Rat ve Rabbit anevrizma modellerinde anevrizma perfüzyon ve ebeveyn arter patensinin değerlendirilmesi için floresan anjiyografi
Summary
Foscein bazlı floresan video anjiyografi (FVA) kullanılarak, sıçan ve tavşanlarda yan duvar anevrizmasının anevrizma perfüzyon ve damar patinliğini verimli bir şekilde değerlendirmek için bir protokol sunuyoruz. % 92,6 pozitif tahmini değeri ile, özel bir ekipman gerektirmez basit ama çok etkili ve ekonomik bir yöntemdir.
Abstract
Beyin anevrizması tedavisi tam tıkanıklık elde odaklanarak, yanı sıra ana arter kan akışını korumak. Floresan sodyum ve indokyanin yeşil sırasıyla kan akımı ve damar perfüzyon durumunun gözlem sağlamak için kullanılır. Bu çalışmanın amacı, tavşan ve fareler içinde yan duvar anevrizmalarının indüksiyonu sonrasında gerçek zamanlı kan akışını, damar perfüzyon durumunu ve anevrizmaların tıkanmasını doğrulamak ve bu türlerin prosedürünü doğrulamak için FVA uygulanmadır.
20 yan duvar anevrizması, bir donör tavşanın karotis arter üzerinde deselülarize arter damar torbası sütür tarafından 10 tavşan oluşturuldu. Ayrıca 48 fareler içinde 48 mikrocerrahi yan duvar anevrizması oluşturuldu. Yaratılışın ardından bir ay içinde takip sırasında, üst arter/anevrizma kompleksi disseke ve FVA bir intravenöz floresan kullanılarak yapılmıştır (10%, 1 ml) tavşanlar bir kulak ven kateterizasyon ile enjeksiyon ve fareler femoral ven kateterizasyon Laboratuan. Anevrizmalar daha sonra hasat edildi, ve patkans makroskopik olarak değerlendirildi.
Makroskopik olarak, 14 ‘ ü tavşanlar içinde 16 anevrizma tamamen okcluded luminae ile hiçbir kalıntı ebeveyn arter perfüzyon gösterdi, ancak 11 (79%) FVA tarafından tespit edildi. Teknik sorunlar nedeniyle dört anevrizma dışlandı. Sıçanlarda, 48 olguda 25 ‘ in altında kalan anevrizma perfüzyon makroskopik olarak görülür. 23 ‘ ün makroskopik perfüzyon kanıtı olmadan, FVA 22 anevrizmanın (% 96) insidansı doğruladı. FVA ile ilişkili hiçbir olumsuz olay yoktu. Fluorcein kolayca uygulanabilir ve özel bir ekipman gerekmez. Tavşan ve fareler ile deneysel bir ortamda ebeveyn arter bütünlüğü ve anevrizma patens/kalıntı perfüzyon değerlendirmek için güvenli ve son derece etkili bir yöntemdir. Bir kontrast maddesi olarak floresan kullanılarak FVA, anevrizmaların ve altta yatan geminin patilliğini kontrol etmek için etkili görünüyor ve hatta atıcılık ameliyatına adapte edilebilir.
Introduction
Anevrizma cerrahisinde tam anevrizma obliterasyon ve ebeveyn arter bütünlüğünü kanıtlar son derece önemlidir. Doppler sonografi, konvansiyonel serebral anjiyografi (DSA), bilgisayarlı tomografi anjiyografi (CTA) veya manyetik rezonans anjiyografi (MRA)1 gibi üst arter patensinin ve anevrizma oklüzyonu onaylamak için çeşitli seçenekler vardır. 2. ancak, bu genellikle bir laboratuar ayarı mevcut değildir pahalı ve zaman alıcı yöntemlerdir. Ayrıca, onlar radyasyon pozlama veya hareket artefact önlemek için deneysel hayvanların ek sedasyon için ihtiyaç gibi ilgili yan etkileri olabilir.
