Summary

Forbedret Cross Linking Immunoprecipitation (eCLIP) metode til effektiv identifikation af protein-bundet RNA i Mouse testis

Published: May 10, 2019
doi:

Summary

Her præsenterer vi en eCLIP-protokol for at bestemme store RNA-mål for RBP-kandidater i testikler.

Abstract

Spermatogenesis definerer en højt bestilt proces af mandlige kimcelle differentiering i pattedyr. I testis, transkription og oversættelse er afkoblet, understreger betydningen af post-transkriptional regulering af genekspression orkestreret af RBPs. At belyse mekanistiske roller af en RBP, Cross Linking immunopræcipitation (Clip) metode kan bruges til at indfange sine endogene direkte RNA mål og definere de faktiske interaktion sites. Den forbedrede CLIP (eCLIP) er en nyudviklet metode, der giver flere fordele i forhold til de konventionelle CLIPs. Men, brugen af eCLIP har hidtil været begrænset til cellelinjer, der opfordrer til udvidede applikationer. Her har vi ansat eCLIP til at studere MOV10 og MOV10L1, to kendte RNA-bindende helicases, i mus testis. Som forventet, finder vi, at MOV10 overvejende binder sig til 3 ‘ uover satte regioner (UTRs) af mRNA og MOV10L1 selektivt binder sig til Piwi-interagerende RNA (piRNA) forløber transkriptioner. Vores eCLIP-metode giver mulighed for hurtig bestemmelse af større RNA-arter, der er bundet af forskellige RBPs via mindre sekvensering af subkloner og dermed tilgængelighed af kvalificerede biblioteker, som en arrestordre til at fortsætte med dyb sekvensering. Denne undersøgelse fastsætter et relevant grundlag for eCLIP i pattedyrs testikler.

Introduction

Mammale testiklerne repræsenterer en fremragende udviklingsmodel, hvor en indviklet Celledifferentiering program kører cyklisk at give talrige spermatozoer. En unik værdi af denne model ligger i fremkomsten af transkriptional inaktivering på visse stadier af spermatogenesen, typisk når meiotisk sex kromosom inaktivering (MSCI) forekommer1,2 og når runde spermatider gennemgår drastisk nuklear komprimering under spermiogenesis3. Disse sammenhængende transkriptionsmæssige hændelser nødvendiggør en regulering efter transkriptional gen, hvor RNA-bindende proteiner (RBPs) spiller en afgørende rolle, idet de danner transkriptomer og bevarer fertiliteten hos hanner.

For at identificere de bona fide-RNA-mål for en individuel RBP in vivo, blev Cross Linking immunopræcipitation (Clip) metodenudviklet til4,5, baseret på, men ud over den regulære RNA immunopræcipitation (RIP)6,7 , ved inkorporering af centrale trin, herunder ultraviolet (UV) Cross Linking, streng vask og gel overførsel for at forbedre signal specificitet. Den avancerede anvendelse af CLIP kombineret med sekvensering med høj gennemløb har vakt stor interesse i profilering af protein-RNA interaktion på genomdækkende niveauer8. Ud over genetiske undersøgelser af RBP-funktion har sådanne biokemiske metoder, der identificerer det direkte samspil mellem endogene proteiner og RNA, været uundværlige for nøjagtigt at belyse de RNA-regulerende roller for RBPs. For eksempel er MOV10L1 en testis-specifik RNA helicase kræves for mandlig fertilitet og Piwi-interagerende RNA (Pirna) Biogenese9. Parallogue MOV10 er kendt som en allestedsnærværende og multifunktionelle RNA helicase med roller i flere aspekter af RNA biologi10,11,12,13,14 , 15 af , 16 ud af , 17 ud af , 18. ved at ansætte den konventionelle Clip-SEQ, vi fandt, at MOV10L1 binder og regulerer primære Pirna prækursorer til at initiere tidlig Pirna behandling19,20, og at MOV10 binder mRNA 3 ‘ utrs og samt Noncoding RNA arter i testikel kimceller (data ikke vist).

