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Artigo de método

Estudando infecção por Cryptosporidium em sistemas de cultura Organóide humano derivado do tecido 3D por microinjeção

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DOI:

10.3791/59610

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14 de setembro de 2019

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Neste artigo

Resumo

Nós descrevemos protocolos para preparar ooocysts e purificar esporozoítos para estudar a infecção de organóides intestinais e da via aérea humanos pelo parvum de Cryptosporidium. Nós demonstramos os procedimentos para o microinjection dos parasita no lúmen organoid intestinal e na imunocoloração dos organoids. Finalmente, nós descrevemos o isolamento de ooocysts gerados dos organoids.

Resumo

O parvum de Cryptosporidium é uma das causas principais da doença diarreicas humana. Para compreender a patologia do parasita e desenvolver drogas eficientes, um sistema in vitro da cultura que recapitula as circunstâncias no anfitrião é necessário. Organóides, que se assemelham estreitamente aos tecidos de sua origem, são ideais para estudar interações hospedeiro-parasita. Os organóides são estruturas derivadas de tecido tridimensionais (3D) derivadas de células-tronco adultas e crescem em cultura por longos períodos de tempo sem sofrer qualquer aberração genética ou transformação. Têm a polaridade bem definida com superfícies apical e basolateral. Organóides têm várias aplicações em testes de drogas, biobancário, e modelagem de doenças e estudos de interação hospedeiro-micróbio. Aqui nós apresentamos um protocolo passo a passo de como preparar os oocistos e os esporozoítos do Cryptosporidium para infectar organoids intestinais e da via aérea humana. Nós demonstramos então como a microinjeção pode ser usada para injetar os micróbios no lúmen organoid. Existem três métodos principais pelos quais os organóides podem ser usados para estudos de interação hospedeiro-micróbe — microinjeção, cisalhamento mecânico e chapeamento, e fazendo monolayers. Microinjection permite a manutenção da estrutura 3D e permite o controle preciso de volumes do parasita e de contato lateral apical direto para os micróbios. Nós fornecemos detalhes para o crescimento ideal dos organóides para a produção da imagem latente ou do ooocyst. Finalmente, nós igualmente demonstramos como os ooocysts recentemente gerados podem ser isolados do organoid para um processamento e uma análise a jusante mais adicionais.

Introdução

O desenvolvimento de medicamentos ou vacinas para tratamento e prevenção da infecção por Cryptosporidium tem sido dificultado pela falta de sistemas in vitro que imitam precisamente a situação in vivo em humanos1,2. Muitos dos sistemas atualmente disponíveis permitem apenas a infecção a curto prazo (< 5 dias) ou não suportam o ciclo de vida completo do parasita3,4. Outros sistemas que permitam o desenvolvimento completo do parasita são baseados em linhas celulares imortalizadas ou linhas de células cancerosas que não recapitulam fielmente a si....

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Protocolo

Toda a manipulação e Resection do tecido foram executados protocolos aprovados da placa de revisão institucional (IRB) com consentimento paciente.

1. preparação de oocistos de C. parvum para injeção

Nota: Os oocistos de Cryptosporidium foram adquiridos de uma fonte comercial (ver a tabela de materiais). Estes oocistos são produzidos em bezerros e são armazenados em soro-tampão fosfato (PBS) com antibióticos. Eles podem ser armazenados por cerca de 3 meses a 4 ° c e nunca devem ser congelados. Nós normalmente usamos oocistos dentro de um mês. Os organóides podem se....

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Resultados

Os protocolos aqui apresentados resultam na purificação eficiente de oocistos e esporozoítos (Figura 1a) prontos para a microinjeção. O protocolo do excistação conduz à liberação dos esporozoítos de aproximadamente 70 – 80% dos ooocysts, conseqüentemente é essencial filtrar para fora os ooocysts e os escudos restantes através de um filtro de 3 μm. A filtração resulta em quase 100% de purificação de esporozoíta (Figura 1b). Além disso, a adição de um corante verd.......

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Discussão

A cultura de parasitas de Cryptosporidium em organóides intestinais e de vias aéreas fornece um modelo preciso para estudar interações parasita-hospedeiro10 , mas também tem muitas outras aplicações. Por exemplo, os métodos atuais de seleção e propagação de parasitas de Cryptosporidium geneticamente modificados necessitam de passagem em camundongos19 , o que não permite o isolamento de parasitas que têm modificações essenciais para a infecção in vivo. A cu.......

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Divulgações

Os autores não têm nada a revelar.

Agradecimentos

Agradecemos a Deborah a. Schaefer, da escola de Ciências Biomédicas de animais e comparativos, da faculdade de agricultura e ciências biológicas da Universidade do Arizona, Tucson, AZ, EUA, por nos ajudar com a produção e análise do oocisto. Nós igualmente Agradecemos o centro da microscopia e da imagem latente de Franceschi e o DL Mullendore na Universidade de estado de Washington para a preparação e a imagem latente de ooocysts organoid isolados.

D.D. é o beneficiário de um subsídio de VENI da organização neerlandesa para a investigação científica (NWO-ALW, 016. Veni. 171.015). I.H. é o beneficiário de uma subvenção VENI da organização ne....

