Summary

Facial Nerve Kirurgi i rat model til undersøgelse axonal hæmning og regenerering

Published: May 05, 2020
doi:

Summary

Denne protokol beskriver en reproducerbar tilgang til facial nerve kirurgi i rotte model, herunder beskrivelser af forskellige uikuible mønstre af skade.

Abstract

Denne protokol beskriver konsekvente og reproducerbare metoder til at studere axonal regenerering og hæmning i en rotte facial nerve skade model. Ansigtsnerven kan manipuleres langs hele sin længde, fra dens intrakranielle segment til sin ekstratemporal kursus. Der er tre primære typer af nerveskade, der anvendes til den eksperimentelle undersøgelse af regenerative egenskaber: nerve knuse, transection, og nerve hul. Rækken af mulige indgreb er enorme, herunder kirurgisk manipulation af nerven, levering af neuroaktive reagenser eller celler, og enten centrale eller ende-organ manipulationer. Fordele ved denne model for at studere nerve regenerering omfatter enkelhed, reproducerbarhed, interspecies konsistens, pålideligoverlevelsesrater af rotten, og en øget anatomisk størrelse i forhold til murine modeller. Dens begrænsninger indebærer en mere begrænset genetisk manipulation versus musemodellen og den superlative regenerative evne til rotten, således at facial nerve videnskabsmand skal omhyggeligt vurdere tidspunkter for nyttiggørelse, og om at oversætte resultater til højere dyr og humane undersøgelser. Den rotte model for facial nerve skade giver mulighed for funktionelle, elektrofysiologiske, og histomorfoometriske parametre for fortolkning og sammenligning af nerve regenerering. Det kan derved prale af enorme potentiale i retning af at fremme forståelsen og behandlingen af de ødelæggende konsekvenser af facial nerve skade hos menneskelige patienter.

Introduction

Kranienerver skade i hoved og hals regionen kan være sekundært til medfødt, infektiøs, idiopatisk, iatrogen, traumatisk, neurologisk, onkologisk, eller systemiske ætiologier1. Kranienerver VII, eller facial nerve, er almindeligt påvirket. Forekomsten af facial nerve dysfunktion kan være signifikant, da det påvirker 20 til 30 per 100.000 mennesker hvert år2. De vigtigste motorgrene i facial nerve er den tidsmæssige, zygomatic, buccal, marginal mandibulære, og cervikale grene; afhængigt af den involverede gren, kan konsekvenserne omfatte oral inkompetence eller savlen, hornhinde tørhed, synsfelt obstruktion sekundært til ptose, dysartri, eller facial asymmetri2,3. Langsigtet sygelighed omfatter fænomenet synkinese, eller ufrivillig bevægelse af en ansigtsmuskel gruppe, med forsøg på frivillig sammentrækning af en særskilt ansigtsmuskel gruppe. Okulær-oral synkinese er den mest almindelige af den afvigende regenerering som en sequela af facial nerve skade og forårsager funktionel svækkelse, forlegenhed, formindsket selvværd, og dårlig livskvalitet3. Skade på de enkelte grene dikterer de funktioner, der er selektivt kompromitteret.

Den kliniske behandling af facial nerve skade er ikke godt standardiseret og har brug for yderligere forskning for at forbedre resultaterne. Steroider kan lindre akut facial nerve hævelse, mens Botox er nyttigt for temporizing synkinetiske bevægelser; men de primære rekonstruktive muligheder i den praktiserende læges armamentarium indebærer kirurgisk indgreb gennem nerve reparation, substitution, eller reanimation3,4,5,6. Afhængigt af typen af facial nerve skade lidt, ansigtet nerve kirurg kan udnytte en række muligheder. For simpel transection, nerve reanastomose er nyttigt, mens kabel-graft reparation er bedre egnet til en nervedefekt; for en restaurering af funktion, kirurgen kan vælge enten statisk eller dynamisk facial reanimation procedurer. I mange tilfælde af facial nerve skade og efterfølgende reparation, selv i hænderne på erfarne facial nerve kirurger, det bedste resultat stadig resulterer i vedvarende facial asymmetri og funktionelle kompromis7.

