Summary

النغمة القاعدية القاعدية القاعدية والاختبار السلبي للجهاز التناسلي للمورين باستخدام جهاز قياس ضغط

Published: August 13, 2019
doi:

Summary

استخدم هذا البروتوكول نظام موغرافي للضغط متاح تجارياً لإجراء اختبار الضغط على المهبل وعنق الرحم. باستخدام وسائل الإعلام مع وبدون الكالسيوم، تم عزل مساهمات خلايا العضلات الملساء (SMC) لهجة القاعدية والمصفوفة السلبية خارج الخلية (ECM) للأعضاء في ظل الظروف الفسيولوجية المقدرة.

Abstract

وتتألف الأعضاء التناسلية الأنثوية، وعلى وجه التحديد المهبل وعنق الرحم،من مكونات خلوية مختلفة ومصفوفة فريدة من نوعها خارج الخلية (ECM). تظهر خلايا العضلات الملساء وظيفة تقلصداخل جدران المهبل وعنق الرحم. اعتمادا على البيئة البيوكيميائية والتفكك الميكانيكي لجدران الجهاز، وخلايا العضلات الملساء تغيير الظروف العقدية. يتم تصنيف مساهمة خلايا العضلات الملساء في ظل الظروف الفسيولوجية الأساسية كنغمة أساسية. وبشكل أكثر تحديدا، لهجة القاعدية هو انقباض جزئي خط الأساس من خلايا العضلات الملساء في غياب التحفيز الهرموني والعصبي. وعلاوة على ذلك، يوفر إدارة المحتوى في المؤسسة الدعم الهيكلي لجدران الأعضاء ووظائفها كمستودع للإشارات البيوكيميائية. هذه العظة البيوكيميائية حيوية لمختلف وظائف الأعضاء، مثل التحريض على النمو والحفاظ على التوازن. يتكون ECM من كل عضو في المقام الأول من ألياف الكولاجين (في الغالب أنواع الكولاجين الأول والثالث والخامس)، والألياف المرنة، وغليكوسامينوغليكانس / بروتيوغليكانس. تكوين وتنظيم ECM تملي الخصائص الميكانيكية لكل جهاز. قد يؤدي تغيير في تكوين ECM إلى تطوير الأمراض التناسلية، مثل تدلي أعضاء الحوض أو إعادة عرض عنق الرحم قبل الأوان. وعلاوة على ذلك، فإن التغيرات في البنية الدقيقة ECM وتصلب قد يغير نشاط خلايا العضلات الملساء والنمط الظاهري، مما يؤدي إلى فقدان القوة العقدية.

في هذا العمل، يتم استخدام البروتوكولات المبلغ عنها لتقييم لهجة القاعدية والخصائص الميكانيكية السلبية للمهبل غير الحامل وعنق الرحم في 4-6 أشهر من العمر في estrus. وقد تم تركيب الأعضاء في جهاز قياس ضغط متاح تجارياً، وأجريت اختبارات قطر الضغط وطول القوة على حد سواء. وتشمل نماذج البيانات وتقنيات تحليل البيانات للتوصيف الميكانيكي للأعضاء التناسلية. وقد تكون هذه المعلومات مفيدة في بناء نماذج رياضية وتصميم التدخلات العلاجية بعقلانية للأمراض الصحية للمرأة.

Introduction

يتكون الجدار المهبلي من أربع طبقات، ظهارة، بروبريا لامينا، العضلات، وadventitia. يتكون الظهارة في المقام الأول من الخلايا الظهارية. اللامينا بروبريا لديه كمية كبيرة من ألياف الكولاجين المرنة والفيبريلار. ويتكون العضلات أيضا من ألياف الإيلاستين والكولاجين ولكن لديه كمية متزايدة من خلايا العضلات الملساء. ويتكون adventitia من الإيلاستين، الكولاجين، والخلايا الليفية، وإن كان في تركيزات مخفضة بالمقارنة مع الطبقات السابقة. خلايا العضلات الملساء هي ذات أهمية لمجموعات البحوث المحفزة بيولوجيا لأنها تلعب دورا في الطبيعة العقدية للأعضاء. على هذا النحو، وكمي جزء منطقة الخلية العضلات الملساء والتنظيم هو المفتاح لفهم وظيفة الميكانيكية. تشير التحقيقات السابقة إلى أن محتوى العضلات الملساء داخل الجدار المهبلي يتم تنظيمه في المقام الأول في المحور المحيطي والطولي. التحليل النسيجي يشير إلى أن كسر منطقة العضلات الملساء هو ما يقرب من 35٪ لكل من الأجزاء القريبة والبعيدة من الجدار1.

