Summary

목공 딱정벌레의 부속물을 위한 주사 및 투과 전자 현미경의 시료 제조 방법

Published: February 03, 2020
doi:

Summary

곤충 센실라의 초구조를 관찰하기 위해, 스캐닝 및 투과 전자 현미경(SEM 및 TEM) 시료 준비 프로토콜을 각각 연구에서 발표되었다. Tween 20은 SEM에서 샘플 변형을 피하기 위해 고정식에 첨가되었습니다.

Abstract

이 보고서는 주사 및 투과 전자 현미경 관찰, 목공 딱정벌레, 클로로 포러스 카라가나 Xie & 왕 (2012)의 부속물을 제조하여 입증 된 샘플 준비 방법을 설명, 전자 현미경의 두 가지 유형. 스캐닝 전자 현미경(SEM) 샘플 전처리 프로토콜은 일련의 에탄올 목욕, 건조 및 스퍼터 코팅에서 샘플 화학적 고정, 탈수에 기초하였다. Tween 20(폴리옥시에틸렌 소르비탄 라우레이트)을 고정액 및 세척 용액에 첨가함으로써, 목공 딱정벌레의 곤충 체표면을 SEM에서 보다 깨끗하게 세척하였다. 이 연구의 전송 전자 현미경 검사법 (TEM) 견본 준비는 고착, 에탄올 탈수, 수지에 있는 포함, 형광 현미경 검사법을 사용하여 위치, 단면도 및 염색을 포함하여 일련의 단계를 관련시켰습니다. Tween 20을 이용한 고정제는 트웬(20)이 없었을 때보다 더 쉽게 목공 딱정벌레의 곤충 몸벽을 관통하고, 이어서 체내에 더 나은 고정 조직과 장기를 침투시켜 곤충 센실라 울트라구조의 명확한 투과 전자 현미경 관측을 산출하였다. 이 제제의 다음 단계는 형광 현미경을 사용하여 수지 블록에 내장된 샘플에서 곤충 센실라의 위치를 결정하여 표적 센실라 포지셔닝의 정밀도를 높이는 것이었다. 이렇게 하면 슬라이스 정확도가 향상되었습니다.

Introduction

주사 전자 현미경 검사법은 SEM이 표면 구조를 보여줍니다 많은 형태학 연구에서 중요한 도구입니다1,2. 전송 전자 현미경 검사법의 매력은 세포의 구조와 세포기관의 초구조에서, 거대 분자 복합체 및 단백질의 구조에, 나노 미터 규모에 있는 생물학 구조물의 넓은 범위를 공부하는 것을 이용될 수 있다는 것입니다. TEM은 내부 구조를 보여줍니다3,4,5.

콜레옵테라는 약 182가구와 350,000여 종의 곤충을 포함한 가장 큰 곤충 군이다. 콜레옵테란 곤충의 대부분, 특히 목공 딱정벌레는 식물을 먹고, 그 중 많은 식물은 숲과 과일 나무의 중요한 해충이며, 나무에 치명적인 손상을초래6. 현재, 화학생태이론에 근거한 해충의 예방 및 방제 인구는7. 효율적이고 독성이 낮고 무공해 페로몬 제어 방법이 효과적인방법이되었습니다 8. 곤충의 센실라 형태와 초구조를 연구하는 것은 곤충 화학 생태 연구의 중요한 부분입니다. 스캐닝 및 투과 전자 현미경 검사법 (SEM 및 TEM, 각각)은 그들의 형태및 내부 해부학을 공부하는 큰 효력을 위해 이용됩니다. 그러나, 전자 현미경 검사법(EM)을 위한 곤충 샘플의 제조 도중, 관측 부위의 객관성 및진위도9에영향을 받을 수 있다. 일반적으로 곤충의 SEM 샘플 제제는 세정, 조직 고정, 탈수, 대사, 건조 및 스퍼터코팅(10)을필요로 한다. 나무 보링 딱정벌레가 살고있는 복잡한 환경으로 인해 신체 표면에는 종종 다양한 오염 물질이 있으며 부속물은 종종 많은 미세한 긴 센실라 또는 강모가 있습니다. 특히, 일부 목공은 현장에서 직접 수집 한 실험실 제기에서 사용할 수 없으며 신선도를 보장하기 위해 유체를 고정시키고 실험실에서 세척합니다. 시료가 먼저 고정된 다음 세척되면 글루타랄데히드가 시료에 강하게 고정되기 때문에 이물질을 제거하는 것이 훨씬 더 어렵습니다. 트웬(20)은 계면활성제11,12,13,14,이는 세탁물의 표면 장력을 감소시키고 세탁물의 수면의 습류성을 향상시키는 등 세척 과정에서 중요한 역할을 한다. 본 연구에서, Tween 20은 액체의 표면 장력을 감소시키고, SEM에서 바디 표면을 더 깨끗하게 만든 나무 보링 딱정벌레의 체체 표면에 침전되는 먼지를 방지하기 위해 고정 용액 및 PBS 세정 액에 첨가되었다.

