Summary

बैक्टीरिया में प्रोटीन-आरएनए बाइंडिंग की मात्रा निर्धारित करने के लिए एक परख

Published: June 12, 2019
doi:

Summary

इस विधि में, हम आरएनए बाध्यकारी प्रोटीन (RBPs) की बाध्यकारी समानता को एक सरल, लाइव, रिपोर्टर परख का उपयोग करके एक सरल, लाइव, रिपोर्टर परख का उपयोग करने के लिए cognate और गैर-cognate बाध्यकारी साइटों के लिए परिमाणित. परख एक पत्रकार जीन के दमन पर आधारित है.

Abstract

प्रोटीन अनुवाद की दीक्षा चरण में, राइबोसोम MRNA के दीक्षा क्षेत्र के लिए बांधता है. अनुवाद दीक्षा MRNA के दीक्षा क्षेत्र के लिए एक आरएनए बाध्यकारी प्रोटीन (RBP) के बंधन द्वारा अवरुद्ध किया जा सकता है, जो राइबोसोम बंधन के साथ हस्तक्षेप. प्रस्तुत विधि में, हम इस अवरुद्ध घटना का उपयोग करने के लिए उनके cognate और गैर cognate बाध्यकारी साइटों के लिए RBPs के बाध्यकारी संबंध मात्रा. ऐसा करने के लिए, हम एक पत्रकार MRNA के दीक्षा क्षेत्र में एक परीक्षण बाइंडिंग साइट डालने और परीक्षण RBP की अभिव्यक्ति प्रेरित. RBP-RNA बाइंडिंग के मामले में, हमने रिपोर्टर अभिव्यक्ति के एक सिग्मोइडल दमन को आरबीपी सांद्रता के एक समारोह के रूप में देखा। बाध्यकारी साइट और आरबीपी के बीच कोई आत्मीयता या बहुत कम आत्मीयता के मामले में, कोई महत्वपूर्ण दमन नहीं देखा गया था। विधि लाइव जीवाणु कोशिकाओं में किया जाता है, और महंगी या परिष्कृत मशीनरी की आवश्यकता नहीं है। यह विभिन्न RBPs है कि बैक्टीरिया में काम कर रहे हैं डिजाइन बाध्यकारी साइटों का एक सेट करने के लिए बाध्यकारी सजातीयता के बीच परिमाणीकरण और तुलना के लिए उपयोगी है. इस विधि उच्च संरचनात्मक जटिलता के साथ बाध्यकारी साइटों के लिए अनुपयुक्त हो सकता है. यह आरबीपी के अभाव में जटिल एमआरएनए संरचना द्वारा राइबोसोमल दीक्षा के दमन की संभावना के कारण है, जिसके परिणामस्वरूप कम बेसल रिपोर्टर जीन अभिव्यक्ति होगी, और इस प्रकार आरबीपी बाइंडिंग पर कम-देखने योग्य रिपोर्टर दमन होगा।

Introduction

आरएनए बाध्यकारी प्रोटीन (आरबीपी) आधारित पोस्ट-ट्रांसक्रिप्शनल विनियमन, विशेष रूप से आरबीपी और आरएनए के बीच बातचीत की विशेषता, हाल के दशकों में बड़े पैमाने पर अध्ययन किया गया है। आरबीपीएस से निकलने वाले बैक्टीरिया में अनुवादात्मक डाउन-विनियमन के कई उदाहरण हैं जो बाधा उत्पन्न करते हैं, या सीधे प्रतिस्पर्धा करते हैं, राइबोसोम बंधन1,2,3. संश् लेषित जीव विज्ञान के क्षेत्र में आरबीपी-आर.एन.ए. अन्तरक्रिया प्रतिलेखन-आधारित आनुवंशिक परिपथों4,5के डिजाइन के लिए एक महत्वपूर्ण उपकरण के रूप में उभर रहे हैं। इसलिए, एक सेलुलर संदर्भ में ऐसे आरबीपी-आरएनए इंटरैक्शन की विशेषता की मांग में वृद्धि हुई है।