Artan sayıda yeni endovasküler cihaz ortaya çıktığı için, bu tür cihazların preklinik testleri için ardışık bir ihtiyaç vardır. Ancak, bu çalışmalar genellikle otopsi sonrası analizine (örn. makro patoloji ve histoloji) ve dinamik perfüzyon hakkında bilgi eksikliğine güveniyor. Ayrıca, araştırmacı için deneysel bir cerrahi prosedür sırasında acil ve güvenilir bilgiler elde etmek için çok önemli olabilir. Floresan anjiyografi uygun maliyetli ve kolay görselleştirme tekniği1,3,4.
Bu nedenle, İndosiyanin Yeşil (ICG) video anjiyografi genellikle klinik Nöroşirürji prosedürlerinde kullanılır ve yaygın olarak5,6incelenmiştir. Floresan video anjiyografi (FVA) alternatif bir tekniktir, insan vizyonu dalga boyu aralığında bir floresan sinyal oluşturma ek avantajı ile, ve böylece uzun spektrum kızılötesi kamera olmadan çıplak gözle görülebilir 7. florürin video anjiyografi daha az sıklıkta klinik serebrovasküler cerrahide kullanılır ve deneysel ayarlarda FVA raporlarında düşük1,4.
Bu raporun amacı, sıçan ve tavşan preklinik serebrovasküler araştırmalarda FVA uygulamalarının fizibilitesini ve kapsamını göstermektir.
Protocol
Representative Results
Discussion
FVA kemirgenler gemiler incelemek için umut verici ve karmaşık olmayan bir yöntemdir ve ticari cihazlar ve off-the-raf ekipmanları ile gerçekleştirilebilir. FVA, damarların doğru diseksiyona ihtiyacı olduğu için damar bütünlüğünü intraoperatif değerlendirmede gerekli olan herhangi bir cerrahi sırasında uygulanabilir.
Yazarlar, enfeksiyon, iskemi ve bölme sendromu gibi yanlışlıkla yaşanan olayların düşük riski nedeniyle arter enjeksiyonu için venöz enjeksiyon ter…
Declarações
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Bu çalışma, kısmen Isviçre Kantonsspital Aarau ‘dan yapılan bir araştırma hibe tarafından desteklenmektedir.
Materials
| For rabbits | |||
| Aluminium foil | |||
| Animal shaver | |||
| Black tape | |||
| Blue filter | Thorlabs MF475-35 | ||
| Body warm plate | |||
| Camera | Sony NEX-5R | ||
| Catheter | 22G Vasofix Safety | ||
| Disinfictant | |||
| Fluorescein sodium | Fluorescein Faure 10% | ||
| Glas plate | |||
| Green filter | Thorlabs MF539-43 | ||
| Incontinence pad | |||
| Infusion pump | Perfusor Secura | ||
| Ketamine hydrochloride | any generic products | ||
| Needle | 25G | ||
| Oxygen | |||
| Ringer's Solution | |||
| Sterile sheets | |||
| Surgical instruments | micro forceps, micro scissor, blunt surgical scissor | ||
| Surgical microscope | OPMI, Carl Zeiss AG, Oberkochen, Germany | ||
| Syringe 2ml, 5ml, 50ml | |||
| Tape | |||
| Three-way-stopcock | |||
| Torch light | |||
| Xylazin | any generic products | ||
| For rats | |||
| Aluminium foil | |||
| Animal shaver | |||
| Black tape | |||
| Blue filter | Thorlabs MF475-35 | ||
| Body warm plate | |||
| Camera | Sony NEX-5R | ||
| Disinfictant | |||
| Fluorescein sodium | Fluorescein Faure 10% | ||
| Green filter | Thorlabs MF539-43 | ||
| Incontinence pad | |||
| Isoflurane | |||
| Ketamine hydrochloride | any generic products | ||
| Medetomidine hydrochloride | any generic products | ||
| Needle | 25G | ||
| Oxygen | |||
| Plate | |||
| Ringer's Solution | |||
| Sterile sheets | |||
| Surgical instruments | micro forceps, micro scissor, blunt surgical scissor | ||
| Surgical microscope | OPMI, Carl Zeiss AG, Oberkochen, Germany | ||
| Syringe 2ml, 5ml | |||
| Tape | |||
| Torch light | |||
Referências
- Kakucs, C., Florian, I. A., Ungureanu, G., Florian, I. S. Fluorescein Angiography in Intracranial Aneurysm Surgery: A Helpful Method to Evaluate the Security of Clipping and Observe Blood Flow. World Neurosurgery. 105, 406-411 (2017).