TEM을 사용하여, 곤충의 다른 기관에 센실라는 그 안에 명확한 구조를 밝히기 위하여 슬라이스될 수 있습니다, 따라서 감각증 기능을 분석하기 위한 기초를 제공하. 목공 딱정벌레와 같은 대상 곤충이 크고, 그 몸벽이 경화의 상당 정도를 가지면, 고정제는 곤충 체 내의 장기 조직을 완전히 포화시키지 못할 수 있다. 트위넨(20)은 먼지의 분산 및 현탁용량을 향상시킬 수 있다. 본 연구에서, 트웬(20)은 목초지 딱정벌레의 곤충 체벽내로의 고정유체 침투를 향상시키기 위해 고정식에 첨가하였으며,표피11,12,13의변형 및 붕괴를 피하하였다. 또한, 일반 슬라이스 기술을 사용하면, 특히 일부 작은센실라(15)에대해 다른 유형의 센실라를 정확하게 찾기가 어렵다. 전통적인 TEM 견본 준비에 근거를 두어, 이 연구 결과는 임베디드 블록에 있는 곤충 감각실라의 위치를 결정하기 위하여 형광 현미경 검사법과 SEM을 결합하여, 따라서 슬라이스 정확도를 향상합니다.

Protocol

주의: 시약의 재료 안전 데이터 시트를 사용하기 전에 참조하십시오. 샘플 준비 중에 사용되는 여러 화학 물질은 독성, 돌연변이, 발암 성 및 / 또는 재현독성입니다. 개인 보호 장비(장갑, 실험실 코트, 전신 바지 및 닫힌 발가락 신발)를 사용하고 샘플을 처리하는 동안 연기 후드 아래에서 작업하십시오. 1. SEM 견본 준비 및 화상 진찰 샘플 고정 및 세척 C. 카라?…

Representative Results

Tween 20을 사용한 세척 및 고정 용액을 사용하여, 더 깨끗한 SEM 이미지는 트웬 20(그림3)이없는 것보다 더 깨끗한 SEM 영상을 관찰하였다. 트웬 20 고정용액은 글루타랄데히드 고정액을 조직 내로 침투하였다. 미세소관 구조가 명확하게 보였다. 샘플의 내부 구조의 TEM 이미지는 Tween 20(도4)없이흐려졌다. <p class="jove_content" fo:keep-to…

Discussion

이 기사에서는 목공 딱정벌레에 대한 주사 및 투과 전자 현미경 검사법을 위한 샘플 준비 계획을 발표했습니다. 곤충 부속을 대표적인 연구 대상자로 사용하여 기존의 시료 전처리 방법에 비해 몇 가지 개선된 방법을 입증했습니다.

고체 표면에서 분리된 액체 오일은 작은 액적으로 유화되어, 이는 물체의 표면에 재증착을 감소시키기 위해 세척 매체에 잘 분산되고 부유될 수…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

우리는 베이징 전문 대학, 원자력 응용 연구소 (중국 농업 과학 아카데미), 베이징 임업 대학의 바이오 연구 센터 및 산간 교수의 관대 한 지원에 감사드립니다. 동물학 연구소의 장, 중국 과학 아카데미. 이 연구는 중국의 국가 핵심 R&D 프로그램(2017YFD0600103), 중국 국립자연과학재단(보조금 제31570643, 81774015), 중국 공공복지 산림과학연구(201504304), 내몽골의 지원을 받았습니다. 농업대학 고위인재연구창업계획(203206038) 및 내몽골 자치구 고등교육연구사업(NJZZ18047), 내몽골 자치구 린수 “더블 퍼스트 클래스” 건설사업(170001)

