Summary

細胞表現型と分泌性特性化のためのヒト脂肪組織微細断片化

Published: October 20, 2019
doi:

Summary

ここでは、閉じたシステム装置を用いて酵素フリーの微細断片化をヒト脂肪組織に提示する。この新しい方法は、生体内移植、インビトロ培養、およびさらなる細胞単離および特性化に適した脂肪組織のサブミリメートルクラスターの取得を可能にする。

Abstract

過去10年間、脂肪組織移植は、組織の再生および/または再生を強化するために、整形外科や整形外科で広く使用されてきました。したがって、ヒト脂肪組織を採取・処理する技術は、大量の組織を迅速かつ効率的に得るために進化してきた。これらの中で、クローズドシステム技術は、短時間で同じ介入(術中)で精製された脂肪組織を収穫、処理、再注入する革新的で使いやすいシステムを表します。脂肪組織は脂肪吸引によって採取され、洗浄され、乳化され、0.3~0.8mmの細胞クラスターに機械的にすすり込まれ、みじん切り.機械的に断片化された脂肪組織の自家移植は、異なる治療において顕著な有効性を示した。美容医学や手術、整形外科、一般的な手術などの適応症。微細断片化脂肪組織の特徴付けは、脂肪細胞クラスター内の無傷の小さな血管の存在を明らかにした。したがって、血管部膜のニッチは動揺しないままにされる。これらのクラスターは、血管細胞(すなわち、間葉系幹細胞(MSC)の祖先)に富み、インビトロ分析では、酵素的に由来するMSCと比較して、組織の修復および再生に関与する成長因子およびサイトカインの放出が増加したことを示した。これは、微細断片化された脂肪組織の優れた治療可能性が推定MSCのより高い頻度および増強された分泌活性によって説明されたことを示唆する。これらの添加されたペリサイトが高成長因子およびサイトカイン産生に直接寄与するかどうかは知られていない。この臨床的に承認された手順により、拡張および/または酵素治療を必要とせずに推定MSCを移植できるため、GMPガイドラインの要件を回避し、細胞ベースの治療のコストを削減できます。

Introduction

脂肪組織は、再建および美容手術の充填剤として長く使用され、最近では間葉系幹細胞(MSC)1の供給源として認識された再生医療においてより一般的になってきている。単細胞懸濁液を単細胞懸濁液に解離すると、患者に変わらず使用される脂肪細胞フリー間質血管画分(SVF)を得るか、より一般的には、MSC2に数週間培養される。

しかし、酵素解離は組織微小環境を破裂させ、インビトロ培養によってかなり修飾される推定再生細胞から隣接する調節細胞を隔離する。このような実験的なアーティファクトおよび結果的な機能的変化を避けるために、可能な限りそのネイティブ構成をそのまま維持しながら、治療用の脂肪組織を処理する試みがなされている3,4。特に、機械的組織の破壊は酵素解離に取って代わり始めている。この目的のために、完全な浸漬閉塞系マイクロフラグメントリポアスは、サブミリメートル、血液および無油組織クラスター(例えば、リポゲム)にふるい質濾過および鋼大理石誘発破壊3のシーケンスを介して、マイクロ断片化脂肪組織の自家移植は、この閉じたシステム技術を使用して、複数の適応症、化粧品、整形外科、直腸および婦人科4、5、複数の適応症で成功している。6,7,8,9,10,11,12,13.

閉じたシステム装置と同位体SVFで得られたヒト微細断片脂肪組織(MAT)との比較は、血管/間質細胞分布および培養中の分泌活性に関して、MATはより多くのペリサイトを含有することを明らかにした。推定MSC14、および成長因子およびサイトカイン15のより高い量を分泌する。

本記事は、閉じたシステム装置を用いたヒト皮下脂肪組織の酵素フリー微小断片化、及びインビトロ培養用微小化脂肪組織のさらなる処理、免疫組織化学およびFACS分析、存在する細胞型と分泌される可溶性因子を同定するために(図1)。記載された方法は、生存可能な脂肪組織細胞集団を含む脂肪由来のサブミリメートルオルガノイドを無傷のニッチで安全に生成し、さらなる応用および研究に適している。