Disse suboptimale resultater har ansporet omfattende forskning i facial nerve regenerering. Brede emner af interesse omfatter perfektionering og innovation nerve reparation teknikker, bestemmelse af effekten af forskellige nerve regenerering faktorer, og vurdere potentialet i specifikke neurale hæmmere til at hjælpe med at bekæmpe den langsigtede resultat af synkinese8,9,10,11. Mens in vitro-modeller kan bruges til at vurdere nogle karakteristika for vækstfremmende eller hæmmende faktorer, opnås ægte translationel forskning om dette emne bedst via dyremodeller, der kan oversættes.

Beslutningen om, hvilken dyremodel at udnytte kan være udfordrende, som forskere har udnyttet både store dyr, såsom får og små dyremodeller, såsom mus12,13. Mens store dyremodeller tilbyder ideel anatomisk visualisering, kræver deres anvendelse specialiseret udstyr og personale, der ikke er let eller let tilgængeligt. Endvidere, kraftmagt en undersøgelse for at påvise effekt kunne være meget omkostningseffektive uoverkommelige og potentielt ikke inden for det mulige omfang af mange videnskabelige centre. Således er den lille dyremodel oftest udnyttet. Musen model kan udnyttes til at vurdere en række resultater i forbindelse med facial nerve kirurgi; dog kan den begrænsede længde af nerven begrænse videnskabsmandens evne til at modellere visse mønstre, såsom store huller skade14.

Således har rotte murine prototype opstået som arbejdshest model, hvorigennem videnskabsmanden kan udføre innovative kirurgiske procedurer eller udnytte hæmmende eller pro-vækstfaktorer og vurdere effekt på tværs af en bred vifte af resultatparametre. Den rotte facial nerve anatomi er forudsigeligt og let nærmede sig i en reproducerbar måde. Dens større skala, i forhold til musen model, giver mulighed for modellering af en bred vifte af kirurgiske defekter, der spænder fra simple transection til 5 mm huller15,16. Dette giver yderligere mulighed for anvendelse af komplekse interventioner på defektstedet, herunder aktuel placering af faktor, intraneurale injektioner af faktor, og placering af isografts eller broer17,18,19,,20,21,22,23.

Den føjelige karakter af rotten, dens pålidelige anatomi, og dens tilbøjelighed til effektiv nerve regenerering giver mulighed for indsamling af mange resultat foranstaltninger som reaktion på de førnævnte kirurgiske mønstre af skade24. Via rottemodellen er ansigtsnerveforskeren i stand til at vurdere elektrofysiologiske reaktioner på skader, nerve- og muskelhistologiske resultater via immunhistokemi, funktionelle resultater via sporingsbevægelse af vibrissalpuden og vurdering af øjenlukning samt mikro- og makroskopiske ændringer via fluorescerende eller konfokal mikroskopi, blandt andet11,22,23,25, 26,27,27,28,29. Således vil følgende protokol skitsere en kirurgisk tilgang til rotte facial nerve og de skade mønstre, der kan induceres.

Protocol

Alle interventioner blev udført i nøje overensstemmelse med National Institutes of Health (NIH) retningslinjer. Den eksperimentelle protokol blev godkendt af University of Michigan’s Institutional Animal Care & Use Committee (IACUC) forud for gennemførelsen. Ti uger gamle voksne kvindelige Sprague-Dawley rotter blev udnyttet. 1. Før den udløsende dag Sørg for en passende bestand af steriliserede kirurgiske instrumenter, smertestillende medicin, bedøvelsesmiddel medicin, og ilt…

Representative Results

Efter den indledende kirurgiske procedure er der to hovedtyper af resultatmål: seriemålinger i det levende dyr og målinger, der kræver at ofre dyret. Eksempler på serielle målinger omfatter elektrofysiologiske analyser, såsom en sammensat muskel handling potentielle måling30, vurderinger af ansigtsmusklen bevægelse via laser-assisteret eller videography betyder9, eller endda gentagne levende billeddannelse af genvækst af facial ner…

Discussion

Den rotte facial nerve skade model har vist sig som den mest alsidige system til evaluering af neurotrofiske faktorer på grund af sin kirurgiske tilgængelighed, forgrening mønster, og fysiologiske betydning27,,29,33,34,35,36. Kombinationen af videodemonstration og anvendelse af transgene dyredata åbner nye muligheder for …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

S.A.A. er finansieret af American Academy of Facial Plastic and Reconstructive Surgery Leslie Bernstein Grants Program.

