Summary

Induktion och poängsättning av graft-versus-host-sjukdom i en Xenogeneisk murin modell och kvantifiering av humana T-celler i mus vävnader med hjälp av digital PCR

Published: May 23, 2019
doi:

Summary

Här presenterar vi ett protokoll för att inducera och värdering sjukdom i en xenogena graft-versus-host sjukdom (xenogvhd) modell. xenoGVHD ger en in vivo-modell för att studera immunsuppression av humana T-celler. Dessutom beskriver vi hur man detekterar humana T-celler i vävnader med digital PCR som ett verktyg för att kvantifiera immunsuppression.

Abstract

Akut transplantat-kontra-värd sjukdom (GVHD) är en signifikant begränsning för patienter som får hematopoietisk stamcellstransplantation som terapi för hematologiska brister och maligniteter. Akut GVHD uppstår när givare T-celler erkänna värd vävnader som ett främmande antigen och montera ett immunsvar till värden. Nuvarande behandlingar innebär giftiga immunsuppressiva läkemedel som gör patienter mottagliga för infektion och recidiv. Sålunda, det finns pågående forskning för att ge en akut GVHD terapi som effektivt kan rikta givare T-celler och minska biverkningar. Mycket av detta prekliniska arbete använder den xenogena GvHD (xenogvhd) murina modell som möjliggör testning av immunsuppressiva terapier på mänskliga celler snarare än murina celler i ett in vivo-system. Detta protokoll beskriver hur man inducerar xenoGVHD och hur man blinda och standardisera kliniska scoring för att säkerställa konsekventa resultat. Dessutom beskriver detta protokoll hur man använder digital PCR för att detektera humana T-celler i mus vävnader, som sedan kan användas för att kvantifiera effekten av testade terapier. Den xenoGVHD modellen ger inte bara en modell för att testa GVHD terapier men någon behandling som kan undertrycka mänskliga T-celler, som sedan kan tillämpas på många inflammatoriska sjukdomar.

Introduction

Allogen hematopoietisk stamcellstransplantation (HSCT) har blivit rutinmässig behandling för patienter som lider av hematologiska maligniteter såsom leukemi med dålig prognos. En signifikant komplikation av HSCT är akut transplantat-kontra-värd sjukdom (GVHD). En 2012 studie rapporterade att akut GVHD utvecklades i 39% av HSCT patienter som fick transplantationer från syskon givare och 59% av patienterna som fick transplantationer från icke-närstående givare1. Akut GVHD uppstår när givare härledda T-celler angriper mottagarens organ. Den enda lyckade behandlingen för GVHD är behandling med mycket immunsuppressiva läkemedel2, som är mycket giftiga och ökar risken för infektion och tumör upprepning. Således, trots förbättringar som har gjorts i akut GvHD överlevnad under de senaste åren3,4,5, det finns fortfarande ett kritiskt behov av förbättrade GvHD terapier med minimal toxicitet som främjar långsiktig remission.

Det övergripande målet med följande metoder är att inducera och poängsätter xenogena GvHD (xenogvhd). Den xenoGVHD modell utvecklades som ett verktyg för att inducera akut GVHD med mänskliga celler snarare än murina celler möjliggör mer direkt översättning av preklinisk GVHD forskning till kliniska prövningar6. Denna modell innebär intravenöst injicering av Human perifert blod mononukleära celler (PBMC) i NOD-SCID IL-2Rγnull (NSG) möss som är sublethally bestrålade. Injicerade humana t-celler aktiveras av humana antigen presenterande celler (APCS) som presenterar murinantigen och de aktiverade T-cellerna migrerar till avlägsna vävnader som resulterar i systemisk inflammation och i slutändan död6,7, 8 , 9 , 10. sjukdoms patologi och progression i xenogvhd-modellen imiterar nära Human akut GvHD. Specifikt, de patogena humana T-celler är reaktiva till murina större histocompatibility complex (MHC) proteiner, som liknar den T-cell alloreactivity i humant GvHD6,9. Den främsta fördelen med xenoGVHD modellen över musen MHC-mismatch modell, den andra allmänt använda GVHD-modellen, är det gör det möjligt för testning av terapier på mänskliga celler snarare än murina celler. Detta gör det möjligt för testning av produkter som direkt kan översättas till kliniken utan några ändringar eftersom de är gjorda för att rikta mänskliga celler. Nyligen har denna modell använts för att testa en human anti-IL-2 antikropp11, mänskliga thymic reglerande T-celler (Tregs)12 och mänskliga mesenkymala stamceller13 som potentiella behandlingar för akut GvHD. I ett bredare sammanhang, denna modell kan användas som en in vivo dämpning analys för alla läkemedel eller celltyp som kan undertrycka mänsklig T cell aktivitet. Till exempel använde Stockis et al.14 xenoGVHD-modellen för att studera effekten av att blockera integrin αVβ8 på Treg suppressiv aktivitet in vivo. Således, den xenoGVHD modellen kan ge insikt i mekanismen för alla terapi inriktning T-celler i en in vivo inställning.