Protocol

本研究におけるヒト組織の使用に関する倫理的承認は、南東スコットランド研究倫理委員会(参照:16/SS/0103)から得られた。 1. 皮下腹部脂肪組織コレクション 注:手動リポ吸引手順で使用されるすべての器械はマイクロ断片化装置の製造業者によって提供される。 実験を通じて、すべての流体、容器、計器、および操作領域に対する…

Representative Results

手動リポアセッセンシーの機械的解離は、微小血管ネットワークを包む脂肪細胞の集合体からなる微小断片化脂肪組織(MAT)の産生をもたらした(図3)。ゼラチン埋め込みおよび凍結固定MATの免疫蛍光分析は、この構造を強調し、主に小さな毛細血管様血管からなる内皮細胞マーカーウレックス・エウロペウス・アグルチニン1(UEA-1)受容体によってマ…

Discussion

本論文では、閉じたシステム装置を用いて、正常な脂肪組織微小解剖学を示す小さなクラスターにヒト脂肪組織の物理的分画について説明する。

手動吸引ヒト皮下脂肪組織および生理液は、装置の激しい手動振盪の際に、脂肪をサブミリメートルに破裂させる大きなピンボールスタイルの金属球を含む透明なプラスチックシリンダーにロードされるフラグメント。付属?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

著者らは、エジンバラ大学のクレア・クライアーとフィオナ・ロッシに、フローサイトメトリーの専門家の支援に感謝したいと考えています。また、組織標本の提供に貢献したマレーフィールド病院の職員に感謝します。

この研究は、脂肪組織処理キットを提供した英国心臓財団とリポゲムズからの助成金によって支えられました。ヒト成人組織サンプルは、南東スコットランド研究倫理委員会の完全な倫理許可を得て調達された(参照:16/SS/0103)。

Materials

4% Buffered paraformaldehyde (PFA) VWR chemicals 9317.901
0.9% NaCl Solution Baxter 3KB7127
AlexaFluor 555 goat anti-mouse IgG  Life Technologies A21422
AlexaFluor 647 goat anti-Rabbit IgG Life Technologies  A21245
Ammonium chloride fisher chemicals 1158868
Antigent Diluent Life Technologies 3218
Anti-Mouse Ig, κ/Negative Control (BSA) Compensation Plus BD Biosciences 560497
Avidin/Biotin Blocking Kit Life Technologies 4303
BD LSR Fortessa 5-laser flow cytometer  BD Biosciences Laser 405nm (violet)/375nm (UV) – filter V450/50 for DAPI and V450 antibodies; Laser 561nm (Yellow-green) – filter YG582/15 for PE antibodies; Laser 405nm (violet)/375nm (UV) – filter V710/50 for BV711 antibodies 
Biotinylated Ulex europaeus lectin Vector Laboratories Vector-B1065
BV711 Mouse IgG1, k Isotype Control BD Biosciences 563044
CD146-BV711 BD Biosciences 563186
CD31-V450 BD Biosciences 561653
CD34-PE BD Biosciences 555822
CD45-V450 BD Biosciences 560367
DAPI Life Technologies D1306 stock concentration: 5mg/mL
Disposable liposuction cannula (LGI 13Gx185 mm – AR 13/18)   Lipogems  provided in the Lipogems surgical kit
Diva software 306 (v.6.0) BD Biosciences
DMEM, high glucose, GlutaMAX without sodium pyruvate Life Technologies 61965026
EGMTM-2 Endothelial Cell Growth Medium-2 BulletKitTM Lonza  CC-3156
Fetal Calf Serum (FCS) Sigma-Aldrich F2442
FlowJo (v.10.0) FlowJo
Fluoromount G SouthernBiotech 0100-01
Gelatin Acros Organics 410870025
Lipogems Surgical Kit Lipogems  LG SK 60
Mouse anti human- NG2 BD Biosciences 554275 stock concentration: 0.5 mg/mL
PE Mouse IgG1, κ Isotype Control BD Biosciences 555749
Penicillin-Streptomycin Sigma-Aldrich P4333
Phosphate buffered saline (PBS) Sigma-Aldrich D8537
Polystirene round bottom 5 mL tube with cell strainer snap cap  BD Biosciences 352235, 25/Pack
Polystyrene round bottom 5 mL tubes BD Biosciences 352003
Rabbit anti human – PDGFRb Abcam 32570 stock concentration: 0.15 mg/mL
Streptavidin conjugated-488 Life Technologies  S32354
Sucrose Sigma-Aldrich 84100-5kg
Tissue infiltration cannula (17GX185 mm-VG 17/18)  Lipogems  provided in the Lipogems surgical kit
Tris base fisher chemicals BP152-500
Type- II Collagenase Gibco 17101-015
V450 Mouse IgG1, κ Isotype Control BD Biosciences 560373
Widefield Zeiss observer Zeiss Objective used: Plan-Apo 20x/0.8
Zeiss Colibri7 LED light source ( LEDs: 385, 475, 555, 590, 630 nm) Zeiss DAPI: UV, excitation 385nm; 488: Blue, excitation 475nm;  555: Green, excitation 555nm;  647:Red, excitation 630nm 

