Summary

आरएनए के पैरों के निशान की पहचान: TANDEM में आरएनए इम्यूनोएरिफ़िएसिस के माध्यम से प्रोटीन कॉम्प्लेक्स अनुक्रमण द्वारा पीछा किया (RIPIT-सेक)

Published: July 10, 2019
doi:

Summary

यहाँ, हम अंतर्जात आरएनए बाध्यकारी साइटों या आरएनए के “फुटप्रिंट” को समृद्ध करने के लिए एक प्रोटोकॉल प्रस्तुत: प्रोटीन (आरएनपी) स्तनधारी कोशिकाओं से परिसरों. इस दृष्टिकोण में आरएनपी उपइकाइयों के दो इम्यूनोवेरिफ़िएंस शामिल हैं और इसलिए इसे अग्रानुक्रम (आरआईपीटी) में आरएनए इम्यूनोप्रीसेंस कहा जाता है।

Abstract

आरएनए प्रतिरक्षा अग्रानुक्रम में (RIPIT) एक आरएनए:प्रोटीन (आरएनपी) परिसर के भीतर प्रोटीन की एक जोड़ी के आरएनए पैरों के निशान को समृद्ध करने के लिए एक विधि है। RIPIT दो शुद्धि कदम कार्यरत हैं. सबसे पहले, एक टैग आरएनपी सबयूनिट के इम्यूनोप्रीफिकेशन हल्के RNase पाचन और बाद में गैर-denaturing आत्मीयता elution द्वारा पीछा किया जाता है। एक और आरएनपी उपइकाई का दूसरा इम्यूनोप्रीफिशेशन एक परिभाषित परिसर के संवर्धन के लिए अनुमति देता है। आरएनए और प्रोटीन के एक denaturing elution के बाद, आरएनए पैरों के निशान उच्च थ्रूपुट डीएनए अनुक्रमण पुस्तकालयों में परिवर्तित कर रहे हैं। आरबीपी बाइंडिंग साइटों को समृद्ध करने के लिए इम्यूनोप्रिसेप्शन (सीआईआईपी) दृष्टिकोण के बाद अधिक लोकप्रिय पराबैंगनी (यूवी) क्रॉसलिंकिंग के विपरीत, RIPIT यूवी-क्रॉसलिंकिंग स्वतंत्र है। इसलिए RIPIT आरएनए interactome में मौजूद कई प्रोटीन के लिए लागू किया जा सकता है और उससे परे आरएनए विनियमन के लिए आवश्यक हैं, लेकिन सीधे आरएनए या यूवी-क्रॉसलिंक खराब आरएनए से संपर्क नहीं करते। RIPIT में दो शुद्धि कदम बाध्यकारी साइटों की पहचान करने का एक अतिरिक्त लाभ प्रदान करते हैं, जहां ब्याज का एक प्रोटीन एक और cofactor के साथ साझेदारी में कार्य करता है. डबल शुद्धि रणनीति भी पृष्ठभूमि सीमित द्वारा संकेत बढ़ाने के लिए कार्य करता है. यहाँ, हम RIPIT प्रदर्शन करने के लिए और अलग आरएनए पैरों के निशान से उच्च थ्रूपुट अनुक्रमण पुस्तकालयों उत्पन्न करने के लिए एक कदम वार प्रक्रिया प्रदान करते हैं। हम भी RIPIT के फायदे और अनुप्रयोगों की रूपरेखा और अपनी सीमाओं में से कुछ पर चर्चा.