En ytterligare metod som beskrivs i detta protokoll är hur man upptäcker mänskliga T-celler i mus vävnader med hjälp av digital polymeras kedjereaktion (dpcr). Målet med denna metod är att erbjuda ett verktyg för att kvantifiera migration och spridning av T-celler i målvävnaderna, som mäter effekten av immunsuppressiva terapier som testas i denna modell. dPCR är en relativt ny metod för kvantifiering av nukleinsyror15. Kortfattat, PCR reaktionsblandningen är uppdelad i partitioner som innehåller små antal av målsekvensen eller inget mål alls. Målsekvensen förstärks sedan och detekteras med hjälp av DNA-interkalating färgämnen eller fluorescerande målspecifika sonder. dpcr kvantifierar antalet kopior av målsekvensen baserat på andelen positiva partitioner och Poissons statistik15,16. Detektera T-celler med dPCR kräver mycket mindre vävnad jämfört med andra alternativa metoder, inklusive flödescytometri och histologi, och kan utföras på fryst eller fast vävnad. dPCR kräver inte en standardkurva för att bestämma kopierings nummer och inte heller är tekniska replikat krävs. Detta minskar mängden reagens och mallDNA som behövs för dPCR jämfört med traditionell kvantitativ PCR (qPCR)16. Partitionering av PCR-reaktionen i sub-reaktioner i dPCR koncentrerar effektivt mål17. Således är dPCR främst ett verktyg för detektering av sällsynta mål i en stor mängd icke-måldna. Till exempel, dPCR används för att upptäcka bakteriell kontaminering i mjölk18, identifiera sällsynta mutationer i östrogen receptor genen19, och upptäcka cirkulerande tumör-DNA i blodet hos patienter20. I detta protokoll fungerar dPCR som ett effektivt verktyg för att detektera och kvantifiera humana T-celler i vävnader från möss med xenoGVHD.

Protocol

Alla mus experiment utfördes i överensstämmelse, och med godkännande från, University of Kansas Medical Center institutionella djuromsorg och användning kommittén. Alla friska humanblod prov erhölls under informerat samtycke och med godkännande från den institutionella Granskningsnämnden vid University of Kansas Medical Center. 1. bestrålning av NSG-möss En dag före PBMC injektion, bestråla 8 – 12-veckors gamla NSG möss (antingen kön kan användas). I ett sterilt b…

Representative Results

Sublethally bestrålade 8-12-veckors gamla NSG möss av båda könen som fick humant PBMC började Visa kliniska tecken på GVHD runt dag 10 efter injektion jämfört med negativa kontroll möss som fick PBS endast (figur 1a). XenoGVHD-möss hade en median överlevnad på 23,5 dagar (figur 1b). Med digital PCR kunde CD3 Epsilon positiva humana T-celler upptäckas i lungan och leverprover av möss som fick humant PBMC. Vävnadspro…

Discussion

Sjukdomsprogression är i allmänhet konsekvent i xenoGVHD-modellen, även med injektion av PBMC från olika givare, så att flera experiment kan kombineras. De viktigaste stegen som krävs för att bibehålla denna konsekvens är korrekt i.v. injektion teknik, bländande och konsekvent scoring. En studie av Nervi et al.25 visade att jämfört med intravenös svans ven injektion, retroorbital injektioner av PBMC resulterade i mer konsekvent engrafktion och mer svår GvHD. Leon-Rico et al.<sup clas…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi skulle vilja erkänna laboratoriet för Lane Christenson för att tillhandahålla den digitala PCR-maskin som används i dessa experiment och för den tekniska support som tillhandahålls. Vi skulle också vilja tacka Dr Thomas Yankee för hans vägledning och mentorskap. Dessa studier stöddes av tripp Family Foundation.