Referências

  1. Zuk, P. A., et al. Multilineage cells from human adipose tissue: implications for cell-based therapies. Tissue Engineering Journal. 7 (2), 211-228 (2001).
  2. Schäffler, A., et al. Concise review: Adipose tissue-derived stromal cells-basic and clinical implications for novel cell-based therapies. Stem Cells. 25 (4), 818-827 (2007).
  3. Bianchi, F., et al. A new non enzymatic method and device to obtain a fat tissue derivative highly enriched in pericyte-like elements by mild mechanical forces from human lipoaspirates. Cell Transplantation. 2, 2063-2077 (2013).
  4. Raffaini, M., Tremolada, C. Micro fractured and purified adipose tissue graft (Lipogems) can improve the orthognathic surgery outcomes both aesthetically and in postoperative healing. CellR4. 2 (4), (2014).
  5. Cestaro, G., et al. Intersphincteric anal lipofilling with micro-fragmented fat tissue for the treatment of faecal incontinence: preliminary results of three patients. Wideochir Inne Tech Maloinwazyjne. 10 (2), 337-341 (2015).
  6. Fantasia, J., et al. Microfractured and purified adipose tissue (Lipogems system) injections for treatment of atrophic vaginitis. Journal of Urology Research. 3 (7), 1073-1075 (2016).
  7. Saibene, A. M., et al. Transnasal endoscopic microfractured fat injection in glottic insufficiency. B-ENT. 11 (3), 229-234 (2015).
  8. Giori, A., et al. Recovery of function in anal incontinence after micro-fragmented fat graft (Lipogems) injection: two years follow up of the first 5 cases. CellR4. 3 (2), (2015).
  9. Tremolada, C., et al. Adipose mesenchymal stem cells and regenerative adipose tissue graft (Lipogems) for musculoskeletal regeneration. European Journal of Muscoloskeletal Diseases. 3 (2), 57-67 (2014).
  10. Striano, R. D., et al. Non-responsive knee pain with osteoarthritis and concurrent meniscal disease treated with autologous micro-fragmented adipose tissue under continuous ultrasound guidance. CellR4. 3 (5), (2015).
  11. Randelli, P., et al. Lipogems product treatment increases the proliferation rate of human tendon stem cells without affecting their stemness and differentiation capability. Stem Cells International. 2016, (2016).
  12. Bianchi, F., et al. Lipogems, a new modality off at tissue handling to enhance tissue repair in chronic hind limb ischemia. CellR4. 2 (6), (2014).
  13. Benzi, R., et al. Microfractured lipoaspirate may help oral bone and soft tissue regeneration: a case report. CellR4. 3 (3), (2015).
  14. Crisan, M., et al. A perivascular origin for mesenchymal stem cells in multiple human organs. Cell Stem Cell. 3, 301-313 (2008).
  15. Vezzani, B., et al. Higher pericyte content and secretory activity of micro-fragmented human adipose tissue compared to enzymatically derived stromal vascular fraction. Stem Cells Translational Medicine. 7 (12), 876-886 (2018).
  16. Coleman, S. R. Structural fat grafting: more than a permanent filler. Plastic and Reconstructive Surgery. 118 (3), 108S-120S (2006).
  17. . Editorial: An update on organoid research. Nature Cell Biology. 20 (6), 633 (2018).
check_url/pt/60117?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Vezzani, B., Gomez-Salazar, M., Casamitjana, J., Tremolada, C., Péault, B. Human Adipose Tissue Micro-fragmentation for Cell Phenotyping and Secretome Characterization. J. Vis. Exp. (152), e60117, doi:10.3791/60117 (2019).

View Video