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Extrato de membrana basal (matriz extracelular)amsbio3533-010-02 
Crypt-a-Glo anticorpo (anticorpo específico para Oocyst)Waterborne, IncA400FLR-1XConcentração Final = Use 2-3 gotas/lâmina
Contas magnéticas revestidas com IgM Crypto-GrabWaterborne, IncIMS400-20 
Dynamag 15 rackThermofisher Scientific12301D 
Dynamag 2 rackThermofisher Scientific12321D 
EMD Millipore  Filtros de Membrana de Policarbonato Isopore - 3µ mEMD-MilliporeTSTP02500 
Corante verde rápidoSIGMAF7252-5G    
Microinjetor Femtojet 4iEppendorf5252000013 
Capilares de vidro de 1 mm de diâmetroWPITW100F-4 
Matrigel (matriz extracelular)Corning356237 
Tubo de microfuga 1.5 mLEppendorfT9661-1000EA&nbsp;
Pontas de micro-carregadorEppendorf612-7933 
Extrator de micropipetas P-97Instrumento de obturadorP-97 
Soro de burro normalBio-RadC06SB&nbsp;
PenstrepGibco15140-122 
Hipoclorito de sódio (use 5%)Clorox50371478 
Slides super stickWaterborne, IncS100-3 
Swinnex-25 47 mm Suporte de filtro de policarbonatoEMD-MilliporeSX0002500 
Ácido taurocólico de hidrato de sal de sódioSIGMAT4009-5G 
Tween-20Merck8221840500 
Agente de montagem VectashieldVector LabsH-1000 
Vortex Genie 2Scientific industries, IncSI0236 
Adv+++ (DMEM+Penstrep+Glutamax+Hepes)    Quantidade final
DMEMInvitrogen12634-010500 mL
PenstrepGibco15140-1225 mL de estoque em 500 mL DMEM
GlutamaxGibco350500385 mL de estoque em 500 mL DMEM
HepesGibco156300565 mL de estoque em 500 mL DMEM
MEIO ORGANOIDE INTESTINAL-OME (Meio de expansão)    Concentração final
A83-01Tocris2939-50mg0,5 µ M
Adv+++  perfazer até 100 ml
B27Invitrogen175040441x
EGFPeprotechAF-100-1550 ng/mL
GastrinTocris3006-1mg10 nM
NACSigmaA9125-25G1.25
mM NICSigmaN0636-100G10 mM
Noggin CMIn house* 10% de sucesso
Inibidor de P38 (SB202190)SigmaS7076-25 mg10 µ M
PGE2Tocris2296/1010 nM
PrimocinInvivoGenant-pm-11 mL/500 mL de mídia
RSpoI CMIn house* 20% de sucesso
Wnt3a CMEm casa* 50% de sucesso
In house* - linhas celulares serão fornecidas mediante solicitação   
MEIO ORGANOIDE INTESTINAL-OMD (Meio de diferenciação)  Para diferenciar os organoides, os organoides do intestino delgado em expansão foram cultivados em meio rico em Wnt por seis a sete dias após a divisão e, em seguida, cultivados em meio de diferenciação (retirada de Wnt, nicotinamida, SB202190, em meio de diferenciação (retirada de Wnt, nicotinamida, SB202190, prostaglandina E2 de um meio rico em Wnt ou OME)
MEIOS ORGANOIDES PULMONARES (meios de diferenciação)    Concentração final
Adv+++  perfazer até 100 ml
ALK-I A83-01Tocris2939-50mg500 nM
B27Invitrogen175040440,0763888889
FGF-10Peprotech100-26100 ng/mL
FGF-7Peprotech100-1925 ng/mL
N-AcetilcisteínaSigmaA9125-25G1,25 mM
NicotinamidaSigmaN0636-100G5 mM
Noggin UPEU-Protein ExpressEntre em contato diretamente com a empresa10%
p38 MAPK-ISigmaS7076-25 mg1 µ M
PrimocinInvivoGenant-pm-11:500
RhoKI Y-27632Abmole BioscienceM1817_100 mg2.5 µ m
Rspo UPEU-Protein ExpressEntre em contato direto com a empresa10%
Reducing buffer (para ressuspensão de oocistos e esporozoítos para injeção)    < / forte >< forte > concentração final< / forte >
L-glutationa reduzidaSigmaG4251-10MG0,5 μ g/μ L de OME/OMD/LOM
BetaínaSigma619620.5 μ g/μ L de OME/OMD/LOM
L-CisteínaSigma168149-2.5G0.5 μ g/μ L de OME / OMD / LOM
Ácido linoléicoSigmaL1376-10MG6.8 μ g/mL de OME/OMD/LOM
TaurinaSigmaT0625-10MG0,5 μ g/μ L de OME/OMD/LOM
Blocking buffer (para coloração de imunofluorescência)    Concentração final
Soro de burro/cabraBio-RadC06SB2%
PBSThermo-Fisher70011044Composição até 100 mL
Tween 20MerckP13790,1%
Lista de anticorpos usados      
Alexa 568 cabra anti-coelhoInvitrogenA-11011Diluição-1:500; RRID: AB_143157
Crypt-a-Glo Comprehensive Kit- Anticorpo marcado com fluoresceína Crypto-GloWaterborne, IncA400FLKDiluição- 1:200
Crypta-Grab IMS Beads- Grânulos magnéticos revestidos em anticorpo monoclonal reativoWaterborne, IncIMS400-20Diluição-1:500
DAPIThermo Fisher ScientificD1306Diluição-1:1,000; RRID: AB_2629482
Faloidina-Alexa 674InvitrogenA22287Diluição-1:1.000; RRID: AB_2620155
anticorpo anti-gp15 de coelho gerado por R. M. O' Connor (co-autor).Mediante solicitaçãoMediante solicitaçãoDiluição-1:500
Sporo-GloWaterborne, IncA600FLR-1XDiluição- 1:200

Referências

  1. Checkley, W., et al. A review of the global burden, novel diagnostics, therapeutics, and vaccine targets for Cryptosporidium. The Lancet Infectious Diseases. 15 (1), 85-94 (2015).
  2. Bones, A. J., et al.

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