Ikke desto mindre, CLIP er oprindeligt en besværlig, radioaktiv procedure efterfulgt af sekvensering bibliotek forberedelse med et bemærkelsesværdigt tab af CLIP Tags. I den konventionelle CLIP, er et cDNA bibliotek forberedt ved hjælp af adaptere ligeret ved begge RNA ekstremiteter. Efter protein fordøjelsen forbliver kryds sammenkædede korte polypeptider knyttet til RNA-fragmenter. Dette kryds bindende mærke delvist blokerer reverse transkriptase (rtase) progression under cDNA syntese, hvilket resulterer i afkortede cdnas, som repræsenterer omkring 80% af cDNA Library21,22. Således er det kun cDNA-fragmenter som følge af RTase, der springer over Cross Linking-stedet (læse-through), der er sekvenseret. For nylig, forskellige CLIP tilgange, såsom PAR-CLIP, iCLIP, eCLIP og uvCLAP, har været ansat til at identificere crosslink sites af RBPs i levende celler. PAR-CLIP involverer anvendelse af 365 nm UV-stråling og fotoaktivatable nukleotidanalotter og er derfor eksklusivt til in-culturing levende celler, og inkorporering af nukleosid analoler i nysyntetiserede udskrifter er tilbøjelige til at producere bias hvor RNA fysisk interagerer med protein23,24. I iCLIP er det kun en enkelt adapter, der er ligeret til de 3 ‘ ekstremiteter af crosslinked RNA-fragmenter. Efter reverse transkription (RT), er både afkortet og læse-gennem cdnas opnået ved intramolecularly cirkularisering og re-linearisering efterfulgt af polymerase kædereaktion (PCR) amplifikation25,26. Effektiviteten af intramolekylær cirkularisering er dog relativt lav. Selv om ældre CLIP-protokoller har brug for mærkning af crosslinked RNA med en radioisotop, ultraviolet Cross linking og Affinity rensning (uvCLAP), med en proces med streng tandem affinitets rensning, er ikke afhængig af radioaktivitet27. Ikke desto mindre er uvCLAP begrænset til kultiverede celler, der skal transficeret med udtrykket vektor bærer 3x FLAG-HBH tag for tandem affinitet rensning.

I eCLIP blev adaptere ligeret først ved 3 ‘ ekstremiteten af RNA efterfulgt af RT, og derefter ved 3 ‘ ekstremiteterne af cDNAs i en intermolekylær tilstand. Derfor er eCLIP i stand til at indfange alle afkortet og læse-through cDNA28. Også, det er hverken begrænset til radioaktiv mærkning, eller at bruge cellelinjer baseret på dens princip, samtidig med at enkelt-nukleotid opløsning.

Her giver vi en trinvis beskrivelse af en eCLIP-protokol, der er tilpasset musens testikler. Kort, denne eclip protokol starter med UV tværbinding af testikel tubuser, efterfulgt af delvis RNase fordøjelse og immunopræcipitation ved hjælp af et protein-specifikt antistof. Dernæst er det proteinbundne RNA dephosphoryleret, og adapteren er ligeret til dens 3 ‘ ende. Efter protein gel elektroforese og overførsel af gel til membran isoleres RNA ved at skære membran arealet af et forventet størrelsesinterval. Efter RT er DNA-adapteren ligeret til 3 ‘ enden af cDNA efterfulgt af PCR-forstærkning. Screening af subkloner forud for sekventering med høj hastighed tages som en Biblioteks kvalitetskontrol. Denne protokol er effektiv til at identificere de vigtigste arter af protein-bundet RNA af RBPs, eksemplificeret ved de to testis-udtrykker RNA helicases MOV10L1 og MOV10.

Protocol

Alle udførte dyreforsøg er blevet godkendt af Nanjing Medical University Committee. Mand C57BL/6-mus blev holdt under kontrollerede lysdrifts betingelser og blev forsynet med mad og vand. 1. vævs høst og UV crosslinking Euthanize 2 voksne mus bruger kuldioxid (CO2) for 1-2 min eller indtil vejrtrækningen stopper. Derefter skal du udføre cervikal dislokation på hver mus. Høst omkring 100 mg testiklerne fra mus i passende alder (en voksen testikler i dette …

Representative Results

Eclip-proceduren og resultaterne er illustreret i figur 1, figur 2, figur 3, figur 4. Mus blev aflives med kuldioxid og en lille indsnit blev foretaget i den nedre abdomen ved hjælp af kirurgiske saks (figur 2a,B). Muse tes…

Discussion

Med stigende forståelse af den universelle rolle af rbps under både biologiske og patologiske sammenhænge, er klippet metoder blevet bredt udnyttet til at afsløre den molekylære funktion af rbps20,32,33, 34af35. Den protokol, der beskrives her, repræsenterer en tilpasset anvendelse af eCLIP-metoden til muse testikler.

