Desarrollo y aplicación angiográfica del conejo VX2 modelo de cáncer de hígado
Summary
El objetivo de este artículo es proporcionar una cartilla para el desarrollo y uso del modelo de conejo de carcinoma VX2 para cáncer de hígado.
Abstract
El tumor VX2 de conejo es un animal modelo comúnmente utilizado para la investigación traslacional sobre carcinoma hepatocelular (HCC) en el campo de la radiología intervencionista. Este modelo emplea un anaplástico de células escamosas que se propaga fácilmente y confiablemente en el músculo esquelético de conejo de donantes para la eventual implantación cosecha y del allograft en el hígado de los receptores ingenuos. Este injerto tumor crece rápidamente dentro del hígado de conejos receptores en un tumor angiographically identificable, caracterizado por un núcleo necrótico rodeado por una cápsula de hypervascular viable. El tamaño físico de la anatomía del conejo es suficiente para facilitar la instrumentación vascular que permite la aplicación y prueba de diversas técnicas de intervención. A pesar de estos beneficios, existe una escasez de recursos técnicos para actuar como una referencia concreta para los investigadores que trabajan con el modelo. Adjunto, presentamos un esquema visual completa de los aspectos técnicos del desarrollo, crecimiento, propagación y utilización angiográfica del modelo de tumor VX2 conejo para uso de principiantes y experimentados investigadores por igual.
Introduction
El modelo de tumor VX2 conejo ha desempeñado un papel en oncología experimental desde su desarrollo en 19351,2. Este tumor es un inducido por virus anaplásico células escamosas caracterizado por hypervascularity, rápido crecimiento y fácil propagación en el músculo esquelético3,4. Mientras que el modelo de tumor conejo VX2 se ha utilizado para investigar una multitud de cánceres5,6,7,8; el enfoque de este trabajo es el cáncer de hígado9.
El propósito del método descrito es presentar un modelo para el cáncer primario del hígado o carcinoma hepatocelular (HCC), que puede ser utilizado por los radiólogos intervencionistas para la investigación traslacional. Puede ser utilizado para estudios farmacocinéticos, las investigaciones terapéuticas y método ablativo pruebas10,11,12,13,14,15.
El método detallado en el presente documento proporciona varias ventajas sobre otros modelos en el mismo ámbito como modelos de roedores como ratas, ratones y las marmotas o modelos más grandes como primates16. Uno de los principales beneficios es el crecimiento del tumor rápido y fiable que permite a los investigadores a establecer una línea de tumor activo dentro de un mes del primer extremidades propagación17. Además, este tumor tiene visibilidad directa de sonográfica y una periferia de hypervascular que permite tratamientos locorregionales de transarterial y terapias ablativas. Finalmente y lo más importante, el tamaño de la vasculatura del conejo permite técnicamente fácil y factible utilización de instrumentación vascular18.
Protocol
Representative Results
Discussion
El primer paso crítico en la metodología de tumor VX2 es propagación exitosa de un tumor en la extremidad trasera de un conejo donador. Se refieren al primer párrafo en la sección de “Resultados de representante” para más información sobre este paso.
El próximo paso crítico es asegurar que la cápsula del tumor viable se identifica correctamente. No sólo será necesario para la preparación de la suspensión de tumor, pero también es importante para la selección y generación de pi…
Declarações
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Nos gustaría reconocer el personal veterinario de la Universidad de Illinois – laboratorio Chicago de recursos biológicos.
Materials
| MethoCult (Methycellulose) | Stemcell Technologies | M3134 | |
| VX2 Cell Line | NCI | VX-2 | |
| 5 mL Syringe | BD | 309646 | |
| 16-Gauge Needle | BD | 305197 | |
| 22-Gauge Needle | BD | 305155 | |
| Hair Clippers | Wahl | 41870-0438 | |
| Foam Insulated Box | Mr. Box Online | 10 x 10 x 4 | |
| Acepromazine | Henry Schein | 003845 | |
| Buprenorphine | Par | 42023-179-05 | |
| Meloxicam | Henry Schein | 049755 | |
| Alcohol Pads | Covidien | 5033 | |
| Ketamine | Henry Schein | 056344 | |
| Xylazine | Akorn | 59399-110-20 | |
| Pentobarbital (Fatal-Plus) | Vortech | 9373 | |
| Sterile Petri Dish | Thermo Fisher | 172931 | |
| DMEM | Gibco | 11965092 | |
| Saline | Baxter | 2F7124 | |
| 15-Blade | Steris | 02-050-015 | |
| Scalpel Handle x 2 | Steris | 22-2381 | |
| Curved Hemostat | WPI | 501288 | |
| Atraumatic Forceps | Sklar | 52-5077 | |
| Gauze | Medline | NON21430LF | |
| 11-Blade | Steris | 02-050-011 | |
| Surgicel | Ethicon | 1951 | |
| 3-0 PDS / Taper | Ethicon | Z305H | |
| 4 – 0 Vicryl / Cutting | Ethicon | J392H | |
| 40 micron strainer | BD | 352340 | |
| 50 mL conical tube | Thermo Fisher | 339652 | |
| plastic pipette | Thomas Scientific | HS206371B | |
| Centrifuge | Sorvall | 75004240 | |
| 1.40mL Tubes (Internal Thread) | Micronic | MP32131-Z20 | |
| 3-F VSI Micro-HV Introducer Kit | Vascular Solutions | Custom Order (P15180391) | |
| .018 45-degree angle glidewire | Terumo | RG*GA1818SA | |
| Direxion bern-shape microcatheter | Boston Scientific | M001195230 | |
| Omnipaque | GE | Y510 |
Referências
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