Summary

Micron-skala fænotyper teknikker af majs kardiovaskulære bundter baseret på X-ray Microcomputed tomografi

Published: October 09, 2018
doi:

Summary

Vi leverer en roman metode til at forbedre X-ray absorption kontrast af majs væv egnet til almindelig microcomputed Computertomografi scanning. Baseret på CT billeder, indføre vi et sæt af billedbehandling arbejdsprocesser for forskellige majs materialer til effektivt uddrag mikroskopiske fænotyper af kardiovaskulære bundter af majs.

Abstract

Det er nødvendigt at nøjagtigt kvantificere de anatomiske strukturer i majs materialer baseret på høj overførselshastighed billede analyseteknikker. Her give vi prøve forberedelse protokol for majs materialer (dvs., stængel, blade og rod) egnet til almindelig microcomputed tomografi (mikro-CT) scanning. Baseret på CT højopløsningsbilleder af majs stængel, blade og rod, vi beskriver to protokoller for fænotypiske analyser af kardiovaskulære bundter: (1) baseret på CT billede af majs stænglen og blade, udviklede vi et bestemt billede analyse pipeline hen til automatisk uddrag 31 og 33 fænotypisk træk af kardiovaskulære bundter; (2) baseret på CT billede serie af majs rod, vi oprette et billede behandling ordning for de tre-dimensionelle (3-D) segmentering af metaxylem fartøjer, og udvindes todimensionale (2D) og 3D-fænotypisk træk, såsom lydstyrke, areal af metaxylem fartøjer, osv. Sammenlignet med traditionel manuel måling af kardiovaskulære bundter af majs materialer, forbedre de foreslåede protokoller væsentligt effektiviteten og nøjagtigheden af micron-skala fænotypiske kvantificering.

Introduction

Majs kar systemet kører gennem hele planten, fra rod og stængel til bladene, som udgør de vigtigste transport stier for at levere vand, mineralske næringsstoffer og organiske stoffer1. En anden vigtig funktion af det vaskulære system er at give mekanisk støtte for majs anlægget. For eksempel, hænger morfologi, antal og fordeling af kardiovaskulære bundter i rødder og stængler tæt sammen med logi modstanden af majs planter2,3. I øjeblikket undersøgelser på den anatomiske struktur af kardiovaskulære bundter udnytte primært mikroskopiske og ultramicroscopic teknikker for at få vist de anatomiske strukturer i en bestemt del af stængel, blade eller rod, og derefter måle og tælle disse strukturer af renter af manuel undersøgelse. Utvivlsomt, manuel måling af forskellige mikroskopiske strukturer i store microimages er en meget kedelig og ineffektive arbejde og begrænser alvorligt præcision af microphenotypic træk, på grund af sin subjektivitet og inkonsekvens4, 5.

Majs har ingen sekundære vækst, og celleindhold hovedsagelig består af vand i den primære meristem. Uden nogen forbehandling, kan friske prøver af majs væv direkte scannes ved hjælp af en mikro-CT enhed; de scanning resultater er dog nok fattige og uslebne. De vigtigste grunde kan opsummeres som følger: (1) lav dæmpning tætheder af plantevæv, hvilket resulterer i en lav kontrast atomnummer og høj støj i billeder; (2) fersk plantematerialer er tilbøjelige til at dehydrere og skrumpe under normal scanning miljø, som rapporteret af Du6. De ovennævnte problemer er blevet de vigtigste begrænsninger for udvikling og anvendelse af microphenotyping teknologi for majs, hvede, ris og andre enkimbladede. Her introducerer vi prøve forberedelse-protokollen til at forbehandle prøver af majs stængel, blade og rod. Denne protokol forhindrer dehydrering og deformation af plantematerialer under CT scanning; således, det er gavnligt at øge bevarelse tidspunktet for planten prøver med nondeformation. Derudover øger trinnet farvning baseret på solid jod også kontrasten af plantematerialer; således, det gør betydelige forbedringer i den billeddiagnostiske kvalitet af mikro-CT. Vi har endvidere udviklet billedbehandlingsprogram, opkaldt VesselParser, til at behandle CT billederne af majs stilke og blade. Denne software integrerer et sæt af billedbehandling rørledninger til at udføre høj overførselshastighed og automatisk fænotyper analyse for 2D-CT billeder af forskellige plantevæv. Kardiovaskulære bundter i hele tværsnittet af majs stænglen og blade er registreret, udtrukket og identificeret ved hjælp af en automatisk billedbehandling metode. Som et resultat, får vi 31 mikroskopiske fænotyper af majs stilken og 33 mikroskopiske fænotyper af majs bladet. For CT billede serie af majs roden udviklede vi en billed-oparbejdelse ordning at erhverve 3-D fænotypisk træk af metaxylem skibe. Denne ordning er overlegen i effektiviteten af image erhvervelse og genopbygning sammenlignet med traditionelle metoder.

