Här presenterar vi ett protokoll för att inducera och värdering sjukdom i en xenogena graft-versus-host sjukdom (xenogvhd) modell. xenoGVHD ger en in vivo-modell för att studera immunsuppression av humana T-celler. Dessutom beskriver vi hur man detekterar humana T-celler i vävnader med digital PCR som ett verktyg för att kvantifiera immunsuppression.
Akut transplantat-kontra-värd sjukdom (GVHD) är en signifikant begränsning för patienter som får hematopoietisk stamcellstransplantation som terapi för hematologiska brister och maligniteter. Akut GVHD uppstår när givare T-celler erkänna värd vävnader som ett främmande antigen och montera ett immunsvar till värden. Nuvarande behandlingar innebär giftiga immunsuppressiva läkemedel som gör patienter mottagliga för infektion och recidiv. Sålunda, det finns pågående forskning för att ge en akut GVHD terapi som effektivt kan rikta givare T-celler och minska biverkningar. Mycket av detta prekliniska arbete använder den xenogena GvHD (xenogvhd) murina modell som möjliggör testning av immunsuppressiva terapier på mänskliga celler snarare än murina celler i ett in vivo-system. Detta protokoll beskriver hur man inducerar xenoGVHD och hur man blinda och standardisera kliniska scoring för att säkerställa konsekventa resultat. Dessutom beskriver detta protokoll hur man använder digital PCR för att detektera humana T-celler i mus vävnader, som sedan kan användas för att kvantifiera effekten av testade terapier. Den xenoGVHD modellen ger inte bara en modell för att testa GVHD terapier men någon behandling som kan undertrycka mänskliga T-celler, som sedan kan tillämpas på många inflammatoriska sjukdomar.
Allogen hematopoietisk stamcellstransplantation (HSCT) har blivit rutinmässig behandling för patienter som lider av hematologiska maligniteter såsom leukemi med dålig prognos. En signifikant komplikation av HSCT är akut transplantat-kontra-värd sjukdom (GVHD). En 2012 studie rapporterade att akut GVHD utvecklades i 39% av HSCT patienter som fick transplantationer från syskon givare och 59% av patienterna som fick transplantationer från icke-närstående givare1. Akut GVHD uppstår när givare härledda T-celler angriper mottagarens organ. Den enda lyckade behandlingen för GVHD är behandling med mycket immunsuppressiva läkemedel2, som är mycket giftiga och ökar risken för infektion och tumör upprepning. Således, trots förbättringar som har gjorts i akut GvHD överlevnad under de senaste åren3,4,5, det finns fortfarande ett kritiskt behov av förbättrade GvHD terapier med minimal toxicitet som främjar långsiktig remission.
Det övergripande målet med följande metoder är att inducera och poängsätter xenogena GvHD (xenogvhd). Den xenoGVHD modell utvecklades som ett verktyg för att inducera akut GVHD med mänskliga celler snarare än murina celler möjliggör mer direkt översättning av preklinisk GVHD forskning till kliniska prövningar6. Denna modell innebär intravenöst injicering av Human perifert blod mononukleära celler (PBMC) i NOD-SCID IL-2Rγnull (NSG) möss som är sublethally bestrålade. Injicerade humana t-celler aktiveras av humana antigen presenterande celler (APCS) som presenterar murinantigen och de aktiverade T-cellerna migrerar till avlägsna vävnader som resulterar i systemisk inflammation och i slutändan död6,7, 8 , 9 , 10. sjukdoms patologi och progression i xenogvhd-modellen imiterar nära Human akut GvHD. Specifikt, de patogena humana T-celler är reaktiva till murina större histocompatibility complex (MHC) proteiner, som liknar den T-cell alloreactivity i humant GvHD6,9. Den främsta fördelen med xenoGVHD modellen över musen MHC-mismatch modell, den andra allmänt använda GVHD-modellen, är det gör det möjligt för testning av terapier på mänskliga celler snarare än murina celler. Detta gör det möjligt för testning av produkter som direkt kan översättas till kliniken utan några ändringar eftersom de är gjorda för att rikta mänskliga celler. Nyligen har denna modell använts för att testa en human anti-IL-2 antikropp11, mänskliga thymic reglerande T-celler (Tregs)12 och mänskliga mesenkymala stamceller13 som potentiella behandlingar för akut GvHD. I ett bredare sammanhang, denna modell kan användas som en in vivo dämpning analys för alla läkemedel eller celltyp som kan undertrycka mänsklig T cell aktivitet. Till exempel använde Stockis et al.14 xenoGVHD-modellen för att studera effekten av att blockera integrin αVβ8 på Treg suppressiv aktivitet in vivo. Således, den xenoGVHD modellen kan ge insikt i mekanismen för alla terapi inriktning T-celler i en in vivo inställning.