Introduction

कोशिकाओं के भीतर, आरएनए प्रोटीन के साथ जटिल में मौजूद है आरएनए बनाने के लिए: प्रोटीन परिसरों (RNPs). RNPs आरएनए बाध्यकारी प्रोटीन के आसपास इकट्ठे होते हैं (RBPs, उन है कि सीधे आरएनए बाँध) लेकिन यह भी गैर-RBPs शामिल (उन है कि आरबीपी बाँध लेकिन आरएनए नहीं), और अक्सर प्रकृति में गतिशील हैं. नियामक कार्यों को निष्पादित करने के लिए आरएनपी के भीतर आरएनपी और उनके सहकारक सामूहिक रूप से कार्य करते हैं। उदाहरण के लिए, निरर्थक मध्यस्थता MRNA क्षय (NMD) मार्ग में, UPF प्रोटीन (UPF1, UPF2, और UPF3b) समय से पहले समाप्त राइबोसोम को पहचानते हैं। UPF प्रोटीन के प्रत्येक आरएनए करने के लिए बाध्य कर सकते हैं, लेकिन यह केवल जब वे एक साथ इकट्ठा है कि एक सक्रिय एनएमडी परिसर के रूप में शुरू होता है. इस परिसर के भीतर, UPF1 आगे एक गैर RBP SMG1 द्वारा फॉस्फोरिलेशन द्वारा सक्रिय है, और इस तरह के UPF1 सक्रियण अंततः MRNA क्षय प्रेरित कारकों की भर्ती की ओर जाताहै 1,2. इस उदाहरण में, RBPs एनएमडी चलाता है कि RNP परिसर की भर्ती और सक्रियण के लिए गैर-RBP cofactors की आवश्यकता है। अभी तक RNPs की एक और संपत्ति उनकी compositional विषमता है. spliceosome पर विचार करें, जो अलग ई, ए, बी या सी परिसरों में मौजूद है. विभिन्न स्प्लेकसम परिसरों में अतिव्यापन और विशिष्ट प्रोटीन3होते हैं . आरएनपी कार्यों का अध्ययन करने के लिए, यह स्पष्ट करना महत्वपूर्ण है कि आरएनए एक आरबीपी और इसके संबद्ध प्रोटीन से बंधे हैं। इसे पूरा करने के लिए कई तरीके मौजूद हैं , प्रत्येक दृष्टिकोण के पास इसके विशिष्ट फायदे और नुकसान4,5,6,7हैं .

आरबीपी बाइंडिंग स्थलों की पहचान करने के लिए व्यापक रूप से लोकप्रिय तरीके – इम्यूनोप्रीसेप्शन (CLIP) और इसके विभिन्न रूपों के बाद क्रॉसलिंकिंग – आरएनए8के लिए एक आरबीपी को क्रॉसलिंक करने के लिए पराबैंगनी (यूवी) प्रकाश पर भरोसा करते हैं। तथापि, यह आरएनपी के भीतर गैर-आरएनपी के लिए एक प्रभावी दृष्टिकोण नहीं है, जो सीधे आरएनए से संपर्क नहीं करते हैं। यहाँ, हम एक वैकल्पिक दृष्टिकोण है कि एक जैसे RBPs और गैर RBPs के लिए लागू होता है का वर्णन, को अलग करने और उनके आरएनए बाध्यकारी साइटों की पहचान. इस दृष्टिकोण को आरएनए इम्यूनोप्रीसेशन को अग्रानुक्रम (आरआईआईपीटी ) कहा जाता है , जिसमें दो इम्यूनोप्रीसिप्शन चरण होते हैं , जो एकल शोधन की तुलना में उच्च विशिष्टता प्राप्त करने में मदद करते हैं (चित्र 1) 9,10. चूंकि अलग-अलग इम्यूनोप्रीफ्ट (आईपी) कदम क्लिप की तुलना में कम स्ट्रिंगमेंसी पर किए जा सकते हैं, RIPIT एंटीबॉडी की उपलब्धता पर निर्भर नहीं करता है जो इम्यूनोप्रीशंस के दौरान मजबूत डिटर्जेंट की उपस्थिति का सामना कर सकता है। RIPIT का सबसे अनूठा लाभ दो शुद्धि चरणों में दो अलग प्रोटीन को लक्षित करने की क्षमता है; यह इसी तरह के अन्य परिसरों11से एक compositionally अलग आरएनपी परिसर को समृद्ध करने के लिए एक शक्तिशाली तरीका प्रदान करता है.

