Summary

Fabrikasjon av Decellularized brusk-avledet Matrix stillaser

Published: January 07, 2019
doi:

Summary

Decellularized brusk-avledet stillaser kan brukes som et stillas guide brusk reparasjon og som et middel til å regenerere osteochondral vev. Dette dokumentet beskriver decellularization i detalj og gir forslag til å bruke disse stillaser i vitro innstillinger.

Abstract

Osteochondral feil mangel iboende reparasjon kapasitet til å regenerere funksjonelt lyd bein og brusk vev. Til dette omfang, har brusk forskning fokusert på utvikling av regenererende stillaser. Denne artikkelen beskriver utviklingen av stillaser som helt stammer fra naturlige brusk ekstracellulær matrix, kommer fra en jevndøgn giver. Potensielle anvendelser av stillasene inkluderer produsere allografts brusk reparasjon, som et stillas for osteochondral vev engineering, og gir i vitro modeller for å studere vev formasjonen. Decellularizing vev, donor cellene er fjernet, men mange av de naturlige bioaktive signaler antas å bli beholdt. Den største fordelen med å bruke en naturlig stillaset i forhold til en syntetisk stillaset er at ingen ytterligere functionalization av polymerer er nødvendig for å kjøre osteochondral vev gjenfødelse. Brusk-avledet matrix stillasene kan brukes for bein og brusk vev gjenfødelse i både i vivo og in vitro innstillinger.

Introduction

Articular brusk feil i kneet forårsaket av traumatiske hendelser kan føre til ubehag og fremfor alt kan ha en stor innvirkning på livene til de unge og aktive1,2,3. Videre kan skader brusk i ung alder føre til en rask utbruddet av slitasjegikt senere i livet4. Foreløpig er bare berging behandling for generalisert slitasjegikt i kneet felles utskifting kirurgi. Brusk er en hypocellular, aneural og avascular vev, er regenererende kapasiteten sterkt begrenset. Derfor er regenerativ medisin tilnærminger ettertraktede å støtte og stimulere regenerativ kapasiteten av innfødte vev. For dette formålet, er stillasene utformet og brukes som enten en celle-operatør eller en induktiv materiale som oppfordrer differensiering og regenerering av vev av kroppens eget celler5.

Decellularized stillaser har vært mye studert i regenerativ medisin6. Det har hatt suksess, for eksempel i å hjelpe fornyelse av huden7, abdominal strukturer8og sener9. Fordelen med decellularized stillasene er deres naturlig opprinnelse og deres evne til å beholde bioaktive signaler som både tiltrekke og indusere celledifferensiering inn den riktige linjen kreves for vev reparasjon6,10. Videre siden ekstracellulær matrix (EFM) er en naturlig biomateriale, og decellularization forhindrer at en potensiell immunrespons ved å fjerne cellulære eller genetisk innhold, er spørsmål om biocompatibility og biologisk nedbrytbarhet overvunnet.

Brusk-avledet matrix (CDM) stillaser har vist store chondrogenic potensielle ved in vitro eksperimenter når seeded mesenchymal stromal celler11. Dessuten, har disse stillaser vist potensialet til skjemaet benvev gjennom endochondral forbening på ektopisk steder i vivo innstillinger12. Som CDM stillaser guide dannelsen av begge bein og brusk vev, disse stillaser kan holde potensielle osteochondral defekt reparasjon i tillegg brusk reparasjon.

Denne artikkelen beskriver en protokoll tilpasset fra Yang et al. (2010)13 for produksjon av decellularized CDM stillaser fra equine kvele brusk. Disse stillasene er rik i collagen type II og blottet for celler, og inneholder ikke noen glycosaminoglycans (GAGs) etter decellularization. Både i vitro og in vivo eksperimenter på (osteo) chondral defekt reparasjon kan utføres ved hjelp av disse stillaser.