- Ajiboye, N., Chalouhi, N., Starke, R. M., Zanaty, M., Bell, R. Unruptured Cerebral Aneurysms: Evaluation and Management. ScientificWorldJournal. 2015, 954954 (2015).
- Suzuki, K., et al. Confirmation of blood flow in perforating arteries using fluorescein cerebral angiography during aneurysm surgery. Journal of Neurosurgery. 107 (1), 68-73 (2007).
- Gruter, B. E., et al. Fluorescence Video Angiography for Evaluation of Dynamic Perfusion Status in an Aneurysm Preclinical Experimental Setting. Operative Neurosurgery. , (2019).
- Raabe, A., et al. Prospective evaluation of surgical microscope-integrated intraoperative near-infrared indocyanine green videoangiography during aneurysm surgery. Journal of Neurosurgery. 103 (6), 982-989 (2005).
- Riva, M., Amin-Hanjani, S., Giussani, C., De Witte, O., Bruneau, M. Indocyanine Green Videoangiography in Aneurysm Surgery: Systematic Review and Meta-Analysis. Neurosurgery. , (2017).
- Kuroda, K., et al. Intra-arterial injection fluorescein videoangiography in aneurysm surgery. Neurosurgery. 72, 141-150 (2013).
- Kilkenny, C., Browne, W. J., Cuthill, I. C., Emerson, M., Altman, D. G. Improving Bioscience Research Reporting: The ARRIVE Guidelines for Reporting Animal Research. PLOS Biology. 8 (6), 1000412 (2010).
- Marbacher, S., et al. The Helsinki rat microsurgical sidewall aneurysm model. Journal of Visualized Experiments. (92), e51071 (2014).
- Marbacher, S., et al. Complex bilobular, bisaccular, and broad-neck microsurgical aneurysm formation in the rabbit bifurcation model for the study of upcoming endovascular techniques. American Journal of Neuroradiology. 32 (4), 772-777 (2011).
- Shurey, S., et al. The rat model in microsurgery education: classical exercises and new horizons. Archives of Plastic Surgery. 41 (3), 201-208 (2014).
- Foster, S. D., Lyons, M. S., Runyan, C. M., Otten, E. J. A mimic of soft tissue infection: intra-arterial injection drug use producing hand swelling and digital ischemia. World Journal of Emergency Medicine. 6 (3), 233-236 (2015).
- Flower, R. W. Injection technique for indocyanine green and sodium fluorescein dye angiography of the eye. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 12 (12), 881-895 (1973).
- Yoshioka, H., et al. Advantage of microscope integrated for both indocyanine green and fluorescein videoangiography on aneurysmal surgery: case report. Neurologia medico-chirurgica (Tokyo). 54 (3), 192-195 (2014).
- Ichikawa, T., et al. Development of and Clinical Experience with a Simple Device for Performing Intraoperative Fluorescein Fluorescence Cerebral Angiography: Technical Notes. Neurologia medico-chirurgica. 56 (3), 141-149 (2016).
- Alander, J. T., et al. A review of indocyanine green fluorescent imaging in surgery. International Journal of Biomedical Imaging. 2012, 940585 (2012).
- Lane, B., Bohnstedt, B. N., Cohen-Gadol, A. A. A prospective comparative study of microscope-integrated intraoperative fluorescein and indocyanine videoangiography for clip ligation of complex cerebral aneurysms. Journal of Neurosurgery. 122 (3), 618-626 (2015).
- Blair, N. P., Evans, M. A., Lesar, T. S., Zeimer, R. C. Fluorescein and fluorescein glucuronide pharmacokinetics after intravenous injection. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 27 (7), 1107-1114 (1986).
- Hillmann, D., et al. In vivo optical imaging of physiological responses to photostimulation in human photoreceptors. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 113 (46), 13138-13143 (2016).
- Golby, A. J. . Image-Guided Neurosurgery. , (2015).