Materials

1.8% isoflurane VetOne 13985-030-40
11-0 nylon microsutures AROSuture TK-117038
4-0 monocryl suture VWR 75982-084
Buprenorphine SR ZooPharm MIF 900-006
Carprofen Sigma-Aldrich MFCD00079028
Chlorhexidine VWR IC19135805
Jeweler forceps VWR 21909-458
Micro Weitlaner retractor VWR 82030-146
Micro-scissors VWR 100492-348
Mini tenotomy scissors VWR 89023-522
Number 15 scalpel blade VWR 102097-834
Operating microscope Leica
Petrolatum eye gel Pharmaderm B002LUWBEK
Sterile water VWR 89125-834
Tissue adhesive Vetbond, 3M NC9259532
Water conductor pad Aqua Relief System ARS2000B

Referências

  1. Chan, J. Y. K., Byrne, P. J. Management of facial paralysis in the 21st century. Facial Plastic Surgery. 27 (4), 346-357 (2011).
  2. Razfar, A., Lee, M. K., Massry, G. G., Azizzadeh, B. Facial Paralysis Reconstruction. Otolaryngologic Clinics of North America. 49 (2), 459-473 (2016).
  3. Couch, S. M., Chundury, R. V., Holds, J. B. Subjective and objective outcome measures in the treatment of facial nerve synkinesis with onabotulinumtoxinA (Botox). Ophthalmic Plastic and Reconstructive Surgery. 30 (3), 246-250 (2014).
  4. Wei, L. A., Diels, J., Lucarelli, M. J. Treating buccinator with botulinum toxin in patients with facial synkinesis: A previously overlooked target. Ophthalmic Plastic and Reconstructive Surgery. 32 (2), 138-141 (2016).
  5. Cooper, L., Lui, M., Nduka, C. Botulinum toxin treatment for facial palsy: A review. Journal of Plastic, Reconstructive and Aesthetic Surgery. 70 (6), 833-841 (2017).
  6. Choi, K. H., et al. Botulinum toxin injection of both sides of the face to treat post-paralytic facial synkinesis. Journal of Plastic, Reconstructive and Aesthetic Surgery. 66 (8), 1058-1063 (2013).
  7. Yang, X. N., et al. Peripheral nerve repair with epimysium conduit. Biomaterials. 34 (22), 5606-5616 (2013).
  8. Banks, C. A., et al. Long-term functional recovery after facial nerve transection and repair in the rat. Journal of Reconstructive Microsurgery. 31 (3), 210-216 (2015).
  9. Hadlock, T. A., Kowaleski, J., Lo, D., MacKinnon, S. E., Heaton, J. T. Rodent facial nerve recovery after selected lesions and repair techniques. Plastic and Reconstructive Surgery. 125 (1), 99-109 (2010).
  10. Hadlock, T., et al. The effect of electrical and mechanical stimulation on the regenerating rodent facial nerve. Laryngoscope. 120 (6), 1094-1102 (2009).
  11. Hadlock, T., et al. Functional assessments of the rodent facial nerve: A synkinesis model. Laryngoscope. 118 (10), 1744-1749 (2008).
  12. Diogo, C. C., et al. The use of sheep as a model for studying peripheral nerve regeneration following nerve injury: review of the literature. Neurological Research. 39 (10), 926-939 (2017).
  13. Wanner, R., et al. Functional and Molecular Characterization of a Novel Traumatic Peripheral Nerve–Muscle Injury Model. NeuroMolecular Medicine. 19 (2-3), 357-374 (2017).
  14. Olmstead, D. N., et al. Facial nerve axotomy in mice: A model to study motoneuron response to injury. Journal of Visualized Experiments. (96), e52382 (2015).
  15. Maeda, T., Hori, S., Sasaki, S., Maruo, S. Effects of tension at the site of coaptation on recovery of sciatic nerve function after neurorrhaphy: Evaluation by walking-track measurement, electrophysiology, histomorphometry, and electron probe X-ray microanalysis. Microsurgery. 19 (4), 200-207 (1999).
  16. Zhang, F., Inserra, M., Richards, L., Terris, D. J., Lineaweaver, W. C. Quantification of nerve tension after nerve repair: Correlations with nerve defects and nerve regeneration. Journal of Reconstructive Microsurgery. 17 (6), 445-451 (2001).