En udfo…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Eric L Van Nostrand og gene W Yeo for en god vejledning i den oprindelige protokol. K.Z. blev støttet af National Key R & D program i Kina (2016YFA0500902, 2018YFC1003500), og National Natural Science Foundation i Kina (31771653). L.Y. blev støttet af National Natural Science Foundation i Kina (81471502, 31871503) og innovative og iværksætter program af Jiangsu Province.

Materials

Antibodies
Anti-mouse MOV10  antibody Proteintech, China 10370-1-AP
Anti-mouse MOV10L1 antibody Zheng et al.20109 polyclonal antisera UP2175 provided by P. Jeremy Wang lab(University of Pennsylvania)
HRP Goat Anti-Rabbit IgG  ABclonal AS014
Rabbit IgG Beyotime, China A7016
Equipment
Centrifuge Eppendorf, Hamburg, Germany 5242R
Digital sonifier BRANSON,USA BBV12081048A 450 Watts; 50/60 HZ
DynaMag-2 Magnet Invitrogen,USA 12321D
Mini Blot Module Invitrogen,USA B1000
Mini Gel Tank Invitrogen,USA A25977
Shaking incubator Eppendorf, Hamburg, Germany Thermomixer comfort 
Tissue Grinder, Dounce PYREX, USA 1234F35 only  the "loose" pestle is used in this protocol
TProfessional standard 96 Gradient Biometra, Germany serial no.: 2604323
Tube Revolver  Crystal, USA serial no.: 3406051
UV-light cross-linker UVP, USA CL-1000
Materials
TC-treated Culture Dish Corning, USA 430167 100 mm 
Tubes Corning, USA 430791 15 mL
Microtubes tubes AXYGEN , USA MCT-150-C 1.5 mL 
Reagents 
Acid phenol/chloroform/isoamyl alcohol  Solarbio, China P1011 25:24:01
AffinityScript Enzyme Agilent, USA 600107
Antioxidant Invitrogen,USA NP0005
DH5α competent bacteria Thermo Scientific, USA 18265017 these economical cells yield >1 x 106 transformants/µg control DNA per 50 µL reaction.
DMSO Sigma-Aldrich, USA D8418
DNA Ladder Invitrogen, USA 10416014
dNTP Sigma-Aldrich, USA DNTP100-1KT
Dynabeads Protein A  Invitrogen, USA 10002D
ECL reagent Vazyme, China E411-04
EDTA Invitrogen, USA AM9260G
EDTA free protease inhibitor cocktail Roche, USA 04693132001 add fresh
Exo-SAP-IT Affymetrix, USA 78201 PCR Product Cleanup Reagent 
FastAP enzyme Thermo Scientific, USA EF0652
LDS Sample Buffer Thermo Scientific, USA NP0007
MetaPhor Agarose  lonza, Switzerland 50180
MgCl2 Invitrogen, USA AM9530G
MiniElute gel Extraction QIAGEN, Germany 28604 column store at 4 ℃; buffer QG=gel dissolving buffer; buffer PE= wash buffer(for step 14)
MyONE Silane beads Thermo Scientific, USA 37002D nucleic acids extraction magnetic beads
NaCl Invitrogen,USA AM9759
 
