Summary

Real-time i Vitro overvågning af lugtstof Receptor aktivering af en lugtstof i fasen for damp

Published: April 23, 2019
doi:

Summary

Fysiologisk, aktiveres lugtstof receptorer af lugtstof molekyler inhaleret i fasen for damp. Dog anvender mest in vitro-systemer flydende fase lugtstof stimulation. Vi præsenterer her, en metode, der giver mulighed for real-time in vitro-overvågning af lugtstof receptor aktivering efter lugtstof stimulation i vapor fase.

Abstract

Olfaktoriske perception begynder med samspillet mellem duftstoffer med lugtstof receptorer (eller) udtrykt af olfaktoriske sensoriske neuroner (OSN). Lugt anerkendelse følger en kombinatorisk kodning ordningen, hvor en OR kan aktiveres ved et sæt af Duftenes og én lugtstof kan aktivere en kombination af ORs. Gennem sådanne kombinatorisk kodning, kan organismer registrere og skelne mellem et utal af flygtige lugt molekyler. En lugt ved en given koncentration kan således betegnes ved en aktivering mønster af ORs, der er specifikke for hver lugt. I forstand, revner de mekanismer, som hjernen bruger til at opfatte lugt kræver forståelse lugtstof-OR interaktioner. Dette er grunden til, at Fællesskabets lugtesansen er forpligtet til at “de-orphanize” Disse receptorer. Konventionelle in vitro-systemer anvendes til at identificere lugtstof- eller interaktioner har udnyttet kvægbruget celle medier med lugtstof, som er forskellig fra den naturlige påvisning af lugte via damp Duftenes opløsning i næseslimhinden før interagere med ORs. Her, beskriver vi en ny metode, der giver mulighed for tidstro overvågning af OR aktivering via damp-fase duftstoffer. Vores metode er baseret på måling lejr frigivelse af luminescence ved hjælp af Glosensor assay. Det broer nuværende huller mellem in vivo og in vitro-metoder og danner grundlag for en biomimetiske flygtige kemiske sensor.

Introduction

Lugtesansen giver mulighed for terrestriske dyr til at interagere med deres flygtige kemiske miljø til kørsel adfærd og følelser. Fundamentalt, lugt afsløring proces begynder med den første interaktion af lugtstof molekyler med det olfaktoriske system, på niveauet af lugtstof receptorer (ORs)1. I pattedyr udtrykkes ORs individuelt i olfaktoriske sensoriske neuroner (OSNs) beliggende i Lugtepithelet2. De tilhører familien G-protein koblet receptor (GPCR) og mere præcist den rhodopsin-lignende undergruppe (også kaldet klasse A). ORs par med den stimulerende G protein Golf hvis aktivering fører til cAMP produktion efterfulgt af åbningen af cykliske nukleotid gated-kanaler og generation af handling potentialer. Det er accepteret, at en lugt percept bygger på et bestemt mønster af aktiverede ORs3,4 og derfor lugt anerkendelse følger en kombinatorisk kodning ordningen, hvor en OR kan aktiveres ved et sæt af Duftenes og én lugtstof kan aktivere en kombination af ORs. Og gennem sådanne kombinatorisk kodning, det er postuleret at organismer kan registrere og skelne mellem et utal af flygtige lugt molekyler. En af nøglerne til forståelsen af hvordan lugt opfattes er at forstå, hvordan og hvilke ORs er aktiveret af en given lugt.

I et forsøg på at belyse lugtstof- eller interaktioner, in vitro-funktionelle assays har spillet en væsentlig rolle. Identifikation af agonist lugtende ligander for sjældne ORs (OR nedtrapning orphanization) har været en meget aktiv inden for de sidste tyve år, ved hjælp af forskellige in vitro ex vivo og in vivo funktionelle assays5,6,7 ,8,9,10,11,12,13,14,15,16, 17.