प्रोटीन-आरएनए बातचीत के अध्ययन के लिए सबसे आम तरीके इलेक्ट्रोफोरेटिक गतिशीलता पारी परख (EMSA)6, जो इन विट्रो सेटिंग्स में करने के लिए सीमित है, और विभिन्न पुल-डाउन परख7, CLIP विधि8सहित,9 . जबकि इस तरह के तरीकों de नोवो आरएनए बाध्यकारी साइटों की खोज सक्षम, वे इस तरह के श्रम गहन प्रोटोकॉल और महंगी गहरी अनुक्रमण प्रतिक्रियाओं के रूप में कमियों से ग्रस्त हैं और RBP पुल-डाउन के लिए एक विशिष्ट एंटीबॉडी की आवश्यकता हो सकती है. आरएनए की अतिसंवेदनशील प्रकृति के कारण, कई कारक RBP-RNA बातचीत को प्रभावित कर सकते हैं, सेलुलर संदर्भ में RBP-RNA बाध्यकारी पूछताछ के महत्व पर बल. उदाहरण के लिए, हमने और अन्य ने विवो में आरएनए संरचनाओं और विट्रो10,11में महत्वपूर्ण अंतरों का प्रदर्शन किया है।

एक पिछले अध्ययन12के दृष्टिकोण के आधार पर, हम हाल ही में10 का प्रदर्शन किया है कि जब बैक्टीरियोफेज GA13से capsid RBPs के लिए पूर्व डिजाइन बाध्यकारी साइटों रखने , MS214, PP715, और क्यू में16 एक पत्रकार MRNA के अनुवाद दीक्षा क्षेत्र, रिपोर्टर अभिव्यक्ति दृढ़ता से दमित है. हम एक अपेक्षाकृत सरल और मात्रात्मक विधि प्रस्तुत, इस दमन घटना के आधार पर, RBPs और उनके इसी आरएनए बाध्यकारी साइटके बीच संबंध को मापने के लिए vivo में.

Protocol

1. सिस्टम तैयारी बाइंडिंग-साइट प्लाज्मिड का डिजाइन बाइंडिंग साइट कैसेट को चित्र 1में दर्शाए अनुसार डिजाइन करें। प्रत्येक minigene निम्नलिखित भागों में शामिल हैं (5′ करने के लिए 3′): Eagl प?…

Representative Results

प्रस्तुत विधि में एमआरएनए अणु के लिए बाध्य करने के लिए आरबीपी तथा राइबोसोम के बीच प्रतिस्पर्धा का उपयोग किया जाता है (चित्र 1)। यह प्रतियोगिता प्रेरक की बढ़ती सांद्रता के कारण आ?…

Discussion

इस अनुच्छेद में वर्णित विधि ई. कोलाई कोशिकाओं में आरबीपी-आरएनए बंधनात्मक संबंध के विवो माप में मात्रात्मक की सुविधा प्रदान करती है। प्रोटोकॉल अपेक्षाकृत आसान है और परिष्कृत मशीनरी के उपयोग के बिन…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

इस परियोजना की योजना और बजट समिति और इसराइल विज्ञान फाउंडेशन (ग्रेंट नंबर 152/11), मैरी क्यूरी पुन: एकीकरण अनुदान No. के आई-कोर कार्यक्रम से धन प्राप्त किया। PCIG11-GA- 2012-321675, और अनुदान समझौते के तहत यूरोपीय संघ के क्षितिज 2020 अनुसंधान और नवाचार कार्यक्रम से संख्या 664918 – MRG-Grammar.

Materials

Ampicillin sodium salt SIGMA A9518
Magnesium sulfate (MgSO4) ALFA AESAR 33337
48 plates Axygen P-5ML-48-C-S
8- lane plates Axygen RESMW8I
96-well plates Axygen P-DW-20-C
96-well plates for plate reader Perkin Elmer 6005029
ApaLI NEB R0507
Binding site sequences Gen9 Inc. and Twist Bioscience see Table 1
E. coli TOP10 cells Invitrogen C404006
Eagl-HF NEB R3505
glycerol BIO LAB 071205
incubator TECAN liconic incubator
Kanamycin solfate SIGMA K4000
KpnI- HF NEB R0142
ligase NEB B0202S
liquid-handling robotic system TECAN EVO 100, MCA 96-channel
Matlab analysis software Mathworks
multi- pipette 8 lanes Axygen BR703710
N-butanoyl-L-homoserine lactone (C4-HSL) cayman K40982552 019
PBS buffer Biological Industries 020235A
platereader TECAN Infinite F200 PRO
Q5 HotStart Polymerase NEB M0493
RBP seqeunces Addgene 27121 & 40650 see Table 2
SODIUM CHLORIDE (NaCL) BIO LAB 190305
SV Gel and PCR Clean-Up System Promega A9281
Tryptone BD 211705

