Summary

अस्थिसार्कोमा के लिए तीन आयामी अस्थि कोशिकाबद्ध मैट्रिक्स मॉडल

Published: April 12, 2019
doi:

Summary

ऑस्टियोसार्कोमा (ओएस) के लिए हड्डी extracellular मैट्रिक्स (BEM) मॉडल अच्छी तरह से स्थापित है और यहां दिखाया गया है । यह विट्रो में प्राथमिक ट्यूमर के विकास की नकल उतार के लिए एक उपयुक्त पाड़ के रूप में इस्तेमाल किया जा सकता है और ऊतकीय और cytogenic ओएस के विविधता के अध्ययन के लिए एक आदर्श मॉडल प्रदान करते हैं ।

Abstract

ऑटिसार्कोमा (ओएस) सबसे आम और एक अत्यधिक आक्रामक प्राथमिक अस्थि ट्यूमर है । यह नैदानिक या शकुन कठिनाइयों के साथ साथ अपरमाणुक और हिग्लॉजिक विविधताओं के साथ विशेषता है । ओएस जीनोआम और phenotypically विषम कैंसर कोशिकाओं शामिल हैं । हड्डी microenvironment तत्वों ट्यूमर विविधता और रोग प्रगति के लिए खाते में साबित कर रहे हैं । अस्थि कोशिकाबाह्य मैट्रिक्स (BEM) में माइक्रोस्ट्रक्चरल मैट्रिक्स और जैव रासायनिक घटकों का मूल कोशिकाकोशिकीय आव्यूह रहता है । इस ऊतक विशिष्ट आला ओएस सेल बोने और प्रसार के लिए एक अनुकूल और दीर्घकालिक पाड़ प्रदान करता है । यह लेख BEM मॉडल और इसके आगे प्रयोगात्मक आवेदन की तैयारी के लिए एक प्रोटोकॉल प्रदान करता है । ओएस कोशिकाओं को विकसित करने और ओएस नैदानिक नमूनों की histopathological जटिलता के अनुरूप कई phenotypes में अंतर कर सकते हैं. मॉडल भी विविध morphologies के दृश्य और आनुवंशिक परिवर्तन और अंतर्निहित नियामक तंत्र के साथ उनके सहयोग की अनुमति देता है । मानव ओएस के लिए समजात के रूप में, इस BEM-ओएस मॉडल विकसित किया जा सकता है और ओएस के पैथोलॉजी और नैदानिक अनुसंधान के लिए लागू.

Introduction

ऑस्टियोसार्कोमा (ओएस) आमतौर पर सक्रिय रूप से बढ़ते क्षेत्रों में होता है, लंबे समय तक हड्डियों की metaphysis, किशोरावस्था के दौरान. ओएस के ८०% से अधिक प्रभावित साइटों समीपस् तिबिया और समीपस् थ प्रगंडिका के metaphysis के रूप में के रूप में अच्छी तरह से दोनों बाहर और समीपवर्ती femur, विकास प्लेट1के स्थान के लिए इसी के लिए वरीयता है । ओएस मध्योतक गुण और histologic सुविधाओं और ग्रेड में काफी विविधता के साथ कई सेल उपप्रकार शामिल हैं । असल्याचे समर्थन मध्योतक स्टेम सेल (mscs), osteoblasts प्रतिबद्ध पूर्ववर्ती और pericytes मूल2,3,4,5की कोशिकाओं के रूप में । इन कोशिकाओं आनुवंशिक या पश् चजात परिवर्तन जमा कर सकते है और कुछ हड्डी microपर्यावरणिक संकेतों के प्रभाव में ओएस को जंम दे । जीनोमिक अस्थिरता और ओएस की विषमजनन में दोनों आंतरिक और बाह्य तंत्र परिणाम, कई रूपात्मक और नैदानिक phenotypes के साथ6,7. Individualized चिकित्सा या नई दवाओं की स्क्रीनिंग के लिए, उपन्यास मॉडल विविधता या अन्य नैदानिक विकारों के खिलाफ करने के लिए उत्पन्न करने की जरूरत है ।