In vitro assay systemer er bedst egnet til den detaljerede funktionelle karakterisering af ORs, herunder identifikation af funktionelle domæner og kritisk rester af ORs, såvel som potentielle ingeniørmæssige anvendelser. Dog, yderligere udvikling af værdifulde in vitro-systemer til ORs har været en udfordring, dels på grund af vanskeligheder med dyrkningsbaserede OSNs og funktionelle udtryk af ORs i heterolog celler. Den første udfordring var at fastlægge protokoller, der er tilladt for celle overflade udtryk for funktionelle ORs i kortlægningen af lugtstof-OR interaktioner. En række uafhængige grupper har udnyttet forskellige tilgange5,6,7,8,9,10,11,12, 14,18,19,20. Et af de tidligste resultater blev foretaget af Krautwurst et al. i markeret N-terminalen af ORs med en forkortet sekvens af rhodopsin (Rho-tag) og observeret en forbedret overflade udtryk i menneskelige embryonale nyre (HEK) celler13. Ændringer til koden knyttet til OR sekvens er stadig en sti udforskes for at forbedre OR udtryk og funktionalitet19,21. Saito mfl. derefter identificeret receptor-transport protein 1 (RTP1) og RTP2, som letter OR handel. 22 en kortere version af RTP1, kaldet RTP1S, har også vist sig at være endnu mere effektiv end den oprindelige protein23. Udviklingen af en cellelinje (Hana3A), som stabilt udtrykker Golf, REEP1, RTP1 og RTP2 24, kombineret med brugen af cyklisk adenosin fra (cAMP) journalister har muliggjort identifikation af lugtstof-OR interaktioner. Den mekanisme, hvormed RTP receptorgruppen af proteiner fremmer celle overflade udtryk af ORs stadig skal fastlægges.

En advarsel af disse etablerede metoder er at de er afhængige af lugtstof stimulation i flydende fase, hvilket betyder at Duftenes pre opløses i en stimulation medium og stimulere cellerne ved at erstatte mediet. Dette er meget forskellige fra de fysiologiske tilstande hvor lugtstof molekyler nå Lugtepithelet i vapor fase og aktivere ORs ved opløsning i næseslimhinden. For at mere ligner fysiologisk relevante stimulus eksponering, Sanz et al.20 foreslås en analyse baseret på vapor stimulation ved at anvende en dråbe af lugtstof løsning at hænge under indersiden af plastfolie placeret på toppen af celle brønde. De indspillede calcium svar ved at overvåge fluorescens intensitet. Denne metode var først til at bruge air-fase lugtstof stimulation, men det tillade ikke en stor screening af OR aktivering.

Her, udviklet vi en ny metode, der muliggør real-time overvågning af in vitro-OR aktivering via damp fase lugtstof stimulation af Glosensor assay (figur 1). Denne analyse har været anvendt tidligere i forbindelse med flydende lugtstof stimulation18,19,25,26,27,28,29, 30 , 31. luminometrisk overvågning kammer er først ekvilibreres med forstøvet lugtstof før pladen læsning (figur 1A). Lugtstof molekyler er derefter solvated i bufferen, badning Hana3A celler, der udtrykker eller interesse, RTP1S og Glosensor proteiner (figur 1B). Hvis lugtstof er en agonist i regionerne, vil eller skifte til en aktiveret kropsbygning og binde Golf, aktivering adenylyl cyclase (AC) og i sidste ende medføre lejr niveauer til at stige. Denne stigende cAMP vil binder til og aktivere Glosensor proteinet til at generere luminescence katalysere luciferin. Denne luminescence registreres derefter af en luminometrisk og muliggør OR aktivering overvågning. Denne metode er af stor interesse i forbindelse med OR deorphanization som det bringer in vitro-systemer tættere på den fysiske opfattelse af lugte.

Protocol

1. Hana3A celler kultur Forberede M10 (Minimum afgørende Medium (MEM) plus 10% v/v føtal bovint serum (FBS)) og M10PSF (M10 plus 100 µg/mL penicillin-streptomycin og 1,25 µg/mL amphotericin B). Kultur celler i 10 mL af M10PSF i en 100 mm celle kultur fad i en inkubator, indstillet på 37 ° C og 5% kuldioxid (CO2). Opdele celler hver 2 dage på en 20% ratio: når 100% sammenløbet af celler (ca 1,1 x 107 celler) er observeret under et fasekontrast mikroskop, aspire …

Representative Results

Vi gennemgået tre mus ORs, Olfr746, Olfr124 og Olfr1093 reaktion ved hjælp af cinnamaldehyd damp stimulation (figur 3). Samtidig, vi brugte en tom vektor kontrol (Rho-pCI) til at forsikre, at de testede ORs lugtstof-induceret aktiviteter var specifikke (fig. 3A). Real-time aktivering af ORs på vapor lugtstof stimulus blev overvåget over 20 måling cyklusser. Data for hver blev godt først normaliseret til tomme vektor kontrol i gennemsnit v?…