Materials

1.5 mL eppendorf tubes Fisher 05-408-129
10 mL serological pipet VWR International 89130-898
10mL BD Vacutainers – Green capped with Sodium Heparin Becton Dickinson 366480
250 µL Ranin pipette tips Rainin 17001118 Do not use other pipettes or pipet tips for droplet generation
50 mL conical tube VWR International 89039-656
96-Well ddPCR plate Bio-Rad 12001925
ACK (Ammonium-Chloride-Potassium) Lysing Buffer Lonza 10-548E Optional
Alcohol Wipes Fisher Scientific 6818
Anesthesia Chamber World Precision Instruments EZ-178 Provided by animal facility
Anesthesia Machine Parkland Scientific PM1002 Provided by animal facility
BD Vacutainer Safety-Lok Blood Collection Set Becton Dickinson 367281
DG8 Cartridges and Gaskets for QX100/QX200 Droplet Generator Bio-Rad 1864007
DNAse and RNAse free Molecular Grade H2O Life Technologies 1811318
Ethyl alcohol, Pure,200 proof, for molecular biology Sigma-Aldrich E7023-500ML
Fetal Bovine Serum Atlanta Biologicals S11150
Ficoll Fisher Scientific 45001750
Insulin Syringe Fisher Scientific 329424
Isoflurane Sigma-Aldrich CDS019936 Provided by animal facility
Liquid nitrogen N/A N/A
Mouse Irradiator Pie Cage Braintree Scientific, Inc. MPC 1 Holds up to 11 mice
Nexcare Gentle Paper Tape (a.k.a. 3M Micropore Surgical Tape / 3/4") Fisher Scientific 19-027-761
P1000 pipetman MidSci A-1000
P200 pipetman MidSci A-200
Pierceable Foil Heat Seal Bio-Rad 1814040
Pipetaid Gilson Macroman Fisher Scientific F110756
Pipet-Lite Multi Pipette L8-200XLS+ Rainin 17013805 Do not use other pipettes or pipet tips for droplet generation
Qiagen DNeasy Blood and Tissue Kit Qiagen 69506
qPCR plates VWR International 89218-292
QX200 Droplet Digital PCR System Bio-Rad 12001925 Includes droplet generator, droplet reader, laptop computer, software, associated component consumables, for EvaGreen or probe-based digital PCR applications
QX200 Droplet Generation Oil for EvaGreen Bio-Rad 1864006
QX200 ddPCR EvaGreen Supermix Bio-Rad 1864033
RNase and DNase-free plate seal Thermo Scientific 12565491
RPMI Advanced 1640 Life Technologies 12633012
Sterile Gauze Pads (2" x 2", 12-Ply) Fisher Scientific 67522
Sterile Phosphate Buffered Saline Fisher Scientific 21040CV
Sterile reservoir VWR International 89094-662
Surgial Scissors Kent Scientific INS600393-4
Surgical Forceps Kent Scientific INS650914-4