Protocol

For denne protokollen, er equine kveler brusk Hentet fra hester som hadde dødd av andre årsaker enn slitasjegikt. Tissue ble oppnådd med tillatelse fra eierne, i tråd med institusjonelle etiske regelverket. Merk: Denne protokollen beskriver fabrikasjon av stillaser fra decellularized jevndøgn brusk, som kan brukes for programmer som i vitro vev kultur plattformer eller i vivo implantasjon i regenerativ medisin strategier. Enzymatisk behandling trinnene m…

Representative Results

Decellularization av CDM stillaser må alltid bekreftes ved hjelp av histologiske stainings samt bruke DNA kvantifisering for å måle mengden av DNA restene. Utilstrekkelig decellularization kan føre til uønskede immunologiske svar som påvirker resultatene i i vivo innstillinger15,16,17. For denne bestemte decellularization metoden, DNA var under gjenkjenning området, som startet på 13.6 ±…

Discussion

ECM av articular brusk er svært tett og helt motstandsdyktige mot ulike enzymatisk behandlinger. Flere trinn decellularization protokollen beskrevet i denne artikkelen løser slik motstand og genererer vellykket decellularized matriser. For å oppnå dette, spenner prosessen over flere dager. Mange decellularization prosesser er foreslått for ulike typer vev18, og denne artikkelen beskriver en protokoll som er egnet for decellularization av brusk. I denne protokollen er det imidlertid nødvendig…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne ønsker å erkjenne W. støvel for hjelp i produksjonen av stillasene. K.E.M. Benders støttes av Alexandre Suerman Stipendium fra University Medical Center. R. Levato og J. Malda støttes av nederlandske leddgikt Foundation (gi avtaler CO-14-1-001 og LLP-12, henholdsvis).

Materials

Cadaveric joint This can be obtained as rest material from the local butcher or veterinary center.
Sterile phosphate-buffered saline (PBS)
Penicillin-Streptomycin Gibco 15140
Amphotericin B Thermo Fischer Scientific 15290026
Liquid nitrogen
Trypsin-EDTA (0.25%), phenol red Thermo Fischer Scientific 25200072
Tris-HCl pH 7.5
Deoxyribonuclease I from bovine pancreas Sigma-Aldrich DN25
Ribonuclease A from bovine pancreas Sigma-Aldrich R6513
Triton X-100 (octoxynol-1) Sigma-Aldrich X100
Papain Sigma-Aldrich P3125
Trisodium citrate dihydrate Sigma-Aldrich S4641
Alginate Sigma-Aldrich 180947
Formalin
CaCl2
Ethanol
Xylene
Paraffin
Ethylene oxide sterilization Synergy Health, Venlo, the Netherlands
Multipotent Stromal cells/chondrocytes from equine donors MSCs and chondrocytes can be isolated from donor joints that are rest material, coming from the local butcher or veterinary center.
MEM alpha Thermo Fischer Scientific 22561
L-ascorbic acid 2-phosphate Sigma-Aldrich A8960
DMEM Thermo Fischer Scientific 41965
Heat inactivated bovine serum albumin Sigma-Aldrich 10735086001
Fibroblast growth factor-2 (FGF-2) R & D Systems 233-FB
DNA quantification kit (Quant-iT PicoGreen dsDNA Reagent) Thermo Fischer Scientific P7581
1,9-Dimethyl-Methylene Blue zinc chloride double salt Sigma-Aldrich 341088
Freeze-dryer SALMENKIPP ALPHA 1-2 LD plus
Analytical mill IKA A 11 basic
mortar/pestle Haldenwanger 55/0A
Roller plate CAT RM5
Centrifuge (for 50 mL tubes) Eppendorf 5810R
Capsule (cylindric mold) TAAB 8 mm flat
Superlight S UV Lumatec 2001AV
Incubator
Microtome
Sieve (mesh size 0.71 mm) VWR 34111229
Scalpel
Scalpel holder
Small laddle