Discussion

Opfattelsen af lugt er grundlæggende afhængig af aktivering af ORs. Dermed, forståelse af deres funktionalitet er krævede hen til knæk de komplekse mekanismer, som hjernen bruger til at opfatte sin flygtige kemiske miljø. Men forståelsen af denne proces er blevet hæmmet af vanskelighederne med at etablere en robust metode til at screene OR repertoire for funktionalitet mod Duftenes in vitro-. Celle overflade og heterolog udtryk af ORs er blevet delvist løst ved oprettelsen af mærket receptorer<sup clas…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af tilskud fra NIH (DC014423 og DC016224) og Defense Advanced Research projekt agenturet RealNose projektet. YF boede på Duke University med finansiel støtte fra JSP’ER Program til at fremme strategiske internationale net skal fremskynde omsætning af talentfulde forskere (R2801). Vi takker Sahar Kaleem til redigering af manuskriptet.

Materials

0.05 % trypsin-EDTA Gibco 25300-054 0.05% Trypsin – EDTA (1x), phenol red – store at 4°C
100 mm cell culture dish  BD Falcon 353003 100 mm x 20 mm cell culture dish 
15 mL tube BD Falcon 352099 17 mm x 120 mm conical tubes
96-well plate Corning 3843 96 well, with LE lid white with clear bottom Poly-D-lysine coated Polystyrene
Amphotericin Gibco 15290-018 Amphotericin B 250 µg/mL – store at 4°C
centrifuge machine Jouan C312 Centrifuge machine with swinging bucket rotor for 15 mL
Class II Type A/B3 fumehood NUAIRE NU-407-500 fumehood for cell culturing
FBS Gibco 16000-044 Fetal Bovine Serum – store at -20°C
GloSensor cAMP Reagent Promega E1290 GloSensor cAMP Reagent luminescent protein substrate – store at -20°C
Incubator 37 °C; 5 % CO2 Fisher Scientific 11-676-604 Incubator for cell culturing
Lipofectamine 2000 reagent Invitrogen 11668-019 Lipofectamine 2000 Reagent 1mg/ml transfection reagent – store at 4°C
Luminometer POLARstar OPTIMA BMG LABTECH discontinued 96 well plate reader for luminescence
Mineral oil Sigma M8410 Solvent for odorants – store at room temperature
Minimum Essential Medium (MEM) Corning cellgro 10-010-CV Minimum Essential Medium Eagle with Earle’s salts & L-glutamine – store at 4°C
Penicillin/Streptomycin Sigma Aldrich P4333 Penicillin-Streptomycin solution stabilized with 10,000 U of penicillin and 10 mg streptomycin – store at -20°C
pGlosensor Promega E2301 pGloSensor-22F cAMP luminescent protein plasmid – store at 4°C
phase contrast microscope Leica 090-131.001 phase contrast microscope with x4, x10, x20 objectives
RTP1S H. Matsunami lab 100 ng/µL plasmid – store at 4°C