Referências

  1. Jagasia, M., et al. Risk factors for acute GVHD and survival after hematopoietic cell transplantation. Blood. 119 (1), 296-307 (2012).
  2. Bolanos-Meade, J., et al. Phase 3 clinical trial of steroids/mycophenolate mofetil vs steroids/placebo as therapy for acute GVHD: BMT CTN 0802. Blood. 124 (22), 3221-3227 (2014).
  3. Gooley, T. A., et al. Reduced mortality after allogeneic hematopoietic-cell transplantation. New England Journal of Medicine. 363 (22), 2091-2101 (2010).
  4. Hahn, T., et al. Significant improvement in survival after allogeneic hematopoietic cell transplantation during a period of significantly increased use, older recipient age, and use of unrelated donors. Journal of Clinical Oncology. 31 (19), 2437-2449 (2013).
  5. Khoury, H. J., et al. Improved survival after acute graft-versus-host disease diagnosis in the modern era. Haematologica. 102 (5), 958-966 (2017).
  6. King, M. A., et al. Human peripheral blood leucocyte non-obese diabetic-severe combined immunodeficiency interleukin-2 receptor gamma chain gene mouse model of xenogeneic graft-versus-host-like disease and the role of host major histocompatibility complex. Clinical & Experimental Immunology. 157 (1), 104-118 (2009).
  7. Lucas, P. J., Shearer, G. M., Neudorf, S., Gress, R. E. The human antimurine xenogeneic cytotoxic response. I. Dependence on responder antigen-presenting cells. Journal of Immunology. 144 (12), 4548-4554 (1990).
  8. Ito, R., et al. Highly sensitive model for xenogenic GVHD using severe immunodeficient NOG mice. Transplantation. 87 (11), 1654-1658 (2009).
  9. Kawasaki, Y., et al. Comprehensive Analysis of the Activation and Proliferation Kinetics and Effector Functions of Human Lymphocytes, and Antigen Presentation Capacity of Antigen-Presenting Cells in Xenogeneic Graft-Versus-Host Disease. Biology of Blood and Marrow Transplantation. 24 (8), 1563-1574 (2018).
  10. Ito, R., et al. A Novel Xenogeneic Graft-Versus-Host Disease Model for Investigating the Pathological Role of Human CD4(+) or CD8. T Cells Using Immunodeficient NOG Mice. American Journal of Transplantation. 17 (5), 1216-1228 (2017).
  11. Trotta, E., et al. A human anti-IL-2 antibody that potentiates regulatory T cells by a structure-based mechanism. Nature Medicine. 24 (7), 1005-1014 (2018).
  12. Dijke, I. E., et al. Discarded Human Thymus Is a Novel Source of Stable and Long-Lived Therapeutic Regulatory T Cells. American Journal of Transplantation. 16 (1), 58-71 (2016).
  13. Huang, F., et al. Human Gingiva-Derived Mesenchymal Stem Cells Inhibit Xeno-Graft-versus-Host Disease via CD39-CD73-Adenosine and IDO Signals. Frontiers in Immunology. 8, 68 (2017).
  14. Stockis, J., et al. Blocking immunosuppression by human Tregs in vivo with antibodies targeting integrin alphaVbeta8. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 114 (47), E10161-E10168 (2017).
  15. Vogelstein, B., Kinzler, K. W. Digital PCR. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 96 (16), 9236-9241 (1999).
  16. Quan, P. L., Sauzade, M., Brouzes, E. dPCR: A Technology Review. Sensors (Basel). 18 (4), (2018).
  17. Sykes, P. J., et al. Quantitation of targets for PCR by use of limiting dilution. Biotechniques. 13 (3), 444-449 (1992).
  18. Ma, H., et al. Evaluation of Bacterial Contamination in Goat Milk Powder Using PacBio Single Molecule Real-Time Sequencing and Droplet Digital PCR. Journal of Food Protection. , 1791-1799 (2018).
  19. Vitale, S. R., et al. An optimized workflow to evaluate estrogen receptor gene mutations in small amounts of cell-free DNA. Journal of Molecular Diagnostics. , (2018).
  20. Gorgannezhad, L., Umer, M., Islam, M. N., Nguyen, N. T., Shiddiky, M. J. A. Circulating tumor DNA and liquid biopsy: opportunities, challenges, and recent advances in detection technologies. Lab Chip. 18 (8), 1174-1196 (2018).
  21. Yardeni, T., Eckhaus, M., Morris, H. D., Huizing, M., Hoogstraten-Miller, S. Retro-orbital injections in mice. LabAnimal. 40 (5), 155-160 (2011).
  22. Machholz, E., Mulder, G., Ruiz, C., Corning, B. F., Pritchett-Corning, K. R. Manual restraint and common compound administration routes in mice and rats. Journal of Visualized Experiments. (67), (2012).
  23. Cooke, K. R., et al. An experimental model of idiopathic pneumonia syndrome after bone marrow transplantation: I. The roles of minor H antigens and endotoxin. Blood. 88 (8), 3230-3239 (1996).
  24. Weisdorf, D. J., et al. Prospective grading of graft-versus-host disease after unrelated donor marrow transplantation: a grading algorithm versus blinded expert panel review. Biology of Blood and Marrow Transplantation. 9 (8), 512-518 (2003).
  25. Nervi, B., et al. Factors affecting human T cell engraftment, trafficking, and associated xenogeneic graft-vs-host disease in NOD/SCID beta2mnull mice. Experimental Hematology. 35 (12), 1823-1838 (2007).
  26. Leon-Rico, D., et al. Comparison of haematopoietic stem cell engraftment through the retro-orbital venous sinus and the lateral vein: alternative routes for bone marrow transplantation in mice. LabAnimal. 49 (2), 132-141 (2015).
  27. Ali, N., et al. Xenogeneic graft-versus-host-disease in NOD-scid IL-2Rgammanull mice display a T-effector memory phenotype. PLoS One. 7 (8), e44219 (2012).
  28. van Rijn, R. S., et al. A new xenograft model for graft-versus-host disease by intravenous transfer of human peripheral blood mononuclear cells in RAG2-/- gammac-/- double-mutant mice. Blood. 102 (7), 2522-2531 (2003).
  29. Wunderlich, M., et al. OKT3 prevents xenogeneic GVHD and allows reliable xenograft initiation from unfractionated human hematopoietic tissues. Blood. 123 (24), e134-e144 (2014).
  30. Schroeder, M. A., DiPersio, J. F. Mouse models of graft-versus-host disease: advances and limitations. Disease Models & Mechanisms. 4 (3), 318-333 (2011).
  31. Zeiser, R., Blazar, B. R. Preclinical models of acute and chronic graft-versus-host disease: how predictive are they for a successful clinical translation?. Blood. 127 (25), 3117-3126 (2016).
check_url/pt/59107?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Seng, A., Markiewicz, M. A. Induction and Scoring of Graft-Versus-Host Disease in a Xenogeneic Murine Model and Quantification of Human T Cells in Mouse Tissues using Digital PCR. J. Vis. Exp. (147), e59107, doi:10.3791/59107 (2019).

View Video