RIPIT प्रक्रिया के लिए छोटी विविधताओं आगे RNP संवर्धन में वृद्धि कर सकते हैं. उदाहरण के लिए, आरएनपी के भीतर कुछ आरएनए प्रोटीन या प्रोटीन प्रोटीन इंटरैक्शन क्षणिक होते हैं और ऐसे परिसरों के पैरों के निशान को कुशलतापूर्वक शुद्ध करना मुश्किल हो सकता है। ऐसी बातचीत को स्थिर करने के लिए, RNPs सेल lysis और RIPIT से पहले formaldehyde के साथ कोशिकाओं के भीतर crosslinked किया जा सकता है. उदाहरण के लिए, हमने देखा है कि एक्सॉन जंक्शन परिसर (EJC) मुख्य कारक, EIF4AIII और EJC disassembly कारक के बीच एक कमजोर बातचीत, PYM12 formaldehyde उपचार के साथ स्थिर किया जा सकता है जैसे कि अधिक आरएनए पैरों के निशान समृद्ध कर रहे हैं (डेटा नहीं दिखाया गया है) सेल हार्वेस्टिंग और RIPIT से पहले, कोशिकाओं को भी एक विशेष राज्य में RNPs को स्थिर या समृद्ध करने के लिए दवाओं के साथ इलाज किया जा सकता है। उदाहरण के लिए, जब प्रोटीन है कि अनुवाद के दौरान MRNA से हटा रहे हैं का अध्ययन (उदाहरण के लिए, EJC13, UPF114),अनुवाद अवरोधकों के साथ उपचार जैसे puromycin, cycloheximide या harringtonकेन की वृद्धि हुई अधिभोग के लिए नेतृत्व कर सकते हैं आरएनए पर प्रोटीन.

RIPIT से बरामद आरएनए की मात्रा आमतौर पर कम है (0.5-10 pmoles, अर्थात्, 10-250 एनजी आरएनए 75 nt की एक औसत आरएनए लंबाई पर विचार). इस के लिए प्राथमिक कारण यह है कि केवल एक दिए गए प्रोटीन का एक छोटा सा अंश RNPs के भीतर अन्य प्रोटीन के साथ जटिल में मौजूद है (किसी भी “मुक्त” पहले कदम में IP’ed दूसरे आईपी के दौरान खो दिया है). इस आरएनए से आरएनए-सेक पुस्तकालयों को उत्पन्न करने के लिए, हम यहां पहले प्रकाशित प्रोटोकॉल के अनुकूलन की रूपरेखा भी तैयार करते हैं जो ऐसे कम आरएनए आदानों के लिए उपयुक्त है15,16 (चित्र 2), जो 3 में उच्च-थ्रूपुट अनुक्रमण तैयार नमूनों की पैदावार करता है दिनों.

Protocol

1. स्थिर HEK293 सेल लाइन्स की स्थापना Tetracycline-inducable FLAG-टैग्ड प्रोटीन ब्याज की (POI) व्यक्त बीज HEK293 कोशिकाओं के साथ एक stably एकीकृत Flp पुनर्संयोजन लक्ष्य (FRT) साइट के घनत्व पर 10 x 104 कोशिकाओं / mL विकास के माध्यम में (Dulbecco के ?…

Representative Results

एक सफल RIPIT ब्याज और अन्य ज्ञात बातचीत प्रोटीन के दोनों प्रोटीन के इम्यूनोप्रीफिक में परिणाम होगा, और गैर बातचीत प्रोटीन की अनुपस्थिति. जैसा कि चित्र 3एमें देखा गया है, दोनों मागोह और EIF4AIII…

Discussion

हम RIPIT सफलतापूर्वक करने के लिए यहाँ कुछ महत्वपूर्ण विचार पर चर्चा करें। सबसे पहले, व्यक्तिगत आईपी प्रत्येक कदम पर उच्चतम संभव दक्षता प्राप्त करने के लिए अनुकूलित किया जाना चाहिए. यहाँ वर्णित कोशिकाओं ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

इस कार्य को NIH अनुदान GM120209 (जी एस) द्वारा समर्थित किया गया था। लेखकों उनकी सेवाओं के लिए OSUCCC जीनोमिक्स साझा संसाधन कोर धन्यवाद (सीसीसी समर्थन अनुदान NCI P30 CA16058).