عنق الرحم هو بنية الكولاجين للغاية، وأنه حتى وقت قريب، كان يعتقد أن يكون الحد الأدنى من محتوى الخلايا العضلية الملساء2،3. الدراسات الحديثة, ومع ذلك, وقد اقترح أن خلايا العضلات الملساء قد يكون لها وفرة أكبر ودور في عنق الرحم4,5. يعرض عنق الرحم تدرجًا في خلايا العضلات الملساء. نظام التشغيل الداخلي يحتوي على 50-60٪ خلايا العضلات الملساء حيث نظام التشغيل الخارجي يحتوي فقط على 10٪. دراسات الماوس، ومع ذلك، تقرير عنق الرحم أن تتكون من 10-15٪ خلايا العضلات الملساء و 85-90٪ الأنسجة الضامة الليفية مع عدم ذكر الاختلافات الإقليمية6،7،8. وبالنظر إلى أن نموذج الماوس يختلف عن النموذج البشري المبلغ عنه في كثير من الأحيان، هناك حاجة إلى مزيد من التحقيقات المتعلقة عنق الرحم الماوس.

وكان الغرض من هذا البروتوكول توضيح الخصائص الميكانيكية للمهبل وعنق الرحم. وقد تم تحقيق ذلك باستخدام جهاز myograph الضغط التي تمكن من تقييم الخصائص الميكانيكية في الاتجاهات المحيطة والمحورية في وقت واحد مع الحفاظ على التفاعلات الأصلية مصفوفة الخلية وهندسة الجهاز. شنت الأجهزة على اثنين من قنية مخصصة وتأمينها مع الحرير 6-0 الغرز. وقد أجريت اختبارات قطر الضغط حول الامتداد المحوري الفسيولوجي المقدر لتحديد الامتثال ومعامل الظل9. وأجريت اختبارات طول القوة للتأكد من الامتداد المحوري المقدر وللتأكد من أن الخصائص الميكانيكية قد تم تحديدها كميا في النطاق الفسيولوجي. تم إجراء البروتوكول التجريبي على المهبل غير الحامل وعنق الرحم في 4-6 أشهر من العمر في estrus.

وينقسم البروتوكول إلى قسمين رئيسيين للاختبار الميكانيكي: النغمة القاعدية والاختبار السلبي. يتم تعريف لهجة القاعدية على أنها انقباض جزئي خط الأساس من خلايا العضلات الملساء، حتى في غياب التحفيز المحلي والهرموني والعصبي الخارجي10. هذه الطبيعة العقدية الأساسية للمهبل وعنق الرحم تسفر عن السلوكيات الميكانيكية المميزة التي تقاس بعد ذلك من قبل نظام myograph الضغط. يتم تقييم الخصائص السلبية عن طريق إزالة الكالسيوم بين الخلايا التي تحافظ على حالة خط الأساس للانكماش، مما أدى إلى استرخاء خلايا العضلات الملساء. في الحالة السلبية، الكولاجين وألياف الإيلاستين توفير المساهمات المهيمنة للخصائص الميكانيكية للأعضاء.

ويستخدم نموذج المورين على نطاق واسع لدراسة الأمراض في الصحة الإنجابية للمرأة. يوفر الماوس العديد من المزايا لتحديد العلاقات المتطورة بين إدارة المحتوى في المؤسسة والخصائص الميكانيكية داخل الجهاز التناسلي11،12،13،14. وتشمل هذه المزايا دورات estrous قصيرة وتتميز بشكل جيد، وتكلفة منخفضة نسبيا، وسهولة المناولة، ووقت الحمل قصيرة نسبيا15. بالإضافة إلى ذلك، فإن جينوم الفئران المختبرية هو جيد التعيين والفئران المعدلة وراثيا هي أدوات قيمة لاختبار الفرضيات الميكانيكية16،17،18.