ओएस एक अंतर-अस्थिमय घातक ठोस ट्यूमर है । जटिलता और आसपास के microenvironment तत्वों की गतिविधि एक ट्यूमर के विभिंन स्थानों में ओएस कोशिकाओं पर लक्षणप्ररूपी और कार्यात्मक मतभेद प्रदान । अस्थि कोशिकाबाह्य मैट्रिक्स (BEM) खनिज जमाव और अस्थि remodeling के लिए एक संरचनात्मक और जैव रासायनिक पाड़ प्रदान करता है । Extracellular मैट्रिक्स (ECM) के कार्बनिक भाग मुख्य रूप से प्रकार मैं कोलेजन के होते है अस्थिब्लास्टी वंश कोशिकाओं द्वारा स्रावित, जबकि अपने mineralized भाग कैल्शियम फॉस्फेट से बना है hydroxyapatite8के रूप में । ECM नेटवर्क की गतिशील भूमिका के लिए सेल आसंजन, भेदभाव, क्रॉस टॉक और ऊतक समारोह रखरखाव9विनियमित है ।

विखनिजीकृत BEM और ECM hydrogels सफलतापूर्वक सेल संस्कृति में इस्तेमाल किया गया है और सेल प्रसार10,11में वृद्धि कर सकते हैं । संश्लेषित अस्थि की तरह ecm पूल आकार, भाग्य निर्णय और mscs12,13,14की वंश प्रगति को विनियमित कर सकते हैं । इसके अलावा, परिणाम सबूत अपने नैदानिक महत्व अस्थि गठन और उत्थान के दौरान सेलुलर प्रक्रियाओं उत्तेजक द्वारा osteogenic गतिविधि प्रदान करने के लिए15,16,17.

इस अनुच्छेद में, हमारे समूह के तीन आयामी दीर्घकालिक संस्कृति के लिए एक संशोधित मॉडल और अनुकूल विकल्प स्थापित करता है । ओएस कोशिकाओं ऊतक में इंजेक्ट व्युत्पंन bem एक heterogeneously मध्योतक phenotype आसानी से प्लास्टिक की तुलना में दो आयामी संस्कृतियों वर्तमान । साइट से प्राप्त BEM-विशिष्ट समजातीय ऊतक विट्रो में ओएस कोशिकाओं के लिए एक देशी आला होने के रूप में अपनी नाटकीय लाभ दिखाने के लिए और ओएस सैद्धांतिक और नैदानिक अनुसंधान में महान क्षमता है । इस विशेषता BEM मंच सरल लेकिन विट्रो अनुसंधान के लिए कुशल है और कई कैंसर मॉडलिंग में बढ़ाया जा सकता है ।

Protocol

पशु देखभाल और उपयोग की देखभाल और प्रयोगशाला जानवरों के उपयोग के लिए स्वास्थ्य गाइड के राष्ट्रीय संस्थानों के अनुसार आयोजित कर रहे हैं (NIH प्रकाशन NO. 80-23, १९९६ में संशोधित) सूर्य यात्रा-सेन विश्वविद्यालय क…

Representative Results

विखनिजीकरण और विखनिजीकरण के बाद, bem को मजबूत लचीलापन और देशी माउस की हड्डी की तुलना में दृढ़ता के साथ पारभासी प्रतीत होता है । थोड़ा मांसपेशी अवशेषों और मज्जा गुहा के स्थान स्पष्ट रूप से देखा जा सकता है (<…

Discussion

आम तौर पर, ओएस ओटिओब्लास्टी, chondroblastic, और फाइब्रोब्लास्टी उपप्रकारों के रूप में वर्गीकृत किया जा सकता है इसके प्रमुख histologic घटक पर निर्भर करता है । इसका पूर्वानुमान न केवल हिलॉजिक मापदंडों पर निर्भर है बल्क?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

लेखकों को उसकी प्रशासनिक सहायता और लंबे Zhao के लिए अपने उत्कृष्ट तकनीकी सहायता के लिए Liuying चेन का समर्थन मूल्य अस्थि extracellular मैट्रिक्स मचानों के निर्माण के दौरान । इस अध्ययन को चीन के राष्ट्रीय प्राकृतिक विज्ञान फाउंडेशन (३१८७१४१३) से अनुदान द्वारा समर्थित है ।