Materials

Anti-FLAG Affinity Gel Sigma A2220
ATP, [γ-32P]- 3000Ci/mmol 10mCi/ml EasyTide, 250µCi PerkinElmer BLU502A250UC
BD Disposable Syringes with Luer-Lok Tips (200) Fisher 14-823-435
Betaine 5M Sigma B0300
biotin-dATP TriLink N-5002
biotin-dCTP Perkin Elmer NEL540001EA
Branson Sonifier, Model SSE-1 Branson
CircLigase I VWR 76081-606 ssDNA ligase I
DMEM, High Glucose ThermoFisher 11995-065
DNA load buffer NEB NEB
Dynabeads Protein A LifeTech 10002D
Flp-In-T-REx 293 Cell Line ThermoFisher R78007
GeneRuler Low Range DNA Ladder ThermoScientific FERSM1203
Hygromycin B ThermoFisher 10687010
Mini-PROTEAN TBE Gel 10 well Bio-Rad 4565013
Mini-PROTEAN TBE-Urea Gel Bio-Rad 4566033
miRCAT-33 adapter 5′-TGGAATTCTCGGGTGCCAAGGddC-3′ Any this protocol is only compatible with the Illumina sequencing platform
Mirus transIT-X2 transfection reagent Mirus MIR 6004
Mth RNA ligase NEB E2610S
PE1.0 5′-AATGATACGGCGACCACCGAGATCTACACT
CTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATC*T-3′
Any this protocol is only compatible with the Illumina sequencing platform
PE2.0 5′-CAAGCAGAAGACGGCATACGAGATCGGTCTC
GGCATTCCTGCTGAACCGCTCTTCCGATC*T-3′
Any this protocol is only compatible with the Illumina sequencing platform
Phenol/Chloroform/Isoamyl Alcohol (25:24:1, pH 6.7, 100ml) Fisher BP1752I-100
Purple Gel Loading Dye (6x) NEB NEB #7025
Q5 DNA Polymerase NEB M0491S/L
RNase I, E. coli, 1000 units Eppicenter N6901K
SPIN-X column Corning CLS8160-24EA
Streptavidin beads ThermoFisher 60210
Superscript III (SSIII) ThermoScientific 18080044 reverse transcriptase enzyme
SybrGold ThermoFisher S11494 gold nucleic acid gel stain
T4 Polynucleotide Kinase-2500U NEB M0201L
T4RNL2 Tr. K227Q NEB M0351S
Tetracycline Sigma 87128
Thermostable 5´ App DNA/RNA Ligase NEB M0319S
TruSeq_SE1 5′-pGGCACTANNNNNAGATCGGAAGA
GCGTCGTGTAGGGAAAGAGTGT-SPACER 18-CTCGGCATTCCTGCTGAACCGCTC
TTCCGATCTCCTTGGCACCCGAGAATTCCA-3′
Any this protocol is only compatible with the Illumina sequencing platform
TruSeq_SE10 5′-pGGTGTTCNNNNNAGATCGGAAG
AGCGTCGTGTAGGGAAAGAGTGT-SPACER 18-CTCGGCATTCCTGCTGAACCGCT
CTTCCGATCTCCTTGGCACCCGAGAATTCCA-3′
Any this protocol is only compatible with the Illumina sequencing platform