NP-40 Amresco, USA M158-500ML
NuPAGE Bis-Tris Protein Gels Invitrogen, USA NP0336BOX 4%–12%,1.5 mm, 15-well
NuPAGE MOPS SDS Buffer Kit  Invitrogen, USA NP0050
PBS Gibco, USA 10010023
Phase-Locked Gel (PLG) heavy tube   TIANGEN, China WM5-2302831
PowerUp SYBR Green Master Mix Applied Biosystems, USA A25742
proteinase K NEB, New England  P8107S
Q5 PCR master mix  NEB, New England  M0492L
RLT buffer QIAGEN, Germany 79216 RNA purification lysis buffer 
RNA Clean & Concentrator-5 columns  ZYMO RESEARCH, USA R1016 RNA purification and concentration columns
RNase I  Invitrogen, USA AM2295
RNase Inhibitor Promega, USA N251B
RQ1 DNase Promega,USA M610A
Sample Reducing Agent Invitrogen,USA NP0009
SDS Solution Invitrogen, USA 15553027 10%
Sodium deoxycholate Sigma-Aldrich, USA 30970 protect from light
T4 PNK enzyme NEB, New England  M0201L
T4 RNA ligase 1 high conc NEB, New England  M0437M
TA/Blunt-Zero Cloning Mix Vazyme, China C601-01
TBE Invitrogen,USA AM9863
Tris-HCI Buffer Invitrogen, USA 15567027
Triton X-100 Sangon Biotech, China A600198 
Tween-20 Sangon Biotech, China A600560
Urea Sigma-Aldrich, USA U5378
X-ray Films Caresteam, Canada 6535876

