Summary

Otomatik bir canlı hücre Imager kullanarak basit geçiş/işgali iş akışı

Published: February 02, 2019
doi:

Summary

Geçerli protokol kanser hücre göç ve gerçek zamanlı olarak tek bir platformda işgali araştırma, kolayca tekrarlanabilir ve zamanı verimli bir seçenek hücre hareketlilik ve morfoloji çalışmaya sağlayan entegre bir yöntemini açıklar.

Abstract

Kanser hücre hareketlilik metastaz kabul töreni için önemlidir. Bu nedenle, araştırma hücre hareket ve invaziv kapasitesi büyük önem taşıyor. İstila deneyleri içinde vivo kanser hücre dislodgment Orijinal siteden taklit ve hücre dışı matriks ile işgal daha fizyolojik alakalı ise geçiş deneyleri 2D bir düzeyde hücre hareketinin temel anlayış sağlar. Geçerli protokol geçişi ve işgal deneyleri için tek bir iş akışı sağlar. Entegre otomatik mikroskobik kamera ile birlikte gerçek zamanlı HD görüntüleri ve yerleşik analizi modülü için araştırmacılar bir zaman verimli, basit ve tekrarlanabilir deneysel seçeneği verir. Bu protokol sarf malzemeleri için oyuncu değişikliği ve alternatif analiz yöntemleri seçmek kullanıcılar için de içerir.

Introduction

Hücre göç ve işgal yara kapatma, plasenta rahim ve meme bezi morfogenez1,2,3içine işgali gibi insan vücudu normal işlevlerini etkinleştirmek önemli biyolojik işlemlerdir. İnsan vücudu bu biyolojik olayların hassas ve sıkı denetime sahip; Ancak, bazı istisnalar vardır. Malign tümörler, örneğin, bu korumayı kaçmak, anormal proliferasyonu sergi ve metastaz denir komşu doku istila edebiliyoruz. Metastaz kanserle ilgili mortalite4önemli nedenidir.

Meme kanseri en sık kadınlarda kanser tanısı ve gelişmiş ülkelerde dünya çapında5‘ kadınlar arasında kanser ile ilgili ölüm ikinci en yüksek nedeni var. Meme kanseri kanalları veya epitel hücrelerinin bir veya daha fazla kat oluşur lobules gelmektedir. Normal meme, epitel hücreleri birbirleriyle ve üzerinden E-cadherin ve integrinler6gibi membran proteinlerinin membran uygun. Ancak, invaziv meme kanseri hücrelerinin kendi Polarite ve hücre-hücre adezyon, kaybetmiş ve klasik epitel mezenkimal geçiş (EMT) geçmesi ve taşıma becerisi kazanırsınız. Ekstravazasyonu sonra bu hücreler hücre dışı matriks (ECM) gidin ve kan damarı veya lenfatik sistem, o zaman ardından intravasation ve metastatik büyüme7girin. Bu oluştuğu tarafından mekanizmaları anlama büyük önem taşıyor, metastaz Scotlan kanserle ilgili en sık nedenidir ve kanseri ile yakından ilgili geçiş/işgali hücre. Kanser hücrelerinin hareket görselleştirmek için göç ve işgal deneyleri hücre hareketi, 2D ve 3D sırasıyla eğitim için ideal modellerdir. İstila microenvironment ve biyolojik engelleri aşağılamak yeteneği ile etkileşimi içerir, ancak geçiş hücreleri hareket doğrudan değerlendiriyor. Geçiş işgalinin bir gereklilik olduğu gibi iki süreç bir başka tamamen bağımsız değildir.

Göç ve işgal çalışmaya çeşitli yöntemler geliştirilmiştir. Tarafından Kramer ve ark., yara iyileşmesi gibi geçiş deneyleri gözden olarak çit ve mikro-taşıyıcı deneyleri alan değişikliği değerlendiren hücreleri içine, taşımak izin vermek için bir boş hücre alanı oluşturmak; Oysa, transwell ve kılcal deneyleri cezbedici8doğru hareket hücreleri temel alır. İstila deneyleri için bir ECM ortam ECM jel veya kollajen ile örneğin ayarlanması gerekiyor ve 3D hareket değerlendirildi işgal alanı, mesafe ve hücre sayımları (örneğin transwell tahlil, platypus tahlil) izleyerek8. Başka bir istila tahlil non-invaziv hücreleri ile invaziv hücreleri birleştirmek ve invaziv hücreleri davranışını değerlendirmek için türüdür (örneğin küresel deneyleri). Belgili tanımlık yukarıda yöntem kendi artılarını ve eksilerini ve yaklaşım, tekrar ve geçiş tahlil birleştirmek kolay kolay bir şekilde ve işgal tahlil benzer iş akışında deneysel tasarım Tercihli.

Bu iletişim kuralı hücre göç ve canlı hücre Imager kullanarak işgali ölçümü açıklar. Standart hücre kültür kuluçka makinesine yüklü sistem izleme gerçek zamanlı bir hücredir. Yüksek çözünürlüklü görüntüleri tarama aralıkları ve ölçümler hücreleri veya floresan hedefler için uygun maskeleri uygulayarak kümesi göre alır. Geçiş/işgali tahlil modülü bir 96-şey tabak içinde sıfırdan yaraya homojen bir hücre monolayer yapmak için uygun bir 96-pin sıfırdan aracını kullanarak içerir. Mekanizması deneyleri şifa, bir plastik veya kaplı yüzey sadece 2D hücre hareket izleme tüp bebek yara temel alır. İşgal veya 3D hareket yara çizik içinde ek bir ECM arasında da tespit edilebilir. Kısa bir iş akışı Şekil 1‘ de gösterilmiştir.