TruSeq_SE11 5′-pGGTAAGTNNNNNAGATCGGAA
GAGCGTCGTGTAGGGAAAGAGTGT-SPACER 18-CTCGGCATTCCTGCTGAACCGCTC
TTCCGATCTCCTTGGCACCCGAGAATTCCA-3′
Any this protocol is only compatible with the Illumina sequencing platform
TruSeq_SE12 5′-pGGAGATGNNNNNAGATCGGAAGA
GCGTCGTGTAGGGAAAGAGTGT-SPACER 18-CTCGGCATTCCTGCTGAACCGCTC
TTCCGATCTCCTTGGCACCCGAGAATTCCA-3′
Any this protocol is only compatible with the Illumina sequencing platform
TruSeq_SE2 5′-pGGGTAGCNNNNNAGATCGGAAGAG
CGTCGTGTAGGGAAAGAGTGT-SPACER 18-CTCGGCATTCCTGCTGAACCGCT
CTTCCGATCTCCTTGGCACCCGAGAATTCCA-3′
Any this protocol is only compatible with the Illumina sequencing platform
TruSeq_SE35′-pGGTCGATNNNNNAGATCGGAAG
AGCGTCGTGTAGGGAAAGAGTGT-SPACER 18-CTCGGCATTCCTGCTGAACCGCT
CTTCCGATCTCCTTGGCACCCGAGAATTCCA-3′
Any this protocol is only compatible with the Illumina sequencing platform
TruSeq_SE4 5′-pGGCCTCGNNNNNAGATCGGAAGA
GCGTCGTGTAGGGAAAGAGTGT-SPACER 18-CTCGGCATTCCTGCTGAACCGCTC
TTCCGATCTCCTTGGCACCCGAGAATTCCA-3′
Any this protocol is only compatible with the Illumina sequencing platform
TruSeq_SE5 5′-pGGTGACANNNNNAGATCGGAAGA
GCGTCGTGTAGGGAAAGAGTGT-SPACER 18-CTCGGCATTCCTGCTGAACCGCTC
TTCCGATCTCCTTGGCACCCGAGAATTCCA-3′
Any this protocol is only compatible with the Illumina sequencing platform
TruSeq_SE6 5′-pGGTAGACNNNNNAGATCGGAAGAG
CGTCGTGTAGGGAAAGAGTGT-SPACER 18-CTCGGCATTCCTGCTGAACCGCTCTTC
CGATCTCCTTGGCACCCGAGAATTCCA-3′
Any this protocol is only compatible with the Illumina sequencing platform
TruSeq_SE7 5′-pGGGCCCTNNNNNAGATCGGAAG
AGCGTCGTGTAGGGAAAGAGTGT-SPACER 18-CTCGGCATTCCTGCTGAACCGCTCT
TCCGATCTCCTTGGCACCCGAGAATTCCA-3′
Any this protocol is only compatible with the Illumina sequencing platform
TruSeq_SE8 5′-pGGATCGGNNNNNAGATCGGAAGAG
CGTCGTGTAGGGAAAGAGTGT-SPACER 18-CTCGGCATTCCTGCTGAACCGCTCTT
CCGATCTCCTTGGCACCCGAGAATTCCA-3′
Any this protocol is only compatible with the Illumina sequencing platform
TruSeq_SE9 5′-pGGACTGANNNNNAGATCGGAAGAG
CGTCGTGTAGGGAAAGAGTGT-SPACER 18-CTCGGCATTCCTGCTGAACCGCTCTTC
CGATCTCCTTGGCACCCGAGAATTCCA-3′
Any this protocol is only compatible with the Illumina sequencing platform
Typhoon 5 Bimolecular Imager GE Healthcare Life Science 29187191

