791/58455 (2018).

View Video