Referências

  1. Buck, L., Axel, R. A novel multigene family may encode odorant receptors: a molecular basis for odor recognition. Cell. 65 (1), 175-187 (1991).
  2. Serizawa, S., Miyamichi, K., Sakano, H. One neuron-one receptor rule in the mouse olfactory system. Trends in Genetics. 20 (12), 648-653 (2004).
  3. Malnic, B., Hirono, J., Sato, T., Buck, L. B. Combinatorial receptor codes for odors. Cell. 96 (5), 713-723 (1999).
  4. Hallem, E. A., Carlson, J. R. Coding of odors by a receptor repertoire. Cell. 125 (1), 143-160 (2006).
  5. Peterlin, Z., Firestein, S., Rogers, M. E. The state of the art of odorant receptor deorphanization: a report from the orphanage. The Journal of General Physiology. 143 (5), 527-542 (2014).
  6. Saito, H., Chi, Q., Zhuang, H., Matsunami, H., Mainland, J. D. Odor coding by a Mammalian receptor repertoire. Science Signal. 2 (60), (2009).
  7. Geithe, C., Noe, F., Kreissl, J., Krautwurst, D. The broadly tuned odorant receptor OR1A1 is highly selective for 3-methyl-2, 4-nonanedione, a key food odorant in aged wines, tea, and other foods. Chemical Senses. 42 (3), 181-193 (2017).
  8. Nishizumi, H., Sakano, H. Decoding and deorphanizing an olfactory map. Nature Neuroscience. 18 (10), 1432 (2015).
  9. Wetzel, C. H., et al. Functional expression and characterization of a Drosophila odorant receptor in a heterologous cell system. Proceedings of the National Academy of Sciences. 98 (16), 9377-9380 (2001).
  10. Touhara, K., et al. Functional identification and reconstitution of an odorant receptor in single olfactory neurons. Proceedings of the National Academy of Sciences. 96 (7), 4040-4045 (1999).
  11. Levasseur, G., et al. Ligand-specific dose-response of heterologously expressed olfactory receptors. European Journal Of Biochemistry. 270 (13), 2905-2912 (2003).
  12. Zhao, H., et al. Functional expression of a mammalian odorant receptor. Science. 279 (5348), 237-242 (1998).
  13. Krautwurst, D., Yau, K. -. W., Reed, R. R. Identification of ligands for olfactory receptors by functional expression of a receptor library. Cell. 95 (7), 917-926 (1998).
  14. Wetzel, C. H., et al. Specificity and Sensitivity of a Human Olfactory Receptor Functionally Expressed in Human Embryonic Kidney 293 Cells andXenopus Laevis Oocytes. Journal of Neuroscience. 19 (17), 7426-7433 (1999).
  15. Kajiya, K., et al. Molecular bases of odor discrimination: reconstitution of olfactory receptors that recognize overlapping sets of odorants. Journal of Neuroscience. 21 (16), 6018-6025 (2001).
  16. Jiang, Y., et al. Molecular profiling of activated olfactory neurons identifies odorant receptors for odors in vivo. Nature Neuroscience. 18 (10), 1446 (2015).
  17. Von Der Weid, B., et al. Large-scale transcriptional profiling of chemosensory neurons identifies receptor-ligand pairs in vivo. Nature Neuroscience. 18 (10), 1455 (2015).
  18. Geithe, C., Andersen, G., Malki, A., Krautwurst, D. A butter aroma recombinate activates human class-I odorant receptors. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 63 (43), 9410-9420 (2015).
  19. Noe, F., et al. IL-6-HaloTag® enables live-cell plasma membrane staining, flow cytometry, functional expression, and de-orphaning of recombinant odorant receptors. Journal of Biological Methods. 4 (4), 81 (2017).
  20. Sanz, G., Schlegel, C., Pernollet, J. -. C., Briand, L. Comparison of odorant specificity of two human olfactory receptors from different phylogenetic classes and evidence for antagonism. Chemical Senses. 30 (1), 69-80 (2005).
  21. Shepard, B. D., Natarajan, N., Protzko, R. J., Acres, O. W., Pluznick, J. L. A cleavable N-terminal signal peptide promotes widespread olfactory receptor surface expression in HEK293T cells. PLoS One. 8 (7), 68758 (2013).
  22. Saito, H., Kubota, M., Roberts, R. W., Chi, Q., Matsunami, H. RTP family members induce functional expression of mammalian odorant receptors. Cell. 119 (5), 679-691 (2004).
  23. Wu, L., Pan, Y., Chen, G. -. Q., Matsunami, H., Zhuang, H. Receptor-Transporting Protein 1 Short (RTP1S) Mediates the Translocation and Activation of Odorant Receptors by Acting through Multiple Steps. Journal of Biological Chemistry. , (2012).
  24. Zhuang, H., Matsunami, H. Evaluating cell-surface expression and measuring activation of mammalian odorant receptors in heterologous cells. Nature Protocols. 3 (9), 1402 (2008).