Referências

  1. Cerretti, D. P., Mattheakis, L. C., Kearney, K. R., Vu, L., Nomura, M. Translational regulation of the spc operon in Escherichia coli. Identification and structural analysis of the target site for S8 repressor protein. Journal of Molecular Biology. 204 (2), 309-329 (1988).
  2. Babitzke, P., Baker, C. S., Romeo, T. Regulation of translation initiation by RNA binding proteins. Annual Review of Microbiology. 63, 27-44 (2009).
  3. Van Assche, E., Van Puyvelde, S., Vanderleyden, J., Steenackers, H. P. RNA-binding proteins involved in post-transcriptional regulation in bacteria. Frontiers in Microbiology. 6, 141 (2015).
  4. Chappell, J., Watters, K. E., Takahashi, M. K., Lucks, J. B. A renaissance in RNA synthetic biology: new mechanisms, applications and tools for the future. Current Opinion in Chemical Biology. 28, 47-56 (2015).
  5. Wagner, T. E., et al. Small-molecule-based regulation of RNA-delivered circuits in mammalian cells. Nature Chemical Biology. 14 (11), 1043 (2018).
  6. Bendak, K., et al. A rapid method for assessing the RNA-binding potential of a protein. Nucleic Acids Research. 40 (14), e105 (2012).
  7. Strein, C., Alleaume, A. -. M., Rothbauer, U., Hentze, M. W., Castello, A. A versatile assay for RNA-binding proteins in living cells. RNA. 20 (5), 721-731 (2014).
  8. Ule, J., Jensen, K. B., Ruggiu, M., Mele, A., Ule, A., Darnell, R. B. CLIP identifies Nova-regulated RNA networks in the brain. Science. 302 (5648), 1212-1215 (2003).
  9. Lee, F. C. Y., Ule, J. Advances in CLIP Technologies for Studies of Protein-RNA Interactions. Molecular Cell. 69 (3), 354-369 (2018).
  10. Katz, N., et al. An in Vivo Binding Assay for RNA-Binding Proteins Based on Repression of a Reporter Gene. ACS Synthetic Biology. 7 (12), 2765-2774 (2018).
  11. Watters, K. E., Yu, A. M., Strobel, E. J., Settle, A. H., Lucks, J. B. Characterizing RNA structures in vitro and in vivo with selective 2’-hydroxyl acylation analyzed by primer extension sequencing (SHAPE-Seq). Methods. 103, 34-48 (2016).
  12. Saito, H., et al. Synthetic translational regulation by an L7Ae-kink-turn RNP switch. Nature Chemical Biology. 6 (1), 71-78 (2010).
  13. Gott, J. M., Wilhelm, L. J., Uhlenbeck, O. C. RNA binding properties of the coat protein from bacteriophage GA. Nucleic Acids Research. 19 (23), 6499-6503 (1991).
  14. Peabody, D. S. The RNA binding site of bacteriophage MS2 coat protein. The EMBO Journal. 12 (2), 595-600 (1993).
  15. Lim, F., Peabody, D. S. RNA recognition site of PP7 coat protein. Nucleic Acids Research. 30 (19), 4138-4144 (2002).
  16. Lim, F., Spingola, M., Peabody, D. S. The RNA-binding Site of Bacteriophage Qβ Coat Protein. Journal of Biological Chemistry. 271 (50), 31839-31845 (1996).
  17. Gibson, D. G., et al. Enzymatic assembly of DNA molecules up to several hundred kilobases. Nature Methods. 6 (5), 343-345 (2009).
  18. . Optimizing Restriction Endonuclease Reactions Available from: https://international.neb.com/tools-and-resources/usage-guidelines/optimizing-restriction-endonuclease-reactions (2018)
  19. . Wizard® SV Gel and PCR Clean-Up System Protocol Available from: https://worldwide.promega.com/resources/protocols/technical-bulletins/101/wizard-sv-gel-and-pcr-cleanup-system-protocol/ (2018)
