Summary

Visualisation de la structure des ganglions lymphatiques et de la localisation cellulaire à l'aide de la microscopie confocale ex-Vivo

Published: August 09, 2019
doi:

Summary

Ce protocole décrit une technique pour imager différentes populations de cellules dans les ganglions lymphatiques drainants sans altérations dans la structure d’organe.

Abstract

Les ganglions lymphatiques (LN) sont des organes répartis dans le corps, où les réponses immunitaires innées peuvent se connecter à l’immunité adaptative. En fait, les LN sont stratégiquement interposés dans le chemin des vaisseaux lymphatiques, permettant le contact intime des antigènes de tissu avec toutes les cellules immunitaires résidentes dans le LN. Ainsi, la compréhension de la composition cellulaire, de la distribution, de l’emplacement et de l’interaction à l’aide de l’imagerie LN complète ex vivo permettra d’ajouter à la connaissance sur la façon dont le corps coordonne les réponses immunitaires locales et systémiques. Ce protocole montre une stratégie d’imagerie ex vivo à la suite d’une administration in vivo d’anticorps fluorescents qui permet une méthodologie très reproductible et facile à réaliser en utilisant des microscopes confocals conventionnels et des réactifs. Grâce à l’injection sous-cutanée d’anticorps, il est possible d’étiqueter différentes populations cellulaires dans le drainage des LN sans affecter les structures tissulaires qui peuvent être potentiellement endommagées par une technique conventionnelle de microscopie d’immunofluorescence.

Introduction

Les ganglions lymphatiques (LN) sont des organes en forme d’ovoïde largement présents dans tout le corps avec la fonction cruciale de combler les réponses immunitaires innées et adaptatives. Les LN filtrent la lymphe afin d’identifier les particules étrangères et les cellules cancéreuses pour monter une réponse immunitaire contre eux1. Les cellules de présentation d’antigènes (APC), les lymphocytes T et les cellules B travaillent aux côtés pour générer des anticorps spécifiques à l’antigène (immunité humoristique) et des lymphocytes cytotoxiques (immunité cellulaire) pour éliminer les particules étrangères et les cellules cancéreuses2. Ainsi, la compréhension de la dynamique des cellules immunitaires présentes dans le système lymphatique aura des implications importantes pour le développement du vaccin et l’immunothérapie contre le cancer.

L’avènement de microscopes puissants – y compris de nouveaux microscopes confocal et super résolution – a permis un progrès extraordinaire dans la compréhension de la façon dont les différentes populations de cellules immunitaires se comportent dans leur environnement indigène3. Il est maintenant possible d’imager plusieurs sous-types cellulaires simultanés à l’aide d’une combinaison de sondes avec des souris génétiquement modifiées qui expriment des protéines fluorescentes sous contrôle de cibles spécifiques4,5. En fait, les techniques de haute dimension, y compris la cytométrie de masse et l’analyse multi-paramétrique de flux ont été cruciales pour élargir nos connaissances sur la compartimentation et la fonctionnalité de cellules immunitaires différentes dans la santé et la maladie6, 7. Cependant, pour préparer des échantillons pour ces techniques, les tissus ont besoin de digestion et les cellules sont séparées de leur milieu naturel pour être analysées dans des suspensions cellulaires. Pour dépasser ces limitations et permettre une meilleure traduction en biologie, l’objectif du protocole proposé ici est d’appliquer une méthodologie simple pour l’image ex vivo ganglions lymphatiques entiers en utilisant des microscopes confocal stock avec l’avantage d’une vitesse améliorée, tissu la préservation de la structure et la viabilité cellulaire par rapport à la coloration immunofluorescence conventionnelle. En utilisant cette approche, nous avons pu montrer que les souris déficientes pour les lymphocytes T, un sous-type de lymphocyte T impliqué dans la défense précoce de l’hôte contre les agents pathogènes4, ont compromis les follicules et les zones de cellules T par rapport aux souris de type sauvage. Ces résultats nous ont permis de poursuivre une étude dans laquelle nous avons démontré que les lymphocytes T jouent un rôle critique dans l’homéostasie des organes lymphoïdes et la réponse immunitaire humoristique4. En outre, ce protocole fournit une voie physiologique pour que les sondes et les anticorps atteignent le ganglion lymphatique, car ils sont administrés sous-cutanée et se dissipent par la circulation lymphatique de tissu, s’appuyant sur les rapports précédents qui ont employé l’étiquetage in situ avec des anticorps pour visualiser les structures lymphatiques-associées8,9, dynamique germinale centre10,11,12, et les cibles facilement accessibles à la circulation sanguine13 ,14,15.

