Summary

성인 마우스 숫자 절단 및 재생 : 포유류 블라스터 마 형성 및 intramembranous Ossification을 조사하는 간단한 모델

Published: July 12, 2019
doi:

Summary

여기에서, 우리는 형광 성 면역 조직 화학 및 순차적인 생체 내 마이크로 컴퓨터 단층 촬영에 의해 분석된 포유류 배반증 의 형성 및 intramembranous 골화를 조사하기 위하여 성숙한 마우스 말두 지골 절단의 프로토콜을 제시합니다.

Abstract

여기에서, 우리는 성인 마우스 말단 말두 지골 (P3) 절단의 프로토콜을 제시, 상형 재생의 절차적으로 간단하고 재현 가능한 포유류 모델, 이는 배반 형성및 분석 된 비정형 골화를 포함 형광 면역 조직 화학 및 순차적 인 생체 내 마이크로 컴퓨터 단층 촬영 (μCT). 포유류 재생은 말단 지골(P3)의 말단 영역을 경각시키는 절단으로 제한된다; 더 근위 수준에서 절단 된 숫자는 재생및 섬유 성 치유와 흉터 형성을 받아야하지 않습니다. 재생 반응은 증식 블라스트ema의 형성에 의해 매개되고, 절단 된 골격 길이를 복원하기 위해 intramembranous 골화를 통한 뼈 재생이 뒤따릅니다. P3 절단은 포유동물에서 의상 재생을 조사하는 전임상 모델이며, 성공적인 재생 반응으로 섬유성 치유를 대체하는 치료 전략의 설계를 위한 강력한 도구이다. 우리의 프로토콜은 1) 형광 면역 성 화학을 사용하여 1) 조기 및 후기 블라베ema 세포 집단을 식별하고, 2) 재생의 맥락에서 연구 revascularization, 3) 복잡한 뼈에 대한 필요없이 intramembranous 골화를 조사 안정화 장치. 우리는 또한 절단 후 형태 학적 변화를 검사할 뿐만 아니라 재생 과정에서 동일한 숫자의 볼륨과 길이 변화를 정량화하기 위해 고해상도 이미지를 만들기 위해 생체 내 μCT에서 순차적 사용을 입증합니다. 우리는 이 프로토콜이 포유류에서 에피소드및 조직 재생 반응을 조사하기 위해 엄청난 유용성을 제공한다고 믿습니다.

Introduction

포유동물은 인간 및 마우스를 포함하며, 말단 지골(P3)의 말단 절단 후 그들의 자릿수의 팁을 재생할 수 있는 능력을 가지며,2,3. 마우스에서, 재생 반응은 절단 수준 의존; 점점 근위 수 자릿수 절단P3 네일 매트릭스4,5,6에 절단 시절단에서 완전한 재생 실패까지 점진적으로 감쇠 재생 반응을 표시 , 7명 , 8.P3 재생은 절단된 구조물을 재생하기 위해 형태 형성을 겪는 증식 세포의 집단으로서 정의되는 블라스마의 형성에 의해 매개된다9. 절단에 의해 손실 된 구조를 재생하는 블라스테마의 형성, 프로세스 는 상형 재생이라고, 부상 후 기존의 조직 수리에서 다조직 수준의 P3 재생 반응을 구별6, 10. P3 재생은 상처 치유11,12,뼈 증11,12,및 12를 포함한 복잡한 재생 과정을 조사하는 재현 가능하고 절차적으로 간단한 모델입니다. 혈관신생13,말초신경재생14, 골수변환을 통한 골수변환(15).

면역성 화학을 이용한 이전 연구는 블라마가 이질성, 혈관, 저산소성 및 매우 증식성11,13,15,16임을입증했다. 말단 P3 절단 에 이어, 초기 블라스트마는 처음에 P3 골막 및 내분과 연관되며 뼈표면(15)에인접한 강력한 증식 및 초기 골형성을 특징으로 한다. 뼈 분해 및 상처 폐쇄 후, 이질적인 blastema는 후피오스텔스와 내분과 관련된 세포의 병합에 의해 형성되고, 그 다음에는 인트라엠브라우스 골화를 통해 뼈를 포함한 골반 성분의 분화가 뒤따릅니다. 15.