Disse resultater viser, at billedbehandling rørledninger overvejer almindelige X-ray mikro-CT billeddannelse egenskaber giver en effektiv metode til den mikroskopiske fænotyper af kardiovaskulære bundter; Dette ekstremt udvider anvendelser af CT teknikker i plantevidenskab og forbedrer den automatiske fænotyper af plantematerialer på cellulære opløsning6,7.

Protocol

1. sample forberedelse protokol For prøveudtagning, indsamle stængel, blade, og rod fra friske majs planter og opdele dem i tre typer af prøven grupper (hver gruppe med fire replikationer). Derefter, skær dem i små segmenter af med kirurgisk klinge på følgende måde: (1) skæres et segment af midterste stammer internodium 1-1,5 cm i længden; (2) skåret et segment af den maksimale bredde af bladet 0,5 – 3 cm i længde langs den lodrette retning med de vigtigste vene; (3) skåret et segment af crown rode…

Representative Results

Prøven forberedelse protokol egnet til almindelig mikro-CT-scanning ikke kun forhindrer deformering af plantevæv men også forbedrer X-ray absorption kontrast. Massiv plantematerialer scannes ved hjælp af en mikro-CT system i høj kvalitet skive billeder, og den højeste opløsning kan nå 2 µm/pixel. Figur 4 viser scannede micro-CT billederne af stængel, blade og rod, og billedets kontrast har en betydelig forbedring i forhold til de resultater, der er …

Discussion

Med den vellykkede anvendelse af CT teknologi inden for biomedicin og materialevidenskab, er denne teknologi blevet gradvis indført i inden for botanik og landbruget, fremme forsker i anlægget biovidenskab som en lovende teknisk værktøj . I slutningen af 1990 ‘ erne, blev CT teknologi første gang brugt til at studere de morfologiske strukturer og udviklingen af plante rodsystemer. I det seneste årti, synkrotron HRCT er blevet et stærkt, ikke-destruktiv værktøj for anlægget biologer, og held har været anvendt t…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne forskning blev støttet af National karakter Science Foundation of China (No.31671577), videnskab og teknologi Innovation særlige konstruktion finansieret Program af Beijing Academy for landbrug og skovbrug Sciences(KJCX20180423), forskningen Development Program af Kina (2016YFD0300605-01), Beijing Natural Science Foundation (5174033), Beijing postdoc Research Foundation (2016 ZZ-66), og Beijing akademi for landbrug og skovbrug Sciences Grant (KJCX20170404),) JNKYT201604).

Materials

Skyscan 1172 X-ray computed tomography system Bruker Corporation, Belgium NA For CT scanning
CO2 critical point drying system (Leica CPD300) Leica Corporation, Germany NA For sample drying
Ethanol Any NA For FAA fixation
Formaldehyde Any NA For FAA fixation
Acetic acid Any NA For FAA fixation
Surgical blade Any NA For cutting the sample sgements
3D printer Makerbot replicator 2, MakerBot Industries, USA NA For printing the sample baskets of maize root, stem, and leaf
Centrifuge tube Corning, USA NA Place the root, stem, or leaf materials
Solid iodine Any NA For sample dyeing
SkyScan Nrecon software SkyScan NRecon, Version: 1.6.9.4, Bruker Corporation, Belgium NA For image reconstruction
VesselParser software VesselParser, Version: 3.0, National Engineering Research Center for Information Technology in Agriculture (NERCITA), Beijing, China NA Image analysis protocol for single CT image of maize stem or leaf
ScanIP ScanIP, Version: 7.0; Simpleware, Exeter, UK NA 3D image processing software
Latex gloves Any NA
Tweezers Any NA