  20. . Ligation Protocol with T4 DNA Ligase (M0202) Available from: https://international.neb.com/protocols/0001/01/01/dna-ligation-with-t4-dna-ligase-m0202 (2018)
  21. . Routine Cloning Using Top10 Competent Cells – US Available from: https://www.thermofisher.com/us/en/home/references/protocols/cloning/competent-cells-protocol/routine-cloning-using-top10-competent-cells.html (2018)
  22. . NucleoSpin Plasmid – plasmid Miniprep kit Available from: https://www.mn-net.com/ProductsBioanalysis/DNAandRNApurification/PlasmidDNApurificationeasyfastreliable/NucleoSpinPlasmidplasmidMiniprepkit/tabid/1379/language/en-US/Default.aspx (2018)
  23. Sanger, F., Coulson, A. R., Barrell, B. G., Smith, A. J. H., Roe, B. A. Cloning in single-stranded bacteriophage as an aid to rapid DNA sequencing. Journal of Molecular Biology. 143 (2), 161-178 (1980).
  24. . Protocol – How to Create a Bacterial Glycerol Stock Available from: https://www.addgene.org/protocols/create-glycerol-stock/ (2018)
  25. . Making your own chemically competent cells Available from: https://international.neb.com/protocols/2012/06/21/making-your-own-chemically-competent-cells (2018)
  26. . Luria-Bertani (LB) Medium Preparation · Benchling Available from: https://benchling.com/protocols/gdD7XI0J/luria-bertani-lb-medium-preparation (2018)
  27. Delebecque, C. J., Silver, P. A., Lindner, A. B. Designing and using RNA scaffolds to assemble proteins in vivo. Nature Protocols. 7 (10), 1797-1807 (2012).
  28. Hocine, S., Raymond, P., Zenklusen, D., Chao, J. A., Singer, R. H. Single-molecule analysis of gene expression using two-color RNA labeling in live yeast. Nature Methods. 10 (2), 119-121 (2013).
  29. Espah Borujeni, A., et al. Precise quantification of translation inhibition by mRNA structures that overlap with the ribosomal footprint in N-terminal coding sequences. Nucleic Acids Research. 45 (9), 5437-5448 (2017).
  30. Ding, Y., et al. In vivo genome-wide profiling of RNA secondary structure reveals novel regulatory features. Nature. 505, (2013).
  31. Rouskin, S., Zubradt, M., Washietl, S., Kellis, M., Weissman, J. S. Genome-wide probing of RNA structure reveals active unfolding of mRNA structures in vivo. Nature. 505 (7485), 701-705 (2014).
  32. Lucks, J. B., et al. Multiplexed RNA structure characterization with selective 2’-hydroxyl acylation analyzed by primer extension sequencing (SHAPE-Seq). Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (27), 11063-11068 (2011).
  33. Spitale, R. C., et al. Structural imprints in vivo decode RNA regulatory mechanisms. Nature. 519 (7544), 486 (2015).
  34. Watters, K. E., Abbott, T. R., Lucks, J. B. Simultaneous characterization of cellular RNA structure and function with in-cell SHAPE-Seq. Nucleic Acids Research. 44 (2), e12 (2016).
  35. Flynn, R. A., et al. Transcriptome-wide interrogation of RNA secondary structure in living cells with icSHAPE. Nature Protocols. 11 (2), 273-290 (2016).
  36. Bernardi, A., Spahr, P. -. F. Nucleotide Sequence at the Binding Site for Coat Protein on RNA of Bacteriophage R17. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 69 (10), 3033-3037 (1972).
check_url/pt/59611?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Katz, N., Cohen, R., Atar, O., Goldberg, S., Amit, R. An Assay for Quantifying Protein-RNA Binding in Bacteria. J. Vis. Exp. (148), e59611, doi:10.3791/59611 (2019).

View Video