وتستخدم أنظمة الضغط myograph المتاحة تجاريا على نطاق واسع لتحديد كمية الاستجابات الميكانيكية لمختلف الأنسجة والأجهزة. بعض الهياكل البارزة التي تم تحليلها على نظام الضغط myograph تشمل الشرايين المرنة19،20،21،22، الأوردة والأنسجة الطعوم الوعائية المهندسة23،24، المريء25، والأمعاء الغليظة26. تسمح تكنولوجيا الضغط myograph بإجراء تقييم متزامن للخصائص في الاتجاهات المحورية ومحيطية مع الحفاظ على تفاعلات الخلية الأصلية -ECM وفي هندسة الجسم الحي. على الرغم من الاستخدام الواسع لأنظمة myograph في الأنسجة الرخوة وميكانيكا الأعضاء، لم يتم تطوير بروتوكول باستخدام تكنولوجيا الضغط myograph للمهبل وعنق الرحم. تم تقييم التحقيقات السابقة في الخصائص الميكانيكية للمهبل وعنق الرحم uniaxially27،28. هذه الأجهزة، ومع ذلك، تجربة تحميل متعدد المحوري داخل الجسم29،30، وبالتالي قياس الاستجابة الميكانيكية ثنائي المحور المهم.

وعلاوة على ذلك، فإن العمل الأخير يشير إلى خلايا العضلات الملساء قد تلعب دورا محتملا في أمراض الأنسجة الرخوة5،28،31،32. وهذا يوفر جاذبية أخرى لاستخدام تكنولوجيا الضغط myograph، كما أنه يحافظ على التفاعلات مصفوفة الخلية الأصلية، مما يسمح تحديد المساهمة التي تلعب خلايا العضلات الملساء في الفسيولوجية وpathophysiological الظروف. هنا، نقترح بروتوكولا لتحديد الخصائص الميكانيكية متعددة المحورية للمهبل وعنق الرحم في كل من لهجة القاعدية والظروف السلبية.

Protocol

Nulliparous 4-6 أشهر الإناث C57BL6J الفئران (29.4 ± 6.8 غرام) في estrus استخدمت لهذه الدراسة. وقد وافقت لجنة رعاية الحيوانات واستخدامها التابعة لمعهد رعاية الحيوانات في جامعة تولين على جميع الإجراءات. بعد الولادة، تكييف الفئران لمدة أسبوع واحد قبل القتل الرحيم، وكانت موجودة في ظل ظروف قياسية (12 ساعة ضوء / د?…

Representative Results

التحليل الناجح للخصائص الميكانيكية للأعضاء التناسلية الأنثوية يتوقف على تشريح الأعضاء المناسبة، وتراكم التعليب، والاختبار. لا بد من استئصال قرون الرحم إلى المهبل دونأي عيوب (الشكل 1). اعتمادا على نوع الجهاز، فإن حجم قنية تختلف (الشكل2). يجب أن يتم التعليب بحيث ل?…

Discussion

يقدم البروتوكول المنصوص عليه في هذه المقالة طريقة لتحديد الخصائص الميكانيكية للمهبل وعنق الرحم. وتشمل الخصائص الميكانيكية التي تم تحليلها في هذا البروتوكول كل من ظروف النغمة السلبية والقاعدية للأعضاء. يتم المستحثة الظروف السلبية والقاعدية عن طريق تغيير البيئة البيوكيميائية التي يتم غم…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

تم تمويل هذا العمل من #1751050 منحة المؤسسة الوطنية للتوظيف المهنية.