  17. Macfarlane, B. V., Wright, A., Benson, H. A. E. Reversible blockade of retrograde axonal transport in the rat sciatic nerve by vincristine. Journal of Pharmacy and Pharmacology. 49 (1), 97-101 (1997).
  18. Stromberg, B. V., Vlastou, C., Earle, A. S. Effect of nerve graft polarity on nerve regeneration and function. Journal of Hand Surgery. 4 (5), 444-445 (1979).
  19. Sotereanos, D. G., et al. Reversing nerve-graft polarity in a rat model: The effect on function. Journal of Reconstructive Microsurgery. 8 (4), 303-307 (1992).
  20. Whitlock, E. L., et al. Ropivacaine-induced peripheral nerve injection injury in the rodent model. Anesthesia and Analgesia. 111 (1), 214-220 (2010).
  21. Lloyd, B. M., et al. Use of motor nerve material in peripheral nerve repair with conduits. Microsurgery. 27 (2), 138-145 (2007).
  22. Kawamura, D. H., et al. Regeneration through nerve isografts is independent of nerve geometry. Journal of Reconstructive Microsurgery. 21 (4), 243-249 (2005).
  23. Brenner, M. J., et al. Repair of motor nerve gaps with sensory nerve inhibits regeneration in rats. Laryngoscope. 116 (9), 1685-1692 (2006).
  24. Brenner, M. J., et al. Role of timing in assessment of nerve regeneration. Microsurgery. 28 (4), 265-272 (2008).
  25. Heaton, J. T., et al. A system for studying facial nerve function in rats through simultaneous bilateral monitoring of eyelid and whisker movements. Journal of Neuroscience Methods. 171 (2), 197-206 (2008).
  26. Magill, C. K., Moore, A. M., Borschel, G. H., Mackinnon, S. E. A new model for facial nerve research: The novel transgenic Thy1-GFP rat. Archives of Facial Plastic Surgery. 12 (5), 315-320 (2010).
  27. Guntinas-Lichius, O., et al. Factors limiting motor recovery after facial nerve transection in the rat: Combined structural and functional analyses. European Journal of Neuroscience. 21 (2), 391-402 (2005).
  28. Skouras, E., et al. Manual stimulation, but not acute electrical stimulation prior to reconstructive surgery, improves functional recovery after facial nerve injury in rats. Restorative Neurology and Neuroscience. 27 (3), 237-251 (2009).
  29. Bischoff, A., et al. Manual stimulation of the orbicularis oculi muscle improves eyelid closure after facial nerve injury in adult rats. Muscle and Nerve. 39 (2), 197-205 (2009).
  30. Schulz, A., Walther, C., Morrison, H., Bauer, R. In vivo electrophysiological measurements on mouse sciatic nerves. Journal of Visualized Experiments. (86), e51181 (2014).
  31. Placheta, E., et al. Macroscopic in vivo imaging of facial nerve regeneration in Thy1-GFP rats. JAMA Facial Plastic Surgery. 17 (1), 8-15 (2015).
  32. Moore, A. M., et al. A transgenic rat expressing green fluorescent protein (GFP) in peripheral nerves provides a new hindlimb model for the study of nerve injury and regeneration. Journal of Neuroscience Methods. 204 (1), 19-27 (2012).
  33. Grosheva, M., et al. Early and continued manual stimulation is required for long-term recovery after facial nerve injury. Muscle and Nerve. 57 (1), 100-106 (2018).
  34. Grosheva, M., et al. Comparison of trophic factors’ expression between paralyzed and recovering muscles after facial nerve injury. A quantitative analysis in time course. Experimental Neurology. 279, 137-148 (2016).
  35. Grosheva, M., et al. Local stabilization of microtubule assembly improves recovery of facial nerve function after repair. Experimental Neurology. 209 (1), 131-144 (2008).
  36. Angelov, D. N., et al. Mechanical stimulation of paralyzed vibrissal muscles following facial nerve injury in adult rat promotes full recovery of whisking. Neurobiology of Disease. 26 (1), 229-242 (2007).
