Развития и ангиографическое использование модели VX2 кролика для рака печени
Summary
Цель этой статьи заключается в обеспечить грунт для разработки и использования модели кролика карцинома VX2 рака печени.
Abstract
Кролик VX2 опухоли является модель животных, обычно используемых для трансляционного исследования относительно гепатоцеллюлярной карциномой (HCC) в области интервенционной радиологии. Эта модель использует анапластическая плоскоклеточный рак, легко и надежно передаются в скелетных мышцах доноров кроликов для возможного урожая и аллотрансплантата имплантации в печени наивно получателей. Эта опухоль трансплантата быстро перерастает в печени получателей кроликов в ангиографически идентифицируемой опухоли, характеризуется некротические ядро, окруженный жизнеспособной гиперва капсулу. Физический размер кролика анатомии является достаточным для облегчения сосудистой инструментирования позволяет для приложения и тестирование различных лечебных методов. Несмотря на эти преимущества существует нехватка технических ресурсов в качестве конкретной ссылки для исследователей, работающих с моделью. Здесь мы представляем всеобъемлющий план визуальные для технических аспектов развития, роста, размножения и ангиографические использование кролик VX2 опухоли модели для начинающих и опытных исследователей, так.
Introduction
Кролик VX2 опухоли модель играет роль в экспериментальной онкологии с момента ее разработки в 1935 году1,2. Эта опухоль является вирус индуцированной анапластическая плоскоклеточный рак характеризуется hypervascularity, быстрый рост и легко распространение в скелетных мышцах3,4. В то время как кролик VX2 опухоли модель использовалась для изучения множества рака5,6,,78; в центре внимания этого документа является рак печени9.
Цель метода, описанного – представить модель для первичного рака печени, или гепатоцеллюлярной карциномой (HCC), который может использоваться интервенционных радиологов для трансляционного исследования. Он может использоваться для фармакокинетические исследования, терапевтические исследования и абляционного метод тестирования10,11,12,13,14,15.
Метод, изложенных в настоящем документе дает несколько преимуществ над другими моделями в той же сфере таких грызунов модели, как крыс, мышей и сурки или больших моделей, как приматов16. Одним из основных преимуществ является быстрое и надежное опухолевого роста, который позволяет исследователям установить линию Активные опухоли в течение месяца первого задние конечности распространения17. Кроме того эта опухоль имеет простой сонографические видимости и гиперва периферии, которая позволяет для лечения локорегионарных transarterial и абляционного лечения. Наконец и самое главное размер кролика сосудистую позволяет целесообразно и технически легко использования сосудистых инструментария18.
Protocol
Representative Results
Discussion
Первым важным шагом в методологии VX2 опухоли является успешное распространение опухоли в задние конечности кролика доноров. Обратитесь к первый абзац в разделе «Представитель результатов» для получения дополнительной информации об этом шаге.
Следующим важнейшим шагом…
Declarações
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Мы хотели бы признать ветеринарного персонала в университете Иллинойс – Чикаго, биологических ресурсов лаборатории.
Materials
| MethoCult (Methycellulose) | Stemcell Technologies | M3134 | |
| VX2 Cell Line | NCI | VX-2 | |
| 5 mL Syringe | BD | 309646 | |
| 16-Gauge Needle | BD | 305197 | |
| 22-Gauge Needle | BD | 305155 | |
| Hair Clippers | Wahl | 41870-0438 | |
| Foam Insulated Box | Mr. Box Online | 10 x 10 x 4 | |
| Acepromazine | Henry Schein | 003845 | |
| Buprenorphine | Par | 42023-179-05 | |
| Meloxicam | Henry Schein | 049755 | |
| Alcohol Pads | Covidien | 5033 | |
| Ketamine | Henry Schein | 056344 | |
| Xylazine | Akorn | 59399-110-20 | |
| Pentobarbital (Fatal-Plus) | Vortech | 9373 | |
| Sterile Petri Dish | Thermo Fisher | 172931 | |
| DMEM | Gibco | 11965092 | |
| Saline | Baxter | 2F7124 | |
| 15-Blade | Steris | 02-050-015 | |
| Scalpel Handle x 2 | Steris | 22-2381 | |
| Curved Hemostat | WPI | 501288 | |
| Atraumatic Forceps | Sklar | 52-5077 | |
| Gauze | Medline | NON21430LF | |
| 11-Blade | Steris | 02-050-011 | |
| Surgicel | Ethicon | 1951 | |
| 3-0 PDS / Taper | Ethicon | Z305H | |
| 4 – 0 Vicryl / Cutting | Ethicon | J392H | |
| 40 micron strainer | BD | 352340 | |
| 50 mL conical tube | Thermo Fisher | 339652 | |
| plastic pipette | Thomas Scientific | HS206371B | |
| Centrifuge | Sorvall | 75004240 | |
| 1.40mL Tubes (Internal Thread) | Micronic | MP32131-Z20 | |
| 3-F VSI Micro-HV Introducer Kit | Vascular Solutions | Custom Order (P15180391) | |
| .018 45-degree angle glidewire | Terumo | RG*GA1818SA | |
| Direxion bern-shape microcatheter | Boston Scientific | M001195230 | |
| Omnipaque | GE | Y510 |
Referências
- Rous, P., Beard, J. W. The Progression To Carcinoma of Virus-Induced Rabbit Papillomas (Shope). The Journal of Experimental Medicine. 62 (4), 523-548 (1935).