Materials

2F catheter Millar SPR-320 catheter to measure cervical pressure
6-0 Suture Fine Science Tools 18020-60 larger suture ties
CaCl2 (anhydrous) VWR 97062-590 HBSS concentration: 140 mg/ mL
CaCl2-2H20 Fischer chemical BDH9224-1KG
KRB concentration: 3.68 g/L
Dextrose (D-glucose) VWR 101172-434 HBSS concentration: 1000 mg/mL
KRB concentration: 19.8 g/L
Dumont #5/45 Forceps Fine Science Tools 11251-35 curved forceps
Dumont SS Forceps Fine Science Tools 11203-25 straight forceps
Eclipse Nikon E200 microscope used for imaging
Flow meter Danish MyoTechnologies 161FM flow meter within the testing apparatus
Force Transducer – 110P Danish MyoTechnologies 100079 force transducer
ImageJ SciJava ImageJ1 used to measure volume
Instrument Cases Fine Science Tools 20830-00 casing to hold dissection tools
KCl Fisher Chemical 97061-566 HBSS concentration: 400 mg/ mL
KRB concentration: 3.5 g/L
KH2PO4 G-Biosciences 71003-454 HBSS concentration: 60 mg/ mL
MgCl2 VWR 97064-150
KRB concentration: 1.14 g/L
MgCl2-6H2O VWR BDH9244-500G HBSS concentration: 100 mg/ mL
MgSO4-7H20 VWR 97062-134 HBSS concentration: 48 mg/ mL
Mircosoft excel Microsoft 6278402 program used for spreadsheet
Na2HPO4 (dibasic anhydrous) VWR 97061-588 HBSS concentration: 48 mg/mL
KRB concentration: 1.44 g/L
NaCl VWR 97061-274 HBSS concentration: 8000 mg/mL
KRB concentration: 70.1 g/L
NaHCO3 VWR 97062-460 HBSS concentration: 350 mg/ mL
KRB concentration: 21.0 g/L
Pressure myograph systems Danish MyoTechnologies 110P and 120CP Pressure myograph system:
prorgram, cannulation device,
and controller unit
Pressure Transducer Danish MyoTechnologies 100106 pressure transducer
Student Dumont #5 Forceps Fine Science Tools 91150-20 straight forceps
Student Vannas Spring Scissors Fine Science Tools 91500-09 micro-scissors
Tissue dye Bradley Products 1101-3 ink to measure in vivo stretch
Ultrasound transducer FujiFilm Visual Sonics LZ-550 ultrasound transducer used; 256 elements, 40 MHz center frequency
VEVO2100 FujiFilm Visual Sonics VS-20035 ultrasound used for imaging
Wagner Scissors Fine Science Tools 14069-12 larger scissors