  37. Tomov, T. L., et al. An example of neural plasticity evoked by putative behavioral demand and early use of vibrissal hairs after facial nerve transection. Experimental Neurology. 178 (2), 207-218 (2002).
  38. Streppel, M., et al. Focal application of neutralizing antibodies to soluble neurotrophic factors reduces collateral axonal branching after peripheral nerve lesion. European Journal of Neuroscience. 15 (8), 1327-1342 (2002).
  39. Peeva, G. P., et al. Improved outcome of facial nerve repair in rats is associated with enhanced regenerative response of motoneurons and augmented neocortical plasticity. European Journal of Neuroscience. 24 (8), 2152-2162 (2006).
  40. Pavlov, S. P., et al. Manually-stimulated recovery of motor function after facial nerve injury requires intact sensory input. Experimental Neurology. 211 (1), 292-300 (2008).
  41. Guntinas-Lichius, O., et al. Transplantation of olfactory ensheathing cells stimulates the collateral sprouting from axotomized adult rat facial motoneurons. Experimental Neurology. 172 (1), 70-80 (2001).
  42. Guntinas-Lichius, O., Angelov, D. N., Stennert, E., Neiss, W. F. Delayed hypoglossal-facial nerve suture after predegeneration of the peripheral facial nerve stump improves the innervation of mimetic musculature by hypoglossal motoneurons. Journal of Comparative Neurology. 387 (2), 234-242 (1997).
  43. Sinis, N., et al. Electrical stimulation of paralyzed vibrissal muscles reduces endplate reinnervation and does not promote motor recovery after facial nerve repair in rats. Annals of Anatomy. 191 (4), 356-370 (2009).
  44. Kiryakova, S., et al. Recovery of whisking function promoted by manual stimulation of the vibrissal muscles after facial nerve injury requires insulin-like growth factor 1 (IGF-1). Experimental Neurology. 222 (2), 226-234 (2010).
  45. Banati, R. B., et al. Early and rapid de novo synthesis of Alzheimer βA4-Amyloid precursor protein (APP) in activated microglia. Glia. 9 (3), 199-210 (1993).
  46. Blinzinger, K., Kreutzberg, G. Displacement of synaptic terminals from regenerating motoneurons by microglial cells. Zeitschrift für Zellforschung und Mikroskopische Anatomie. 85 (2), 145-157 (1968).
  47. Rieske, E., et al. Microglia and microglia-derived brain macrophages in culture: generation from axotomized rat facial nuclei, identification and characterization in vitro. Brain Research. 492 (1-2), 1-14 (1989).
  48. Matsumoto, K., et al. Peripheral nerve regeneration across an 80-mm gap bridged by a polyglycolic acid (PGA)-collagen tube filled with laminin-coated collagen fibers: A histological and electrophysiological evaluation of regenerated nerves. Brain Research. 868 (2), 315-328 (2000).
  49. Mattsson, P., Janson, A. M., Aldskogius, H., Svensson, M. Nimodipine promotes regeneration and functional recovery after intracranial facial nerve crush. Journal of Comparative Neurology. 437 (1), 106-117 (2001).
  50. Yian, C. H., Paniello, R. C., Gershon Spector, J. Inhibition of motor nerve regeneration in a rabbit facial nerve model. Laryngoscope. 111 (5), 786-791 (2001).
  51. Angelov, D. N., et al. Nimodipine accelerates axonal sprouting after surgical repair of rat facial nerve. Journal of Neuroscience. 16 (3), 1041-1048 (1996).
check_url/pt/59224?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Ali, S. A., Stebbins, A. W., Hanks, J. E., Kupfer, R. A., Hogikyan, N. D., Feldman, E. L., Brenner, M. J. Facial Nerve Surgery in the Rat Model to Study Axonal Inhibition and Regeneration. J. Vis. Exp. (159), e59224, doi:10.3791/59224 (2020).

View Video