  25. Zhang, Y., Pan, Y., Matsunami, H., Zhuang, H. Live-cell Measurement of Odorant Receptor Activation Using a Real-time cAMP Assay. Journal of Visualized Experiments. (128), e55831 (2017).
  26. Li, S., et al. Smelling sulfur: Copper and silver regulate the response of human odorant receptor OR2T11 to low-molecular-weight thiols. Journal of the American Chemical Society. 138 (40), 13281-13288 (2016).
  27. Ahmed, L., et al. Molecular mechanism of activation of human musk receptors OR5AN1 and OR1A1 by (R)-muscone and diverse other musk-smelling compounds. Proceedings of the National Academy of Sciences. 115 (17), 3950-3958 (2018).
  28. Duan, X., et al. Crucial role of copper in detection of metal-coordinating odorants. Proceedings of the National Academy of Sciences. 109 (9), 3492-3497 (2012).
  29. Sekharan, S., et al. QM/MM model of the mouse olfactory receptor MOR244-3 validated by site-directed mutagenesis experiments. Biophysical journal. 107 (5), 5-8 (2014).
  30. Liu, M. T., et al. Carbon chain shape selectivity by the mouse olfactory receptor OR-I7. Organic & Biomolecular Chemistry. 16 (14), 2541-2548 (2018).
  31. Li, Y., et al. Aldehyde Recognition and Discrimination by Mammalian Odorant Receptors via Functional Group-Specific Hydration Chemistry. ACS Chemical Biology. 9 (11), 2563-2571 (2014).
  32. Kida, H., et al. Vapor detection and discrimination with a panel of odorant receptors. Nature Communications. 9 (1), 4556 (2018).
  33. Yu, Y., et al. Responsiveness of G protein-coupled odorant receptors is partially attributed to the activation mechanism. Proceedings of the National Academy of Sciences. 112 (48), 14966-14971 (2015).
  34. de March, C. A., et al. Conserved residues control Activation of mammalian G protein-coupled odorant receptors. Journal of the American Chemical Society. 137 (26), 8611-8616 (2015).
  35. de March, C. A., et al. Odorant receptor 7D4 activation dynamics. Angewandte Chemie. 130 (17), 4644-4648 (2018).
  36. Kim, S. -. K., Goddard, W. A. Predicted 3D structures of olfactory receptors with details of odorant binding to OR1G1. Journal of Computer-Aided Molecular Design. 28 (12), 1175-1190 (2014).
  37. de March, C. A., Kim, S. K., Antonczak, S., Goddard, W. A., Golebiowski, J. G protein-coupled odorant receptors: From sequence to structure. Protein Science. 24 (9), 1543-1548 (2015).
  38. Adipietro, K. A., Mainland, J. D., Matsunami, H. Functional evolution of mammalian odorant receptors. PLoS Genetics. 8 (7), 1002821 (2012).
  39. Mainland, J. D., et al. The missense of smell: functional variability in the human odorant receptor repertoire. Nature Neuroscience. 17 (1), 114 (2014).
  40. Meister, M. On the dimensionality of odor space. Elife. 4, 07865 (2015).
  41. Bushdid, C., Magnasco, M. O., Vosshall, L. B., Keller, A. Humans can discriminate more than 1 trillion olfactory stimuli. Science. 343 (6177), 1370-1372 (2014).
  42. Gerkin, R. C., Castro, J. B. The number of olfactory stimuli that humans can discriminate is still unknown. Elife. 4, 08127 (2015).
  43. Shirasu, M., et al. Olfactory receptor and neural pathway responsible for highly selective sensing of musk odors. Neuron. 81 (1), 165-178 (2014).
  44. Keller, A., Zhuang, H., Chi, Q., Vosshall, L. B., Matsunami, H. Genetic variation in a human odorant receptor alters odour perception. Nature. 449 (7161), 468 (2007).
  45. McRae, J. F., et al. Genetic variation in the odorant receptor OR2J3 is associated with the ability to detect the “grassy” smelling odor, cis-3-hexen-1-ol. Chemical Senses. 37 (7), 585-593 (2012).
  46. de March, C. A., Ryu, S., Sicard, G., Moon, C., Golebiowski, J. Structure-odour relationships reviewed in the postgenomic era. Flavour and Fragrance Journal. 30 (5), 342-361 (2015).
  47. Olson, M. J., Martin, J. L., LaRosa, A. C., Brady, A. N., Pohl, L. R. Immunohistochemical localization of carboxylesterase in the nasal mucosa of rats. Journal of Histochemistry & Cytochemistry. 41 (2), 307-311 (1993).
  48. Nagashima, A., Touhara, K. Enzymatic conversion of odorants in nasal mucus affects olfactory glomerular activation patterns and odor perception. Journal of Neuroscience. 30 (48), 16391-16398 (2010).
check_url/pt/59446?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
de March, C. A., Fukutani, Y., Vihani, A., Kida, H., Matsunami, H. Real-time In Vitro Monitoring of Odorant Receptor Activation by an Odorant in the Vapor Phase. J. Vis. Exp. (146), e59446, doi:10.3791/59446 (2019).

View Video