Materials

Anatomical lens Chongqing Auto Optical
limited liability company
1425277
Carbon adhesive tape SPI Supplies, Division of Structure Probes, Inc. 7311
Carbon tetrachloride Sigma 56-23-5
Copper grids GilderGrids G300
Disodium hydrogen phosphate Sinopharm group chemical reagent co., LTD 10039-32-4
Ethanol J.T. Baker 64-17-5
Flat embedding molds Hyde Venture (Beijing) Biotechnology Co., Ltd. 70900
Fluorescence microscope LEICA DM2500
Glutaraldehyde Sigma-Aldrich 111-30-8 Anhydrous EM Grade
Isophorone Sigma 78-59-1
Lead citrate Sigma 512-26-5
Methanol Sigma 67-56-1
Monobasic sodium phosphate Its group chemical reagent co., LTD 7558-80-7
Objective micrometer Olympus 0-001-034
Osmium tetroxide Sigma 541-09-3
Petri dish Aldrich 1998
Razor blade Gillette
Resin Spurr ERL4221
Scalpel Lianhui GB/T19001-2008
SEM Hitachi S-3400
Silica gel desiccant Suzhou Longhui Desiccant Co., Ltd. 112926-00-8
Small brush Martol G1220
Sodium hydroxide Sigma 1310-73-2
Sputter ion instrument Hitachi Koki Co. Ltd., Tokyo, Japan E-1010
Stereo microscope Leica EZ4 HD
TEM Hitachi H-7500
Tween 20 Tianjin Damao Chemical Reagent 9005-64-5
Ultramicrotome Leica UC6
Ultrasonic cleaner GT Sonic GT-X1
Uranyl acetate Sigma 6159-44-0