Protocol

Le protocole a été approuvé par le Comité permanent des animaux de la Harvard Medical School et du Brigham and Women’s Hospital, protocole 2016N000230. 1. Souris utilisées pour l’expérience Utilisez des souris mâles et femelles de 8 semaines sur le fond B6 pour administrer le mélange d’anticorps. Utilisez des souris CX3CR1GFP/WTCCR2RFP/WT pour déterminer si l’imagerie LN entière ex vivo peut également être appliquée à des souris reporters…

Representative Results

Ce manuscrit présente des techniques pour enlever les ganglions lymphatiques inguinaux et popliteal sans endommager leur structure à la suite de l’injection d’anticorps fluorescents pour tacher des populations cellulaires spécifiques dans ces organes (figure1 et figure 2 ). La combinaison puissante de l’immunolabeling des cellules de LN avec BV421 anti-CD4 et BB515 anti-CD19 et l’analyse de formation image confocale a défini la lo…

Discussion

La combinaison de l’imagerie avec d’autres techniques, y compris la biologie moléculaire et l’immunophénotypage de haute dimension a amélioré notre capacité d’étudier les cellules immunitaires dans leur contexte natif. En fait, alors que d’autres approches peuvent nécessiter la digestion des tissus et l’isolement cellulaire – ce qui peut conduire à la perte de l’intégrité des tissus – l’utilisation de l’imagerie in vivo ou ex vivo accorde un grand avantage dans l’étude de différents sous-types cellulaires d’u…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été soutenu par les NIH (R01 AI43458 à H.L.W.).

Materials

BV421 anti-CD4 BD Horizon 562891 GK1.5; 0.2 mg mL-1
BB515 anti-CD19 BD Horizon 564509 1D3; 0.2 mg mL-1
BB515 Rat IgG2a, κ Isotype Control BD Horizon 564418 R35-95; 0.2 mg mL-1
BV421 Mouse IgG2b, K Isotype Control BD Horizon 562603 R35-38 0.2 mg mL-1
Cellview culture dish Greiner-Bio 627861 35×10 mm with glass bottom
Insulin syringes BD Plastipak Insulin U-100
Kimwipes Kimtech Science Brand 7557 size 21 x 20 cm / 100 sheets per box
Microsurgery curved forceps WEP Surgical Instruments custom made 12.5 cm
Microsurgery curved scissors WEP Surgical Instruments custom made 11.5 cm
Needle BD PrecisionGlide 30 gauge × ½ inch
Nikon Eclipse Te + A1R confocal head Nikon loaded with main 4 laser lines (405, 488, 543 and 647 nm)
PE anti-F4/80 BD Pharmigen 565410 T45-2342; 0.2 mg mL-1
PE Rat IgG2a, κ Isotype Control BD Pharmigen 553930 R35-95; 0.2 mg mL-1
Zeiss LSM 710 confocal microscope Zeiss loaded with main 4 laser lines (405, 488, 543 and 647 nm)

Referências

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Citar este artigo
Rezende, R. M., Lopes, M. E., Menezes, G. B., Weiner, H. L. Visualizing Lymph Node Structure and Cellular Localization using Ex-Vivo Confocal Microscopy. J. Vis. Exp. (150), e59335, doi:10.3791/59335 (2019).

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