L’obiettivo di questo articolo è di fornire un primer per lo sviluppo e l’utilizzo del VX2 carcinoma Coniglio modello per cancro del fegato.
Il tumore VX2 coniglio è un modello animale utilizzato comunemente per ricerca traslazionale per quanto riguarda il carcinoma epatocellulare (HCC) nel campo della radiologia interventistica. Questo modello si avvale di un carcinoma di cellule squamous anaplastico che è affidabile e facilmente propagato nel muscolo scheletrico dei conigli di donatore per eventuale impianto di vendemmia e allotrapianto nel fegato di destinatari ingenui. Questo innesto tumore cresce rapidamente all’interno del fegato dei conigli destinatari in un tumore angiograficamente identificabile caratterizzato da un nucleo necrotico circondato da una capsula di hypervascular praticabile. La dimensione fisica dell’anatomia coniglio è sufficiente per facilitare strumentazione vascolare che permette per l’applicazione e la sperimentazione di varie tecniche interventistiche. Nonostante questi vantaggi, esiste una scarsità di risorse tecniche per agire come un riferimento concreto per i ricercatori che lavorano con il modello. Qui, presentiamo un contorno visivo completo per gli aspetti tecnici di sviluppo, crescita, propagazione e angiografico utilizzazione del modello di tumore VX2 coniglio per uso da novizio e ricercatori esperti allo stesso modo.
Il modello di tumore VX2 coniglio ha svolto un ruolo in oncologia sperimentale dal suo sviluppo nel 19351,2. Questo tumore è un virus-indotta Anaplastico carcinoma di cellule squamous caratterizzato da hypervascularity, crescita rapida e facile propagazione in muscolo scheletrico3,4. Mentre il modello di tumore di coniglio VX2 è stato utilizzato per indagare una moltitudine di cancri5,6,7,8; il focus di questo lavoro è il cancro del fegato9.
Lo scopo del metodo descritto è quello di presentare un modello per cancro del fegato primario, o il carcinoma epatocellulare (HCC), che può essere utilizzato da radiologi interventisti per ricerca traslazionale. Può essere utilizzato per studi di farmacocinetica, le indagini terapeutiche e metodo ablativo test10,11,12,13,14,15.
Il metodo qui dettagliato dà più vantaggi rispetto ad altri modelli all’interno della stessa sfera come modelli di roditori come i ratti, topi e marmotte o modelli più grandi come primati16. Uno dei principali vantaggi è la crescita tumorale rapida e affidabile che permette ai ricercatori di stabilire una linea di tumore attivo entro un mese prima dell’arto propagazione17. Inoltre, questo tumore ha visibilità ecografica semplice e una periferia hypervascular che consente sia transarterial locoregionale trattamenti e le terapie ablative. Infine e soprattutto, la dimensione del vasculature coniglio consente fattibile e tecnicamente facile utilizzazione di strumentazione vascolare18.
Il primo passo fondamentale nella metodologia del tumore VX2 è successo propagazione di un tumore dell’arto posteriore di un coniglio di donatore. Fare riferimento al primo paragrafo nella sezione “Rappresentante risultati” per ulteriori informazioni su questo passaggio.
Il prossimo passo critico consiste nel garantire che la capsula del tumore possibile è correttamente identificata. Non solo questo sarà necessario per la preparazione di sospensioni di tumore, ma è anche importante per la …
The authors have nothing to disclose.
Vorremmo ringraziare il personale veterinario presso la University of Illinois – laboratorio Chicago biologico di risorse.
MethoCult (Methycellulose) | Stemcell Technologies | M3134 | |
VX2 Cell Line | NCI | VX-2 | |
5 mL Syringe | BD | 309646 | |
16-Gauge Needle | BD | 305197 | |
22-Gauge Needle | BD | 305155 | |
Hair Clippers | Wahl | 41870-0438 | |
Foam Insulated Box | Mr. Box Online | 10 x 10 x 4 | |
Acepromazine | Henry Schein | 003845 | |
Buprenorphine | Par | 42023-179-05 | |
Meloxicam | Henry Schein | 049755 | |
Alcohol Pads | Covidien | 5033 | |
Ketamine | Henry Schein | 056344 | |
Xylazine | Akorn | 59399-110-20 | |
Pentobarbital (Fatal-Plus) | Vortech | 9373 | |
Sterile Petri Dish | Thermo Fisher | 172931 | |
DMEM | Gibco | 11965092 | |
Saline | Baxter | 2F7124 | |
15-Blade | Steris | 02-050-015 | |
Scalpel Handle x 2 | Steris | 22-2381 | |
Curved Hemostat | WPI | 501288 | |
Atraumatic Forceps | Sklar | 52-5077 | |
Gauze | Medline | NON21430LF | |
11-Blade | Steris | 02-050-011 | |
Surgicel | Ethicon | 1951 | |
3-0 PDS / Taper | Ethicon | Z305H | |
4 – 0 Vicryl / Cutting | Ethicon | J392H | |
40 micron strainer | BD | 352340 | |
50 mL conical tube | Thermo Fisher | 339652 | |
plastic pipette | Thomas Scientific | HS206371B | |
Centrifuge | Sorvall | 75004240 | |
1.40mL Tubes (Internal Thread) | Micronic | MP32131-Z20 | |
3-F VSI Micro-HV Introducer Kit | Vascular Solutions | Custom Order (P15180391) | |
.018 45-degree angle glidewire | Terumo | RG*GA1818SA | |
Direxion bern-shape microcatheter | Boston Scientific | M001195230 | |
Omnipaque | GE | Y510 |