En ytterligare metod som beskrivs i detta protokoll är hur man upptäcker mänskliga T-celler i mus vävnader med hjälp av digital polymeras kedjereaktion (dpcr). Målet med denna metod är att erbjuda ett verktyg för att kvantifiera migration och spridning av T-celler i målvävnaderna, som mäter effekten av immunsuppressiva terapier som testas i denna modell. dPCR är en relativt ny metod för kvantifiering av nukleinsyror15. Kortfattat, PCR reaktionsblandningen är uppdelad i partitioner som innehåller små antal av målsekvensen eller inget mål alls. Målsekvensen förstärks sedan och detekteras med hjälp av DNA-interkalating färgämnen eller fluorescerande målspecifika sonder. dpcr kvantifierar antalet kopior av målsekvensen baserat på andelen positiva partitioner och Poissons statistik15,16. Detektera T-celler med dPCR kräver mycket mindre vävnad jämfört med andra alternativa metoder, inklusive flödescytometri och histologi, och kan utföras på fryst eller fast vävnad. dPCR kräver inte en standardkurva för att bestämma kopierings nummer och inte heller är tekniska replikat krävs. Detta minskar mängden reagens och mallDNA som behövs för dPCR jämfört med traditionell kvantitativ PCR (qPCR)16. Partitionering av PCR-reaktionen i sub-reaktioner i dPCR koncentrerar effektivt mål17. Således är dPCR främst ett verktyg för detektering av sällsynta mål i en stor mängd icke-måldna. Till exempel, dPCR används för att upptäcka bakteriell kontaminering i mjölk18, identifiera sällsynta mutationer i östrogen receptor genen19, och upptäcka cirkulerande tumör-DNA i blodet hos patienter20. I detta protokoll fungerar dPCR som ett effektivt verktyg för att detektera och kvantifiera humana T-celler i vävnader från möss med xenoGVHD.
Sjukdomsprogression är i allmänhet konsekvent i xenoGVHD-modellen, även med injektion av PBMC från olika givare, så att flera experiment kan kombineras. De viktigaste stegen som krävs för att bibehålla denna konsekvens är korrekt i.v. injektion teknik, bländande och konsekvent scoring. En studie av Nervi et al.25 visade att jämfört med intravenös svans ven injektion, retroorbital injektioner av PBMC resulterade i mer konsekvent engrafktion och mer svår GvHD. Leon-Rico et al.<sup clas…
The authors have nothing to disclose.
Vi skulle vilja erkänna laboratoriet för Lane Christenson för att tillhandahålla den digitala PCR-maskin som används i dessa experiment och för den tekniska support som tillhandahålls. Vi skulle också vilja tacka Dr Thomas Yankee för hans vägledning och mentorskap. Dessa studier stöddes av tripp Family Foundation.
1.5 mL eppendorf tubes | Fisher | 05-408-129 | |
10 mL serological pipet | VWR International | 89130-898 | |
10mL BD Vacutainers – Green capped with Sodium Heparin | Becton Dickinson | 366480 | |
250 µL Ranin pipette tips | Rainin | 17001118 | Do not use other pipettes or pipet tips for droplet generation |
50 mL conical tube | VWR International | 89039-656 | |
96-Well ddPCR plate | Bio-Rad | 12001925 | |
ACK (Ammonium-Chloride-Potassium) Lysing Buffer | Lonza | 10-548E | Optional |
Alcohol Wipes | Fisher Scientific | 6818 | |
Anesthesia Chamber | World Precision Instruments | EZ-178 | Provided by animal facility |
Anesthesia Machine | Parkland Scientific | PM1002 | Provided by animal facility |
BD Vacutainer Safety-Lok Blood Collection Set | Becton Dickinson | 367281 | |
DG8 Cartridges and Gaskets for QX100/QX200 Droplet Generator | Bio-Rad | 1864007 | |
DNAse and RNAse free Molecular Grade H2O | Life Technologies | 1811318 | |
Ethyl alcohol, Pure,200 proof, for molecular biology | Sigma-Aldrich | E7023-500ML | |
Fetal Bovine Serum | Atlanta Biologicals | S11150 | |
Ficoll | Fisher Scientific | 45001750 | |
Insulin Syringe | Fisher Scientific | 329424 | |
Isoflurane | Sigma-Aldrich | CDS019936 | Provided by animal facility |
Liquid nitrogen | N/A | N/A | |
Mouse Irradiator Pie Cage | Braintree Scientific, Inc. | MPC 1 | Holds up to 11 mice |
Nexcare Gentle Paper Tape (a.k.a. 3M Micropore Surgical Tape / 3/4") | Fisher Scientific | 19-027-761 | |
P1000 pipetman | MidSci | A-1000 | |
P200 pipetman | MidSci | A-200 | |
Pierceable Foil Heat Seal | Bio-Rad | 1814040 | |
Pipetaid Gilson Macroman | Fisher Scientific | F110756 | |
Pipet-Lite Multi Pipette L8-200XLS+ | Rainin | 17013805 | Do not use other pipettes or pipet tips for droplet generation |
Qiagen DNeasy Blood and Tissue Kit | Qiagen | 69506 | |
qPCR plates | VWR International | 89218-292 | |
QX200 Droplet Digital PCR System | Bio-Rad | 12001925 | Includes droplet generator, droplet reader, laptop computer, software, associated component consumables, for EvaGreen or probe-based digital PCR applications |
QX200 Droplet Generation Oil for EvaGreen | Bio-Rad | 1864006 | |
QX200 ddPCR EvaGreen Supermix | Bio-Rad | 1864033 | |
RNase and DNase-free plate seal | Thermo Scientific | 12565491 | |
RPMI Advanced 1640 | Life Technologies | 12633012 | |
Sterile Gauze Pads (2" x 2", 12-Ply) | Fisher Scientific | 67522 | |
Sterile Phosphate Buffered Saline | Fisher Scientific | 21040CV | |
Sterile reservoir | VWR International | 89094-662 | |
Surgial Scissors | Kent Scientific | INS600393-4 | |
Surgical Forceps | Kent Scientific | INS650914-4 |