Referências

  1. Song, Y. Q., Dong, J. F., Sun, H. Z. Scanning Electron Microscope Technology of Insect Material. Hubei Agricultural Sciences. 52, 1064-1065 (2013).
  2. Liu, C. The development of the scanning electron microscopy (sem) and its application in polymer materials research. Journal of the Graduates Sun Yat-Sen University (Natural Sciences Medicine). 34, 7-12 (2008).
  3. Gan, L., Jensen, G. J. Electron tomography of cells. Quarterly Reviews of Biophysics. 45, 27-56 (2011).
  4. Lucic, V., Rigort, A., Baumeister, W. Cryo-electron tomography: the challenge of doing structural biology in situ. The Journal of Cell Biology. 202, 407-419 (2013).
  5. Trepout, S., Bastin, P., Marco, S. Preparation and Observation of Thick Biological Samples by Scanning Transmission Electron Tomography. Journal of Visualized Experiments. (121), e55215 (2017).
  6. Zhang, X. J., Sun, W., Zhang, J., Zuo, T. T., Wang, Z. Q., Zhao, H. W. Research progress of coleopteran insect species antennal sensilla. Journal of Anhui Agricultural Sciences. 41, 2932-2935 (2013).
  7. Aldrich, J. R., Bartelt, R. J., Dickens, J. C., Knight, A. L., Light, D. M., Tumlinson, J. H. Insect chemical ecology research in the United States Department of Agriculture-Agricultural Research Service. Pest Management Science. 59, 777-787 (2003).
  8. Thomas, C. B., Marlin, E. R. Pheromone mating disruption: Novel, non-toxic control of the European corn borer. Leopold Center. 8, 57-60 (1999).
  9. Chen, X. F., Hu, M. Y. Studies on the specimen preparation techniques of scanning electron microscope of Ficus simplicissima Lour. Journal of Zhongkai Agrotechnical College. 14, 68-70 (2001).
  10. Zhou, W., Apkarian, R., Wang, Z. L., Joy, D. Fundamentals of Scanning Electron Microscopy (SEM). Scanning Microscopy for Nanotechnology. , 1-40 (2006).
  11. Kothekar, S. C., Ware, A. M., Waghmare, J. T., Momin, S. A. Comparative Analysis of the Properties of Tween-20, Tween-60, Tween-80, Arlacel-60, and Arlacel-80. Journal of Dispersion Science and Technology. 28, 477-484 (2007).
  12. Chai, J. L., Liu, N., Bai, T. T., Zhang, H. M., Liu, N. N., Wang, D. D. Compositions and Physicochemical Properties of Tween Type Surfactants-Based Microemulsions. Journal of Dispersion Science and Technology. 35, 441-447 (2014).
  13. Zhang, L. D., Zhao, L., Han, F., Xu, B. C. Performance and applications of surfactants (XV) Detergency of surfactants and its applications. China Surfactant Detergent and Cosmetics. 45, 132-137 (2015).
  14. Waghmare, P. R., Das, S., Mitra, S. K. Under-water superoleophobic glass: unexplored role of the surfactant-rich solvent. Scientific Reports. 3, 1-25 (2013).
  15. Zhang, Y. R., Ren, L. L., Luo, Y. Q. Microtomy of insect sensilla embedded in resin blocks for transmission electronic microscopy. Chinese Journal of Applied Entomology. 50, 1479-1483 (2013).
  16. Zong, S. X., Liu, X. H., Cao, C. J., Luo, Y. Q., Ren, L. L., Zhang, H. Development of semiochemical attractants for monitoring and controlling Chlorophorus caragana. Zeitschrift für Naturforschung. 68, 243-252 (2013).
  17. Sumner, M. J. Epoxy resins for light and transmission electron microscopy. Plant Microtechniques and Protocols. , 83-101 (2015).
  18. Schneider, D. Insect antennae. Annual Review of Entomology. 9, 103-122 (1964).
  19. Zacharuk, R. Antennae and sensilla. Comprehensive Insect Physiology, Biochemistry and Pharmacology. 6, 1-69 (1985).
  20. Zacharuk, R., Albert, P., Bellamy, F. Ultrastructure and function of digitiform sensilla on the labial palp of a larval elaterid (Coleoptera). Canadian Journal of Zoology. 55, 569-578 (1977).
  21. Shanbhag, S., Müller, B., Steinbrecht, R. Atlas of olfactory organs of Drosophila melanogaster: 1, Types, external organization, innervation and distribution of olfactory sensilla. International Journal of Insect Morphology and Embryology. 28, 377-397 (1999).
  22. Tarumingkeng, R. C., Coppel, H. C., Matsumura, F. Morphology and ultrastructure of the antennal chemoreceptors and mechanoreceptors of worker Coptotermes formosanus Shiraki. Cell Tissue Res. 173, 173-178 (1976).
  23. Zacharuk, R. Y. Ultrastructure and function of insect chemosensilla. Annual Review of Entomology. 25, 27-47 (1980).
  24. Li, Y. Z., Zhong, G. Q. Screening of detergents and floating carriers for treating potato golden nematode cysts to improve the original appearance of electron microscopy. Plant quarantine. 8, 72-75 (1994).
  25. Marzio, L. D., Marianecci, C., Petrone, M., Rinaldi, F., Carafa, M. Novel pH-sensitive non-ionic surfactant vesicles: comparison between tween 21 and tween 20. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces. 82, 18-24 (2011).
  26. Ren, L. L., Wu, Y., Shi, J., Zhang, L., Luo, Y. Q. Antenna morphology and sensilla ultrastructure of Tetrigus lewisi Candèze (Coleoptera: Elateridae). Micron. 60, 29-38 (2014).
  27. Ren, L., Shi, J., Zhang, Y., Luo, Y. Antennal morphology and sensillar ultrastructure of Dastarcus helophoroides (Fairmaire) (Coleoptera: Bothrideridae). Micron. 43, 921-928 (2012).
  28. Teng, X. H., Liu, X. L., Xie, G. Y., Tang, Q. B., Li, W. Z., Zhao, X. C. Morphology and distribution of ovipositor sensilla of female Helicoverpa armigera (Lepidoptera: Noctuidae). The 11th Henan Plant Protection Society, the 10th Henan Insect Society, and the 5th Member Congress and Academic Symposium of Henan Plant Pathology Society. , 138-142 (2017).
  29. Yang, R., Zhang, L. N., Fan, J. W., Wang, J. L., Fang, K. F., Yu, T. Q., Wang, S. H., Du, Y. L. Insect specimens for scanning electron microscopy. Journal of Beijing University of Agriculture. 29, 33-36 (2014).
  30. Zhang, Y. R., Ren, L. L., Zhang, L., Wang, R., Yu, Y., Lu, P. F., Luo, Y. Q. Ultrastructure and distribution of sensilla on the maxillary and labial palps of Chlorophorus caragana (Coleoptera: Cerambycidae). Journal of Morphology. 279, 574-588 (2018).
  31. Harrison, J. D. G. Cleaning and preparing adult beetles (Coleoptera) for light and scanning electron microscopy. African Entomology. 20, 395-401 (2012).
  32. Xiao, Y., Liu, W., Wang, Y., Zuo, Y. X., Hu, R., Li, T. T., Cui, Z. B. Drying methods of biological sample preparation for scanning electron microscope. Research and Exploration Laboratory. 32, 46-53 (2013).
  33. Graef, M. D. . Introduction to Conventional Transmission Electron Microscopy. , 1 (2003).
check_url/pt/59251?article_type=t

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Citar este artigo
Zhang, Y., Qiao, H., Ren, L., Wang, R., Lu, P. Sample Preparation Method of Scanning and Transmission Electron Microscope for the Appendages of Woodboring Beetle. J. Vis. Exp. (156), e59251, doi:10.3791/59251 (2020).

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