Referências

  1. Capone, D., et al. Evaluating Residual Strain Throughout the Murine Female Reproductive System. Journal of Biomechanics. 82, 299-306 (2019).
  2. Danforth, D. The fibrous nature of the human cervix, and its relation to the isthmic segment in gravid and nongravid uteri. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 53 (4), 541-560 (1947).
  3. Hughesdon, P. The fibromuscular structure of the cervix and its changes during pregnancy and labour. Journal of Obstetrics and Gynecology of the British Commonwealth. 59, 763-776 (1952).
  4. Bryman, I., Norstrom, A., Lindblo, B. Influence of neurohypophyseal hormones on human cervical smooth muscle cell contractility in vitro. Obstetrics and Gynecology. 75 (2), 240-243 (1990).
  5. Joy, V., et al. A New Paradigm for the Role of Smooth Muscle Cells in the Human Cervix. Obstetrics. 215 (4), e471-e478 (2016).
  6. Xu, X., Akgul, Y., Mahendroo, M., Jerschow, A. Ex vivo assessment of mouse cervical remodeling through pregnancy via Na (23) MRS. NMR Biomedical. 23 (23), 907-912 (2014).
  7. Leppert, P. Anatomy and Physiology of cervical ripening. Clinical Obstetrics and Gynecology. 43 (43), 433-439 (2000).
  8. Schlembach, D., et al. Cervical ripening and insufficiency: from biochemical and molecular studies to in vivo clinical examination. European Journal of Obstetrics, Gynecology, and Reproductive Biology. 144, S70-S79 (2000).
  9. Stoka, K., et al. Effects of Increased Arterial Stiffiness on Atherosclerotic Plaque Amounts. Journal of Biomechanical Engineering. 140 (5), (2018).
  10. Mohram, D., Heller, L. Ch. 7. Cardiovascular Physiology. , (2006).
  11. Yoshida, K., et al. Quantitative Evaluation of Collagen Crosslinks and Corresponding Tensile Mechanical Properties in Mouse Cervical Tissue during Normal Pregnancy. PLoS One. 9, e112391 (2014).
  12. Mahendroo, M. Cervical remodeling in term and preterm birth: insight from an animal model. Society for Reproduction and Fertility. 143 (4), 429-438 (2012).
  13. Elovitz, M., Miranlini, C. Can medroxyprogesterone acetate alter Toll-like receptor expression in a mouse model of intrauterine inflammation?. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 193 (3), 1149-1155 (2005).
  14. Ripperda, C., et al. Vaginal estrogen: a dual-edged sword in postoperative healing of the vaginal wall. North American Menopause Society. 24 (7), 838-849 (2017).
  15. Nelson, J., Felicio, P., Randall, K., Sims, C., Finch, E. A Longitudinal Study of Estrous Cyclicity in Aging C57/6J Mice: Cycle, Frequency, Length, and Vaginal Cytology. Biology of Reproduction. 27 (2), 327-339 (1982).
  16. Ferruzzi, J., Collins, M., Yeh, A., Humphrey, J. Mechanical assessment of elastin integrity in fibrillin-1-deficient carotid arteries: implications for Marfan Syndrome. Cardiovascular Research. 92 (2), 287-295 (2011).
  17. Mariko, B., et al. Fribrillin-1 genetic deficiency leads to pathological ageing of arteries in mice. The Journal of Pathology. 224 (1), 33-44 (2011).
  18. Rahn, D., Ruff, M., Brown, S., Tibbals, H., Word, R. Biomechanical Properties of The Vaginal Wall: Effect of Pregnancy, Elastic Fiber Deficiency, and Pelvic Organ Prolapse. American Urogynecological Society. 198 (5), (2009).
  19. Caulk, A., Nepiyushchikh, Z., Shaw, R., Dixon, B., Gleason, R. Quantification of the passive and active biaxial mechanical behavior and microstructural organization of rat thoracic ducts. Royal Society Interface. 12 (108), 20150280 (2015).
  20. Amin, M., Le, V., Wagenseil, J. Mechanical Testing of Mouse Carotid Arteries: from Newborn to Adult. Journal of Visualized Experiments. (60), e3733 (2012).
  21. Sokolis, D., Sassani, S., Kritharis, E., Tsangaris, S. Differential histomechanical response of carotid artery in relation to species and region: mathematical description accounting for elastin and collagen anisiotropy. Medical and Biological Engineering and Computing. 49 (8), 867-879 (2011).
  22. Kim, J., Baek, S. Circumferential variations of the mechanical behavior of the porcine thoracic aorta during the inflation test. Journal of Biomechanics. 44 (10), 1941-1947 (2011).
  23. Faury, G., et al. Developmental adaptation of the mouse cardiovascular system to elastin haploinsufficency. Journal of Clinical Investigation. 11 (9), 1419-1428 (2003).