Protocol

Not: İki hücre satırı ayrı olarak ele alınmalıdır. Aşağıdaki yordamlar tek tek hücre satıra uygulanan belirtilmediğinde. 1. hücre yoğunluğu yaralama önce optimize Kültür T75 cm2 doku kültürü şişeler yaklaşık % 80 yapışık hücreleri izdiham içinde fenol kırmızısı ücretsiz Dulbecco’nın modifiye kartal Orta (% 10 fetal Sığır serum (FBS), 200 mM L-glutamin ve % 5 CO2 () ile 37 ° C’de 2 µg/mL insülin ile tak…

Representative Results

Bu geçiş/işgali tahlil 96-pin karalama aracı tarafından oluşturulan boş hücre alana taşıma hücre oranı değerlendirir yara iyileşme tahlil temel alır. Göç ve işgal deneyleri arasındaki fark vardır geçiş ECM jel arasında hareket doku kültürü tedavi plastik yüzey ve işgal önlemler hücrelerde taşıma ölçü birimi hücre deneyleri. Karalama aracı belirlenen plaka tutarlı sıfırdan yara açmak için…

Discussion

Göç ve işgal kanser hücrelerinin hareketliliğini değerlendirmek için önemli parametreleridir. 96-pin karalama aracı kullanarak, aynı anda deneyleri 2D ve 3D şifa yara yapmak mümkündür. Otomatik tarama kolaylaştırıcı dışında en az kesinti ile istikrarlı hücre kültür ortamı sağlayarak 96-pin karalama Aracı kullanılarak yürütülen karalama tahlil daha sağlam deneyler etkinleştirme tutarlı sıfırdan yaralar sağlar ve tekrarlanabilir. 96-şey plaka biçim hücre hatları veya farklı ilaç …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bloomfield grup Vakfı aracılığıyla Hunter Tıbbi Araştırma Enstitüsü (HMRI 13-02) tarafından finansman destek kabul etmek istiyoruz. X.Z bir APA burs ile Newcastle Üniversitesi ve HCRA biyolojik amiral gemisi Doktora Bursu tarafından desteklenir.

Materials

0.5% trypsin-EDTA solution (10x) ThermoFisher Scientific 30028-02 Dilute to 2x in DPBS
Countess II FL Automated Cell Counter ThermoFisher Scientific AMQAX1000 Automated cell counter
Detergent 1 (Alconox) Sigma-Aldrich 242985 0.5% working concentration
Detergent 2 (Virkon S) VetProduct DIRECT 1% working concentration
Dulbecco’s Modified Eagle Medium, no phenol-red ThermoFisher Scientific 21063-045 Supplimented with 10% FBS, 200 mM L-glutamine, 2 μg/ml insulin
ECM Gel (matrigel) Sigma-Aldrich E6909 Growth-factor reduced, phenol red free
Essen ImageLock 96-well plate, flat bottom Essen 4379
EVE Counting slides BioTools EVS-50
Fetal bovine serum (FBS) Bovogen Biologicals SFBS-F-500ml
IncuCyte 96-well scratch wound cell invasion accessories Essen 4444 Including CoolBox, 2x CoolSink
IncuCyte Cell migration kit Essen 4493 Including the 96-well pin block, 2x wash boats and the software
IncuCyte ZOOM Essen Live cell analysis system
Insulin solution human Sigma-Aldrich 19278-5ML
L-glutamine solution (100x) ThermoFisher Scientific 25030-091
Tissue culture flask, 75 cm2 growth area Greiner Bio-One 658175

Referências

  1. Graham, C. H., Lala, P. K. Mechanisms of placental invasion of the uterus and their control. Biochemistry and Cell Biology. 70, 867-874 (1992).
  2. Affolter, M., Zeller, R., Caussinus, E. Tissue remodelling through branching morphogenesis. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 10, 831-842 (2009).
  3. Brugues, A., et al. Forces driving epithelial wound healing. Nature Physics. 10, 683-690 (2014).
  4. Weigelt, B., Peterse, J. L., van’t Veer, L. J. Breast cancer metastasis: markers and models. Nature Reviews Cancer. 5, 591-602 (2005).
  5. Kalluri, R., Weinberg, R. A. The basics of epithelial-mesenchymal transition. Journal of Clinical Investigation. 119, 1420-1428 (2009).
  6. Scully, O. J., Bay, B. H., Yip, G., Yu, Y. Breast cancer metastasis. Cancer Genomics Proteomics. 9, 311-320 (2012).
  7. Kramer, N., et al. In vitro cell migration and invasion assays. Mutation Research/Reviews in Mutation Research. 752, 10-24 (2013).
  8. Holliday, D. L., Speirs, V. Choosing the right cell line for breast cancer research. Breast Cancer Research. 13, 215 (2011).
  9. Clark, A. G., Vignjevic, D. M. Modes of cancer cell invasion and the role of the microenvironment. Current Opinion in Cell Biology. 36, 13-22 (2015).
check_url/pt/59042?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Zhang, X., Morten, B. C., Scott, R. J., Avery-Kiejda, K. A. A Simple Migration/Invasion Workflow Using an Automated Live-cell Imager. J. Vis. Exp. (144), e59042, doi:10.3791/59042 (2019).

View Video