References

  1. Karousis, E. D., Nasif, S., Mühlemann, O. Nonsense-mediated mRNA decay: novel mechanistic insights and biological impact. Wiley Interdisciplinary Reviews: RNA. 7 (5), 661-682 (2016).
  2. Ivanov, P. V., Gehring, N. H., Kunz, J. B., Hentze, M. W., Kulozik, A. E. Interactions between UPF1, eRFs, PABP and the exon junction complex suggest an integrated model for mammalian NMD pathways. The EMBO Journal. 27 (5), 736-747 (2008).
  3. Papasaikas, P., Valcárcel, J. The Spliceosome: The Ultimate RNA Chaperone and Sculptor. Trends in Biochemical Sciences. 41 (1), 33-45 (2016).
  4. Jensen, K. B., Darnell, R. B. CLIP: Crosslinking and ImmunoPrecipitation of In Vivo RNA Targets of RNA-Binding Proteins. Methods in Molecular Biology. 488, 85-98 (2008).
  5. Garzia, A., Morozov, P., Sajek, M., Meyer, C., Tuschl, T. PAR-CLIP for Discovering Target Sites of RNA-Binding Proteins. mRNA Decay: Methods and Protocols. 1720, 55-75 (2018).
  6. Konig, J., et al. iCLIP – Transcriptome-wide Mapping of Protein-RNA Interactions with Individual Nucleotide Resolution. Journal of Visualized Experiments. (50), e2638 (2011).
  7. Sibley, C. R. Individual Nucleotide Resolution UV Cross-Linking and Immunoprecipitation (iCLIP) to Determine Protein-RNA Interactions. RNA Detection: Methods and Protocols. 1649, 427-454 (2018).
  8. Wheeler, E. C., Van Nostrand, E. L., Yeo, G. W. Advances and challenges in the detection of transcriptome‐wide protein-RNA interactions. Wiley Interdisciplinary Reviews: RNA. 9 (1), (2018).
  9. Singh, G., et al. The Cellular EJC Interactome Reveals Higher-Order mRNP Structure and an EJC-SR Protein Nexus. Cell. 151, 750-764 (2012).
  10. Singh, G., Ricci, E. P., Moore, M. J. RIPiT-Seq: A high-throughput approach for footprinting RNA:protein complexes. Methods. 65, 320-332 (2014).
  11. Mabin, J. W., et al. The Exon Junction Complex Undergoes a Compositional Switch that Alters mRNP Structure and Nonsense-Mediated mRNA Decay Activity. Cell Reports. 25 (9), 2431-2446 (2018).
  12. Gehring, N. H., Lamprinaki, S., Kulozik, A. E., Hentze, M. W. Disassembly of Exon Junction Complexes by PYM. Cell. 137 (3), 536-548 (2009).
  13. Dostie, J., Dreyfuss, G. Translation Is Required to Remove Y14 from mRNAs in the Cytoplasm. Current Biology. 12 (13), 1060-1067 (2002).
  14. Zünd, D., Gruber, A. R., Zavolan, M., Mühlemann, O. Translation-dependent displacement of UPF1 from coding sequences causes its enrichment in 3′ UTRs. Nature Structural & Molecular Biology. 20 (8), 936-943 (2013).
  15. Gangras, P., Dayeh, D. M., Mabin, J. W., Nakanishi, K., Singh, G. Cloning and Identification of Recombinant Argonaute-Bound Small RNAs Using Next-Generation Sequencing. Argonaute Proteins: Methods and Protocols. 1680, 1-28 (2018).
  16. Heyer, E. E., Ozadam, H., Ricci, E. P., Cenik, C., Moore, M. J. An optimized kit-free method for making strand-specific deep sequencing libraries from RNA fragments. Nucleic Acids Research. 43 (1), 2 (2015).
  17. Cameron, V., Uhlenbeck, O. C. 3′-Phosphatase activity in T4 polynucleotide kinase. Biochemistry. 16 (23), 5120-5126 (1977).
  18. Ricci, E. P., et al. Staufen1 senses overall transcript secondary structure to regulate translation. Nature Structural & Molecular Biology. 21 (1), 26-35 (2014).
  19. Lackner, D. H., et al. A generic strategy for CRISPR-Cas9-mediated gene tagging. Nature Communications. 6, 10237 (2015).
  20. Metkar, M., et al. Higher-Order Organization Principles of Pre-translational mRNPs. Molecular Cell. 72 (4), 715-726 (2018).
  21. Giudice, G., Sánchez-Cabo, F., Torroja, C., Lara-Pezzi, E. ATtRACT-a database of RNA-binding proteins and associated motifs. Database: The Journal of Biological Databases and Curation. 2016, (2016).
  22. Paz, I., Kosti, I., Ares, M., Cline, M., Mandel-Gutfreund, Y. RBPmap: a web server for mapping binding sites of RNA-binding proteins. Nucleic Acids Research. 42, 361-367 (2014).
  23. Sundararaman, B., et al. Resources for the Comprehensive Discovery of Functional RNA Elements. Molecular Cell. 61 (6), 903-913 (2016).
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Cite This Article
Woodward, L., Gangras, P., Singh, G. Identification of Footprints of RNA:Protein Complexes via RNA Immunoprecipitation in Tandem Followed by Sequencing (RIPiT-Seq). J. Vis. Exp. (149), e59913, doi:10.3791/59913 (2019).

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