상해에 응하여 뼈 수리는 전형적으로 endochondral 골화에 의해, 즉 후속 뼈 형성을 위한 템플릿을 형성하는 초기 연골 굳은 살을 통해 발생합니다17,18. 긴 뼈 intramembranous 골화, 즉, 연골 중간체없이 뼈 형성, 일반적으로 복잡한 산만 장치 또는 수술 고정을 사용하여 유도19,20. 자리 재생 반응은 기존의 intramembranous ossification 모델에 비해 이점을 제공하는 전 임상 모델입니다: 1) intramembranous ossification을 자극하기 위하여 외부 또는 내부 고정 포스트 상해를 요구하지 않습니다, 2) 각 동물의 4자리 숫자를 사용하여 수행하여 동물 사용을 최소화하면서 샘플을 최대화하고 3) 생체 내 마이크로 컴퓨터 단층 촬영 (μCT) 분석을 쉽고 빠르게 수행 할 수 있습니다.

본 연구에서, 우리는 재현 가능하고 강력한 재생 반응을 달성하기 위해 표준화 된 P3 절단 평면을 보여줍니다. 또한, 파라핀 섹션을 사용하여 파라핀 섹션을 사용하여 파라페증 형성, 재생의 맥락에서의 재혈관화, 인트라엠브러스를 통한 뼈로의 배반 변환을 시각화하는 최적화된 형광 면역조직 화학 프로토콜을 시연합니다. 고성화. 우리는 또한 재생 과정에서 동일한 숫자의 뼈 형태, 부피 및 길이의 변화를 식별하기 위해 순차적 인 생체 내 μCT의 사용을 보여줍니다. 이 프로토콜의 목적은 절단 후 포유류 배증마 형성을 조사하고 2 가지 기술, 형광 면역 조직 화학 및 생체 내 순차적 μCT를 입증하는 것입니다.

Protocol

모든 동물 사용 및 기술은 텍사스 A&M 대학의 기관 동물 관리 및 사용 위원회의 표준 운영 절차를 준수했습니다. 1. 성인 마우스 뒷다리 말단 P3 절단 산소에 이소플루란 가스를 사용하여 8~ 12주령 CD-1마우스(물자표)를 마취; 처음에는 챔버에서 3 %에서 마취되고 수술 기간 동안 2 %의 이소플루란이 코콘에 의해 공급됩니다. 마취 상태에서 건조를 방지하기 위해…

Representative Results

6/7 DPA(그림 2A-D), 9DPA(그림 2E-H) 및 10DPA(그림2I-L)에서P3 자릿수를 재생성 마우스를 렌x2, OSX 및 PCNA에 대한 항체로 면역으로 염색하여 인화골을 시각화하였다. 재생, 및 VWF에 대한 항체로 면역을 염색하여 blastema 형성을 시각화합니다. 절단 전 및 재생 과정에 걸쳐 다양한 시점에서 스캔된 자릿수?…

Discussion

이 프로토콜은 성인 마우스 말단 P3 절단, 형광 면역 조직 화학 염색의 표준화 된 절차를 설명하여 블라스트마 형성 및 비변형 골화를 시각화하고 조사하고, 순차적으로 생체 내 μCT 스캐닝을 절단 후 골형태, 부피 및 길이 변경을 식별합니다. P3 절단은 blastema 대형을 유발하는 재생 성 상처 환경을 분석하는 독특하고 절차적으로 간단하고 재현 가능한 모델입니다. 또한, P3 자리 모델은 기존의 뼈 부…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

무네오카 연구소와 텍사스 유전체 의학 연구소(TIGM)의 회원들에게 감사드립니다. 이 작품은 텍사스 A & M 대학에 의해 지원되었다.

Materials

Protein Block Serum Free DAKO X0909 Ready to use
Mouse anti-PCNA antibody Abcam ab29 1:2000 dilution
Rat anti-CXCR4 antibody R&D Systems MAB21651 1:500 dilution
Rabbit anti-human vWF XIII antibody DAKO A0082 1:800 dilution
Rabbit anti-osterix, SP7 antibody Abcam ab22552 1:400 dilution
Rabbit anti-Runx2 antibody Sigma-Aldrich Co. HPA022040 1:250 dilution
Alexa Fluor 647-conjugated goat anti-mouse IgG (H+L) Invitrogen A21235 1:500 dilution
Alexa Fluor 488-conjugated goat anti-rabbit IgG (H+L) Invitrogen A11008 1:500 dilution
Alexa Fluor 568-conjugated goat anti-rat IgG (H+L) Invitrogen A11077 1:500 dilution
Prolong Gold antifade reagent Invitrogen P36930 Ready to use
Surgipath Decalicifier 1 Leica Biosystems 3800400 Ready to use
Z-Fix, Aqueous buffered zinc formalin fixative Anatech LTD 174 Ready to use
CD-1 Female Mouse Envigo ICR(CD-1) 8-12-weeks-old
vivaCT 40 SCANCO Medical