Referências

  1. Lucas, W. J., et al. The plant vascular system: evolution, development and functions. Journal of Integrative Plant Biology. 55, 294-388 (2013).
  2. Gou, L., et al. Effect of population density on stalk lodging resistant mechanism and agronomic characteristics of maize. Acta Agronomica Sinia. 33, 1688-1695 (2007).
  3. Hu, H., et al. QTL mapping of stalk bending strength in a recombinant inbred line maize population. Theoretical and Applied Genetics. 126, 2257-2266 (2013).
  4. Wilson, J. R., Mertens, D. R., Hatfield, R. D. Isolates of cell types from sorghum stems: Digestion, cell wall and anatomical characteristics. Journal of the Science of Food and Agriculture. 63, 407-417 (1993).
  5. Hatfield, R., Wilson, J., Mertens, D. Composition of cell walls isolated from cell types of grain sorghum stems. Journal of the Science of Food and Agriculture. 79, 891-899 (1999).
  6. Du, J., et al. Micron-scale phenotyping quantification and three-dimensional microstructure reconstruction of vascular bundles within maize stems based on micro-CT scanning. Functional Plant Biology. 44 (1), 10-22 (2016).
  7. Pan, X., et al. Reconstruction of Maize Roots and Quantitative Analysis of Metaxylem Vessels based on X-ray Micro-Computed Tomography. Canadian Journal of Plant Science. 98 (2), 457-466 (2018).
  8. McElrone, A. J., Choat, B., Parkinson, D. Y., MacDowell, A. A., Brodersen, C. R. Using high resolution computed tomography to visualize the three dimensional structure and function of plant vasculature. Journal of Visualized Experiments. (74), e50162 (2013).
  9. Cloetens, P., Mache, R., Schlenker, M., Lerbs-Mache, S. Quantitative phase tomography of Arabidopsis seeds reveals intercellular void network. Proceedings of the National Academy of Sciences of the Unites States of America. 103, 14626-14630 (2006).
  10. Dorca-Fornell, C., et al. Increased leaf mesophyll porosity following transient retinoblastoma-related protein silencing is revealed by microcomputed tomography imaging and leads to a system-level physiological response to the altered cell division pattern. Plant Journal. 76 (6), 914-929 (2013).
  11. Verboven, P., et al. Void space inside the developing seed of Brassica napus and the modelling of its function. New Phytologist. 199, 936-947 (2013).
  12. Brodersen, C. R., Roark, L. C., Pittermann, J. The physiological implications of primary xylem organization in two ferns. Plant, Cell & Environment. 35, 1898-1911 (2012).
  13. Choat, B., Brodersen, C. R., McElrone, A. J. Synchrotron X-ray microtomography of xylem embolism in Sequoia sempervirens saplings during cycles of drought and recovery. New Phytologist. 205, 1095-1105 (2015).
  14. Torres-Ruiz, J. M., et al. Direct x-ray microtomography observation confirms the induction of embolism upon xylem cutting under tension. Plant Physiology. 167, 40-43 (2015).
  15. Staedler, Y. M., Masson, D., Schönenberger, J. Plant tissues in 3D via. x-ray tomography: simple contrasting methods allow high resolution imaging. PLoS One. 8, 75295 (2013).
  16. Zhang, Y., Legay, S., Barrière, Y., Méchin, V., Legland, D. Color quantification of stained maize stem section describes lignin spatial distribution within the whole stem. Journal of the Science of Food and Agriculture. 61, 3186-3192 (2013).
  17. Legland, D., Devaux, M. F., Guillon, F. Statistical mapping of maize bundle intensity at the stem scale using spatial normalisation of replicated images. PLoS One. 9 (3), 90673 (2014).
  18. Heckwolf, S., Heckwolf, M., Kaeppler, S. M., de Leon, N., Spalding, E. P. Image analysis of anatomical traits in stem transections of maize and other grasses. Plant Methods. 11, 26 (2015).
  19. Wu, H., Jaeger, M., Wang, M., Li, B., Zhang, B. G. Three-dimensional distribution of vessels, passage cells and lateral roots along the root axis of winter wheat (Triticum aestivum). Annals of Botany. 107, 843-853 (2011).
  20. Chopin, J., Laga, H., Huang, C. Y., Heuer, S., Miklavcic, S. J. RootAnalyzer: A Cross-Section Image Analysis Tool for Automated Characterization of Root Cells and Tissues. PLoS One. 10, 0137655 (2015).
  21. Passot, S., et al. Characterization of pearl millet root architecture and anatomy reveals three types of lateral roots. Frontiers in Plant Science. 7, 829 (2016).
check_url/pt/58501?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Zhang, Y., Ma, L., Pan, X., Wang, J., Guo, X., Du, J. Micron-scale Phenotyping Techniques of Maize Vascular Bundles Based on X-ray Microcomputed Tomography. J. Vis. Exp. (140), e58501, doi:10.3791/58501 (2018).

View Video