- Kidd, J. G., Rous, P. A transplantable rabbit carcinoma originating in a virus-induced papilloma and containing the virus in masked or altered form. The Journal of Experimental Medicine. 71 (6), 813-838 (1940).
- Galasko, C. S. B., Muckle, D. S. Intrasarcolemmal proliferation of the vx2 carcinoma. British Journal of Cancer. 29 (1), 59-65 (1974).
- Maruyama, H., et al. Sonographic shift of hypervascular liver tumor on blood pool harmonic images with definity: Time-related changes of contrast-enhanced appearance in rabbit VX2 tumor under extra-low acoustic power. European Journal of Radiology. 56 (1), 60-65 (2005).
- Horkan, C., et al. Radiofrequency Ablation: Effect of Pharmacologic Modulation of Hepatic and Renal Blood Flow on Coagulation Diameter in a VX2 Tumor Model. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 15 (3), 269-274 (2004).
- Bimonte, S., et al. Induction of VX2 para-renal carcinoma in rabbits: generation of animal model for loco-regional treatments of solid tumors. Infectious Agents and Cancer. 11 (1), 1-8 (2016).
- Goldberg, S. N., Gazelle, G. S., Compton, C. C., Mueller, P. R., McLoud, T. C. Radio-frequency tissue ablation of VX2 tumor nodules in the rabbit lung. Academic Radiology. 3 (11), 929-935 (1996).
- Rhee, T. K., et al. Rabbit VX2 Tumors as an Animal Model of Uterine Fibroids and for Uterine Artery Embolization. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 18 (3), 411-418 (2007).
- Parvinian, A., Casadaban, L. C., Gaba, R. C. Development, growth, propagation, and angiographic utilization of the rabbit VX2 model of liver cancer: A pictorial primer and "how to" guide. Diagnostic and Interventional Radiology. 20 (4), 335-340 (2014).
- Xia, X., et al. Intra-arterial interleukin-12 gene delivery combined with chemoembolization: Anti-tumor effect in a rabbit hepatocellular carcinoma (HCC) model. Acta Radiologica. 54 (6), 684-689 (2013).
- Gaba, R. C., et al. Ethiodized oil uptake does not predict doxorubicin drug delivery after chemoembolization in VX2 liver tumors. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 23 (2), 265-273 (2012).
- Choi, Y. H., et al. Novel Intraarterial Therapy for Liver Cancer Using Ethylbromopyruvate Dissolved in an Iodized Oil. Academic Radiology. 18 (4), 471-478 (2011).
- Ma, H. L., Xu, Y. F., Qi, X. R., Maitani, Y., Nagai, T. Superparamagnetic iron oxide nanoparticles stabilized by alginate: Pharmacokinetics, tissue distribution, and applications in detecting liver cancers. International Journal of Pharmaceutics. 354 (1-2), 217-226 (2008).
- Wang, D., et al. Liver tumors: Monitoring embolization in rabbits with VX2 tumors -Transcatheter intraarterial first-pass perfusion MR imaging. Radiology. 245 (1), 130-139 (2007).
- Bimonte, S., et al. Radio-frequency ablation-based studies on VX2rabbit models for HCC treatment. Infectious Agents and Cancer. 11 (1), (2016).
- Gaba, R., Obeid, M., Khabbaz, R., Garcia, K., Schachtschneider, K. Translational Animal Models for Liver Cancer. American Journal of Interventional Radiology. 2 (2), 1-8 (2018).
- Kuszyk, B. S., et al. Local tumor recurrence following hepatic cryoablation: radiologic-histopathologic correlation in a rabbit model. Radiology. 217 (2), 477-486 (2000).
- Geschwind, J., et al. Chemoembolization of Liver Tumor in a Rabbit Model Assessment of Tumor Cell Death with Diffusion-Weighted MR Imaging and Histologic Analysis. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 11 (10), 1245-1255 (2000).
- Virmani, S., et al. Comparison of Two Different Methods for Inoculating VX2 Tumors in Rabbit Livers and Hind Limbs. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 19 (6), 931-936 (2008).
- Seldinger, S. I. Catheter replacement of the needle in percutaneous arteriography: A new technique. Acta Radiologica. 49 (SUPPL 434), 47-52 (2008).
- Schook, L. B., et al. A genetic porcine model of cancer. PLoS One. 10 (7), e0128864 (2015).