Materials

15 mL centrifuge tube Greiner 188271
50 mL centrifuge tube Greiner 227270
6 cm cell culture dish Greiner 628160
6-well plate Greiner 657160
Ampicillin Sigma-Aldrich A9393
C57-BL/6J mouse Sun Yat-sen University Laboratory Animal Center
CO2 incubator SHEL LAB SCO5A
Dibasic sodium phosphate Guangzhou Chemical Reagent Factory BE14-GR-500G
DMEM/F12 Sigma-Aldrich D0547
Fetal bovine serum Hyclone SH30084.03
Hemocytometer BLAU 717805
Kanamycin Sigma-Aldrich PHR1487
MG-63 Chinese Academy of Science, Shanghai Cell Bank Human osteosarcoma cell line
MNNG/HOS Chinese Academy of Science, Shanghai Cell Bank Human osteosarcoma cell line
Phenol red Sigma-Aldrich P4633 A solution of phenol red is used as a pH indicator: its color exhibits a gradual transition from yellow to red over the pH range 6.6 to 8.0.
Potassium chloride Sangon Biotech A100395
Potassium Phosphate Monobasic Sangon Biotech A501211
Sodium chloride Sangon Biotech A501218

Referências

  1. Longhi, A., Errani, C., De Paolis, M., Mercuri, M., Bacci, G. Primary bone osteosarcoma in the pediatric age: State of the art. Cancer Treatment Reviews. 32, 423-436 (2006).
  2. Mohseny, A. B., et al. Osteosarcoma originates from mesenchymal stem cells in consequence of aneuploidization and genomic loss of Cdkn2. Journal of Pathology. 219, 294-305 (2009).
  3. Mutsaers, A. J., Walkley, C. R. Cells of origin in osteosarcoma: mesenchymal stem cells or osteoblast committed cells. Bone. 62, 56-63 (2014).
  4. Sato, S., et al. Mesenchymal tumors can derive from Ng2/Cspg4-Expressing pericytes with β-Catenin modulating the neoplastic phenotype. Cell Reports. 16, 917-927 (2016).
  5. Patane, S., et al. MET overexpression turns human primary osteoblasts into osteosarcomas. Pesquisa do Câncer. 66, 4750-4757 (2006).
  6. Poos, K., et al. Genomic heterogeneity of osteosarcoma – shift from single candidates to functional modules. PLoS One. 10, 123082 (2015).
  7. Martin, J. W., Squire, J. A., Zielenska, M. The genetics of osteosarcoma. Sarcoma. 2012, 1-11 (2012).
  8. Alfranca, A., et al. Bone microenvironment signals in osteosarcoma development. Cellular and Molecular Life Sciences. 72, 3097-3113 (2015).
  9. Alford, A. I., Kozloff, K. M., Hankenson, K. D. Extracellular matrix networks in bone remodeling. The International Journal of Biochemistry & Cell Biology. 65, 20-31 (2015).
  10. Sawkins, M. J., et al. Hydrogels derived from demineralized and decellularized bone extracellular matrix. Acta Biomaterialia. 9, 7865-7873 (2013).
  11. Alom, N., Peto, H., Kirkham, G. R., Shakesheff, K. M., Bone White, L. J. Bone extracellular matrix hydrogel enhances osteogenic differentiation of C2C12 myoblasts and mouse primary calvarial cells. Journal of Biomedical Materials Research Part B-Applied Biomaterials. 106, 900-908 (2018).
  12. Datta, N., Holtorf, H. L., Sikavitsas, V. I., Jansen, J. A., Mikos, A. G. Effect of bone extracellular matrix synthesized in vitro on the osteoblastic differentiation of marrow stromal cells. Biomaterials. 26, 971-977 (2005).
  13. Rubio, R., et al. Bone environment is essential for osteosarcoma development from transformed mesenchymal stem cells. Stem Cells. 32, 1136-1148 (2014).
  14. Sadr, N., et al. Enhancing the biological performance of synthetic polymeric materials by decoration with engineered, decellularized extracellular matrix. Biomaterials. 33, 5085-5093 (2012).
  15. Gautschi, O. P., Frey, S. P., Zellweger, R. Bone morphogenetic proteins in clinical applications. Anz Journal of Surgery. 77, 626-631 (2007).