Referências

  1. Douglas, B. S. Conservative management of guillotine amputation of the finger in children. Australian Paediatric Journal. 8, 86-89 (1972).
  2. Illingworth, C. M. Trapped fingers and amputated finger tips in children. Journal of Pediatric Surgery. 9, 853-858 (1974).
  3. Borgens, R. B. Mice regrow the tips of their foretoes. Science. 217, 747-750 (1982).
  4. Neufeld, D. A., Zhao, W. Phalangeal regrowth in rodents: postamputational bone regrowth depends upon the level of amputation. Progress in Clinical and Biological Research. 383a, 243-252 (1993).
  5. Han, M., Yang, X., Lee, J., Allan, C. H., Muneoka, K. Development and regeneration of the neonatal digit tip in mice. Biologia do Desenvolvimento. 315, 125-135 (2008).
  6. Takeo, M., et al. Wnt activation in nail epithelium couples nail growth to digit regeneration. Nature. 499, 228-232 (2013).
  7. Chamberlain, C. S., et al. Level-specific amputations and resulting regenerative outcomes in the mouse distal phalanx. Wound repair and Regeneration: Official Publication of the Wound Healing Society [and] the European Tissue Repair Society. 25, 443-453 (2017).
  8. Dawson, L. A., et al. Analogous cellular contribution and healing mechanisms following digit amputation and phalangeal fracture in mice. Regeneration. 3, 39-51 (2016).
  9. Seifert, A. W., Muneoka, K. The blastema and epimorphic regeneration in mammals. Biologia do Desenvolvimento. 433, 190-199 (2018).
  10. Carlson, B. M. . Principles of Regenerative Biology. , (2007).
  11. Fernando, W. A., et al. Wound healing and blastema formation in regenerating digit tips of adult mice. Biologia do Desenvolvimento. 350, 301-310 (2011).
  12. Simkin, J., et al. Epidermal closure regulates histolysis during mammalian (Mus) digit regeneration. Regeneration. 2, 106-119 (2015).
  13. Yu, L., et al. Angiogenesis is inhibitory for mammalian digit regeneration. Regeneration. 1, 33-46 (2014).
  14. Dolan, C. P., et al. Axonal regrowth is impaired during digit tip regeneration in mice. Biologia do Desenvolvimento. 445, 237-244 (2018).
  15. Dawson, L. A., et al. Blastema formation and periosteal ossification in the regenerating adult mouse digit. Wound Repair and Regeneration: Official Publication of the Wound Healing Society [and] the European Tissue Repair Society. 26, 263-273 (2018).
  16. Sammarco, M. C., et al. Endogenous bone regeneration is dependent upon a dynamic oxygen event. Journal of Bone and Mineral Research: The Official Journal of the American Society for Bone and Mineral Research. 29, 2336-2345 (2014).
  17. Einhorn, T. A. The science of fracture healing. Journal of Orthopaedic Trauma. 19, S4-S6 (2005).
  18. Shapiro, F. Bone development and its relation to fracture repair. The role of mesenchymal osteoblasts and surface osteoblasts. European Cells & Materials. 15, 53-76 (2008).
  19. Ilizarov, G. A. The tension-stress effect on the genesis and growth of tissues. Part I. The influence of stability of fixation and soft-tissue preservation. Clinical Orthopaedics And Related Research. (238), 249-281 (1989).
  20. Thompson, Z., Miclau, T., Hu, D., Helms, J. A. A model for intramembranous ossification during fracture healing. Journal of Orthopaedic Research: Official Publication of the Orthopaedic Research Society. 20, 1091-1098 (2002).
  21. Dolan, C. P., Dawson, L. A., Muneoka, K. Digit Tip Regeneration: Merging Regeneration Biology with Regenerative Medicine. Stem Cells Translational Medicine. 7, 262-270 (2018).
  22. Lee, J., et al. SDF-1alpha/CXCR4 signaling mediates digit tip regeneration promoted by BMP-2. Biologia do Desenvolvimento. 382, 98-109 (2013).
  23. Doube, M., et al. BoneJ: Free and extensible bone image analysis in ImageJ. Bone. 47, 1076-1079 (2010).
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Citar este artigo
Dawson, L. A., Brunauer, R., Zimmel, K. N., Qureshi, O., Falck, A. R., Kim, P., Dolan, C. P., Yu, L., Lin, Y., Daniel, B., Yan, M., Muneoka, K. Adult Mouse Digit Amputation and Regeneration: A Simple Model to Investigate Mammalian Blastema Formation and Intramembranous Ossification. J. Vis. Exp. (149), e59749, doi:10.3791/59749 (2019).

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