Referências

  1. Turner, J. M., Mahadevaiah, S. K., Ellis, P. J., Mitchell, M. J., Burgoyne, P. S. Pachytene asynapsis drives meiotic sex chromosome inactivation and leads to substantial postmeiotic repression in spermatids. Developmental Cell. 10 (4), 521-529 (2006).
  2. Turner, J. M. A. Meiotic sex chromosome inactivation. Development. 134 (10), 1823-1831 (2007).
  3. Kimmins, S., Sassone-Corsi, P. Chromatin remodelling and epigenetic features of germ cells. Nature. 434 (7033), 583-589 (2005).
  4. Ule, J., et al. CLIP identifies Nova-regulated RNA networks in the brain. Science. 302 (5648), 1212-1215 (2003).
  5. Ule, J., Jensen, K., Mele, A., Darnell, R. B. CLIP: a method for identifying protein-RNA interaction sites in living cells. Methods. 37 (4), 376-386 (2005).
  6. Trifillis, P., Day, N., Kiledjian, M. Finding the right RNA: identification of cellular mRNA substrates for RNA-binding proteins. RNA. 5 (8), 1071-1082 (1999).
  7. Tenenbaum, S. A., Carson, C. C., Lager, P. J., Keene, J. D. Identifying mRNA subsets in messenger ribonucleoprotein complexes by using cDNA arrays. Proceedings of National Acadamy of Sciences U S A. 97 (26), 14085-14090 (2000).
  8. Chi, S. W., Zang, J. B., Mele, A., Darnell, R. B. Argonaute HITS-CLIP decodes microRNA-mRNA interaction maps. Nature. 460 (7254), 479-486 (2009).
  9. Zheng, K., et al. Mouse MOV10L1 associates with Piwi proteins and is an essential component of the Piwi-interacting RNA (piRNA) pathway. Proceedings of National Acadamy of Sciences U S A. 107 (26), 11841-11846 (2010).
  10. Gregersen, L. H., et al. MOV10 Is a 5′ to 3′ RNA helicase contributing to UPF1 mRNA target degradation by translocation along 3′ UTRs. Molecular Cell. 54 (4), 573-585 (2014).
  11. Banerjee, S., Neveu, P., Kosik, K. S. A coordinated local translational control point at the synapse involving relief from silencing and MOV10 degradation. Neuron. 64 (6), 871-884 (2009).
  12. Choi, J., Hwang, S. Y., Ahn, K. Interplay between RNASEH2 and MOV10 controls LINE-1 retrotransposition. Nucleic Acids Research. 46 (4), 1912-1926 (2018).
  13. Goodier, J. L., Cheung, L. E., Kazazian, H. H. MOV10 RNA helicase is a potent inhibitor of retrotransposition in cells. PLoS Genetics. 8 (10), e1002941 (2012).
  14. Haussecker, D., et al. Capped small RNAs and MOV10 in human hepatitis delta virus replication. Nature Structural & Molecular Biology. 15 (7), 714-721 (2008).
  15. Kenny, P. J., et al. MOV10 and FMRP regulate AGO2 association with microRNA recognition elements. Cell Reports. 9 (5), 1729-1741 (2014).
  16. Messaoudi-Aubert, S. E., et al. Role for the MOV10 RNA helicase in Polycomb-mediated repression of the INK4a tumor suppressor. Nature Structural & Molecular Biology. 17 (7), 862-868 (2010).
  17. Sievers, C., Schlumpf, T., Sawarkar, R., Comoglio, F., Paro, R. Mixture models and wavelet transforms reveal high confidence RNA-protein interaction sites in MOV10 PAR-CLIP data. Nucleic Acids Research. 40 (20), e160 (2012).
  18. Skariah, G., et al. Mov10 suppresses retroelements and regulates neuronal development and function in the developing brain. BMC Biology. 15 (1), 54 (2017).
  19. Zheng, K., Wang, P. J. Blockade of pachytene piRNA biogenesis reveals a novel requirement for maintaining post-meiotic germline genome integrity. PLoS Genetics. 8 (11), e1003038 (2012).
  20. Vourekas, A., et al. The RNA helicase MOV10L1 binds piRNA precursors to initiate piRNA processing. Genes & Development. 29 (6), 617-629 (2015).
  21. Hocq, R., Paternina, J., Alasseur, Q., Genovesio, A., Le Hir, H. Monitored eCLIP: high accuracy mapping of RNA-protein interactions. Nucleic Acids Research. 46 (21), 11553-11565 (2018).
  22. Huppertz, I., et al. iCLIP: protein-RNA interactions at nucleotide resolution. Methods. 65 (3), 274-287 (2014).
  23. Hafner, M., et al. Transcriptome-wide identification of RNA-binding protein and microRNA target sites by PAR-CLIP. Cell. 141 (1), 129-141 (2010).
  24. Hafner, M., et al. PAR-CliP–a method to identify transcriptome-wide the binding sites of RNA binding proteins. Journal of Visualized Experiments. (41), (2010).
  25. Konig, J., et al. iCLIP reveals the function of hnRNP particles in splicing at individual nucleotide resolution. Nature Structural & Molecular Biology. 17 (7), 909-915 (2010).
  26. Konig, J., et al. iCLIP–transcriptome-wide mapping of protein-RNA interactions with individual nucleotide resolution. Journal of Visualized Experiments. (50), (2011).
  27. Maticzka, D., Ilik, I. A., Aktas, T., Backofen, R., Akhtar, A. uvCLAP is a fast and non-radioactive method to identify in vivo targets of RNA-binding proteins. Nature Communications. 9 (1), 1142 (2018).
  28. Van Nostrand, E. L., et al. Robust transcriptome-wide discovery of RNA-binding protein binding sites with enhanced CLIP (eCLIP). Nature Methods. 13 (6), 508-514 (2016).
  29. Radulovich, N., Leung, L., Tsao, M. S. Modified gateway system for double shRNA expression and Cre/lox based gene expression. BMC Biotechnology. 11, 24 (2011).
  30. Breunig, C. T., et al. A Customizable Protocol for String Assembly gRNA Cloning (STAgR). Journal of Visualized Experiments. (142), (2018).
  31. Kuhn, R. M., Haussler, D., Kent, W. J. The UCSC genome browser and associated tools. Briefings in Bioinformatics. 14 (2), 144-161 (2013).
  32. Vourekas, A., et al. Mili and Miwi target RNA repertoire reveals piRNA biogenesis and function of Miwi in spermiogenesis. Nature Structural & Molecular Biology. 19 (8), 773-781 (2012).
  33. Preitner, N., et al. APC is an RNA-binding protein, and its interactome provides a link to neural development and microtubule assembly. Cell. 158 (2), 368-382 (2014).
  34. Meyer, C., et al. The TIA1 RNA-Binding Protein Family Regulates EIF2AK2-Mediated Stress Response and Cell Cycle Progression. Molecular Cell. 69 (4), 622-635 (2018).
  35. Gerstberger, S., Hafner, M., Tuschl, T. A census of human RNA-binding proteins. Nature Reviews Genetics. 15 (12), 829-845 (2014).
  36. Vourekas, A., Mourelatos, Z. HITS-CLIP (CLIP-Seq) for mouse Piwi proteins. Methods in Molecular Biology. 1093, 73-95 (2014).
check_url/pt/59681?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Xu, Q., Wang, C., Ling, L., Yue, Q., Liu, M., Zhang, S., Fu, K., Ye, L., Zheng, K. Enhanced Crosslinking Immunoprecipitation (eCLIP) Method for Efficient Identification of Protein-bound RNA in Mouse Testis. J. Vis. Exp. (147), e59681, doi:10.3791/59681 (2019).

View Video