  16. Rochet, N., et al. Modification of gene expression induced in human osteogenic and osteosarcoma cells by culture on a biphasic calcium phosphate bone substitute. Bone. 32, 602-610 (2003).
  17. Spang, M. T., Christman, K. L. Extracellular matrix hydrogel therapies: in vivo applications and development. Acta Biomaterialia. 68, 1-14 (2018).
  18. Schenke-Layland, K., et al. Impact of decellularization of xenogeneic tissue on extracellular matrix integrity for tissue engineering of heart valves. Journal of Structural Biology. 143, 201-208 (2003).
  19. Klein, M. J., Siegal, G. P. Osteosarcoma: anatomic and histologic variants. American Journal of Clinical Pathology. 125, 555-581 (2006).
  20. Lipinski, K. A., et al. Cancer evolution and the limits of predictability in precision cancer medicine. Trends in Cancer. 2, 49-63 (2016).
  21. McGranahan, N., Swanton, C. Clonal heterogeneity and tumor evolution: past, present, and the future. Cell. 168, 613-628 (2017).
  22. Brown, H. K., Schiavone, K., Gouin, F., Heymann, M., Heymann, D. Biology of bone sarcomas and new therapeutic developments. Calcified Tissue International. 102, 174-195 (2018).
  23. Abarrategi, A., et al. Osteosarcoma: cells-of-origin, cancer stem cells, and targeted therapies. Stem Cells International. 2016, 1-13 (2016).
  24. Tsukamoto, S., et al. Mesenchymal stem cells promote tumor engraftment and metastatic colonization in rat osteosarcoma model. International Journal of Oncology. 40, 163-169 (2012).
  25. Rodriguez, C. J., et al. Aerosol gemcitabine: preclinical safety and in vivo antitumor activity in osteosarcoma-bearing dogs. Journal of Aerosol Medicine and Pulmonary Drug Delivery. 23, 197-206 (2010).
  26. Rodriguez, C. J. Using canine osteosarcoma as a model to assess efficacy of novel therapies: Can old dogs teach us new tricks. Advances in Experimental Medicine and Biology. 804, 237-256 (2014).
  27. Mohseny, A. B., et al. An osteosarcoma zebrafish model implicates Mmp-19 and Ets-1 as well as reduced host immune response in angiogenesis and migration. Journal of Pathology. 227, 245-253 (2012).
  28. Saalfrank, A., et al. A porcine model of osteosarcoma. Oncogenesis. 5, 210 (2016).
  29. Zhang, Y., Pan, Y., Xie, C., Zhang, Y. MiR-34a exerts as a key regulator in the dedifferentiation of osteosarcoma via PAI-1–Sox2 axis. Cell Death & Disease. 9, (2018).
  30. Hashimoto, Y., et al. The effect of decellularized bone/bone marrow produced by high-hydrostatic pressurization on the osteogenic differentiation of mesenchymal stem cells. Biomaterials. 32, 7060-7067 (2011).
  31. Benders, K. E. M., et al. Extracellular matrix scaffolds for cartilage and bone regeneration. Trends in Biotechnology. 31, 169-176 (2013).
  32. Grayson, W. L., et al. Effects of initial seeding density and fluid perfusion rate on formation of tissue-engineered bone. Tissue Engineering Part A. 14, 1809-1820 (2008).
  33. Mikulic, D., et al. Tumor angiogenesis and outcome in osteosarcoma. Pediatric Hematology and Oncology. 21, 611-619 (2004).
  34. Ren, K., et al. Vasculogenic mimicry: a new prognostic sign of human osteosarcoma. Human Pathology. 45, 2120-2129 (2014).
  35. Bonuccelli, G., et al. Role of mesenchymal stem cells in osteosarcoma and metabolic reprogramming of tumor cells. Oncotarget. 5, 7575-7588 (2014).

Play Video

Citar este artigo
Zhang, Y., Yao, Y., Zhang, Y. Three-Dimensional Bone Extracellular Matrix Model for Osteosarcoma. J. Vis. Exp. (146), e59271, doi:10.3791/59271 (2019).

View Video