Referências

  1. Dunlop, D. D., et al. Risk factors for functional decline in older adults with arthritis. Arthritis and rheumatism. 52 (4), 1274-1282 (2005).
  2. Fitzpatrick, K., Tokish, J. M. A military perspective to articular cartilage defects. The journal of knee surgery. 24 (3), 159-166 (2011).
  3. Flanigan, D. C., Harris, J. D., Trinh, T. Q., Siston, R. A., Brophy, R. H. Prevalence of chondral defects in athletes’ knees: a systematic review. Medicine and science in sports and exercise. 42 (10), 1795-1801 (2010).
  4. Martel-Pelletier, J., Boileau, C., Pelletier, J. P., Roughley, P. J. Cartilage in normal and osteoarthritis conditions. Best practice & research. Clinical rheumatology. 22 (2), 351-384 (2008).
  5. Vinatier, C., et al. Cartilage tissue engineering: towards a biomaterial-assisted mesenchymal stem cell therapy. Current stem cell research & therapy. 4 (4), 318-329 (2009).
  6. Taylor, D. A., Sampaio, L. C., Ferdous, Z., Gobin, A. S., Taite, L. J. Decellularized matrices in regenerative medicine. Acta biomaterialia. 74, 74-89 (2018).
  7. Vashi, C. Clinical Outcomes for Breast Cancer Patients Undergoing Mastectomy and Reconstruction with Use of DermACELL, a Sterile, Room Temperature Acellular Dermal Matrix. Plastic Surgery International. 2014 (704323), 1-7 (2014).
  8. Satterwhite, T. S., et al. Abdominal wall reconstruction with dual layer cross-linked porcine dermal xenograft: the "Pork Sandwich" herniorraphy. Journal of plastic, reconstructive & aesthetic surgery : JPRAS. 65 (3), 333-341 (2012).
  9. Martinello, T., et al. Successful recellularization of human tendon scaffolds using adipose-derived mesenchymal stem cells and collagen gel. Journal of tissue engineering and regenerative medicine. 8 (8), 612-619 (2014).
  10. Benders, K. E., et al. Extracellular matrix scaffolds for cartilage and bone regeneration. Trends in biotechnology. 31 (3), 169-176 (2013).
  11. Benders, K. E., et al. Multipotent Stromal Cells Outperform Chondrocytes on Cartilage-Derived Matrix Scaffolds. Cartilage. 5 (4), 221-230 (2014).
  12. Gawlitta, D., et al. Decellularized cartilage-derived matrix as substrate for endochondral bone regeneration. Tissue engineering. Part A. 21 (3-4), 694-703 (2015).
  13. Yang, Z., et al. Fabrication and repair of cartilage defects with a novel acellular cartilage matrix scaffold. Tissue engineering. Part C, Methods. 16 (5), 865-876 (2010).
  14. Pittenger, M. F., et al. Multilineage potential of adult human mesenchymal stem cells. Science. 284 (5411), 143-147 (1999).
  15. Meyer, S. R., et al. Decellularization reduces the immune response to aortic valve allografts in the rat. The Journal of thoracic and cardiovascular surgery. 130 (2), 469-476 (2005).
  16. Brown, B. N., Valentin, J. E., Stewart-Akers, A. M., McCabe, G. P., Badylak, S. F. Macrophage phenotype and remodeling outcomes in response to biologic scaffolds with and without a cellular component. Biomaterials. 30 (8), 1482-1491 (2009).
  17. Keane, T. J., Londono, R., Turner, N. J., Badylak, S. F. Consequences of ineffective decellularization of biologic scaffolds on the host response. Biomaterials. 33 (6), 1771-1781 (2012).
  18. Crapo, P. M., Gilbert, T. W., Badylak, S. F. An overview of tissue and whole organ decellularization. Biomaterials. 32 (12), 3233-3243 (2011).
  19. Malda, J., et al. Of mice, men and elephants: the relation between articular cartilage thickness and body mass. PloS One. 8 (2), e57683 (2013).
  20. Malda, J., et al. Comparative study of depth-dependent characteristics of equine and human osteochondral tissue from the medial and lateral femoral condyles. Osteoarthritis and Cartilage. 20 (10), 1147-1151 (2012).
  21. Londono, R., Badylak, S. F. Biologic scaffolds for regenerative medicine: mechanisms of in vivo remodeling. Annals of biomedical engineering. 43 (3), 577-592 (2015).
  22. Gilbert, T. W. Strategies for tissue and organ decellularization. Journal of cellular biochemistry. 113 (7), 2217-2222 (2012).
check_url/pt/58656?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Benders, K. E., Terpstra, M. L., Levato, R., Malda, J. Fabrication of Decellularized Cartilage-derived Matrix Scaffolds. J. Vis. Exp. (143), e58656, doi:10.3791/58656 (2019).

View Video