  24. Naito, Y., et al. Beyond Burst Pressure: Initial Evaluation of the Natural History of the Biaxial Mechanical Properties of Tissue-Engineered Vascular Grafts in the Venous Circulation Using a Murine Model. Tissue Engineering. 20, 346-355 (2014).
  25. Sommer, G., et al. Multaxial mechanical response and constitutive modeling of esophageal tissues: Impact on esophageal tissue engineering. Acta Biomaterialia. 9 (12), 9379-9391 (2013).
  26. Sokolis, D., Orfanidis, I., Peroulis, M. Biomechanical testing and material characterization for the rat large intestine: regional dependence of material parameters. Physiological Measurement. 32 (12), 1969-1982 (2011).
  27. Martins, P., et al. Prediction of Nonlinear Elastic Behavior of Vaginal Tissue: Experimental Results and Model Formation. Computational Methods of Biomechanics and Biomedical Engineering. 13 (3), 317-337 (2010).
  28. Feola, A., et al. Deterioration in Biomechanical Properties of the Vagina Following Implantation of a High-stiffness Prolapse Mesh. BJOG: An International Journal of Obstetrics and Gynaecology. 120 (2), 224-232 (2012).
  29. Huntington, A., Rizzuto, E., Abramowitch, S., Prete, Z., De Vita, R. Anisotropy of the Passive and Active Rat Vagina Under Biaxial Loading. Annals of Biomedical Engineering. 47, 272-281 (2018).
  30. Tokar, S., Feola, A., Moalli, P., Abramowitch, S. Characterizing the Biaxial Mechanical Properties of Vaginal Maternal Adaptations During Pregnancy. ASME 2010 Summer Bioengineering Conference, Parts A and B. , 689-690 (2010).
  31. Feloa, A., et al. Impact of Pregnancy and Vaginal Delivery on the Passive and Active Mechanics of the Rat Vagina. Annals of Biomedical Engineering. 39 (1), 549-558 (2010).
  32. Baah-Dwomoh, A., Alperin, M., Cook, M., De Vita, R. Mechanical Analysis of the Uterosacral Ligament: Swine vs Human. Annual Biomedical Engineering. 46 (12), 2036-2047 (2018).
  33. Champlin, A. Determining the Stage of the Estrous Cycle in the Mouse by the Appearance. Biology of Reproduction. 8 (4), 491-494 (1973).
  34. Byers, S., Wiles, M., Dunn, S., Taft, R. Mouse Estrous Cycle Identification Tool and Images. PLoS One. 7 (4), e35538 (2012).
  35. McLean, A. Performing Vaginal Lavage, Crystal Violet Staining and Vaginal Cytological Evaluation for Mouse Estrous Cycle Staging Identification. Journal of Visualized Experiments. 67, e4389 (2012).
  36. Bugg, G., Riley, M., Johnston, T., Baker, P., Taggart, M. Hypoxic inhibition of human myometrial contractions in vitro: implications for the regulation of parturition. European Journal of Clinical Investigation. 36 (2), 133-140 (2006).
  37. Taggart, M., Wray, S. Hypoxia and smooth muscle function: key regulatory events during metabolic stress. Journal of Physiology. 509, 315-325 (1998).
  38. Yoo, K., et al. The effects of volatile anesthetics on spontaneous contractility of isolated human pregnant uterine muscle: a comparison among sevoflurane, desflurane, isoflurane, and halothane. Anesthesia and Analgesia. 103 (2), 443-447 (2006).
  39. de Souza, L., et al. Effects of redox disturbances on intentional contractile reactivity in rats fed with a hypercaloric diet. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. , 6364821 (2018).
  40. Jaue, D., Ma, Z., Lee, S. Cardiac muscarinic receptor function in rats with cirrhotic cardiomyopathy. Hepatology. 25, 1361-1365 (1997).
  41. Xu, Q., Shaffer, E. The potential site of impaired gallbladder contractility in an animal mode of cholesterol gallstone disease. Gastroenterology. 110 (1), 251-257 (1996).
  42. Rodriguez, U., et al. Effects of blast induced Neurotrauma on pressurized rodent middle cerebral arteries. Journal of Visualized Experimentals. (146), e58792 (2019).
  43. Rubod, C., Boukerrou, M., Brieu, M., Dubois, P., Cosson, M. Biomechanical Properties of Vaginal Tissue Part 1: New Experimental Protocol. Journal of Urology. 178, 320-325 (2007).
  44. Robison, K., Conway, C., Desrosiers, L., Knoepp, L., Miller, K. Biaxial Mechanical Assessment of the Murine Vaginal Wall Using Extension-Inflation Testing. Journal of Biomechanical Engineering. 139 (10), 104504 (2017).
  45. Van loon, P. Length-Force and Volume-Pressure Relationships of Arteries. Biorheology. 14 (4), 181-201 (1977).
  46. Fernandez, M., et al. Investigating the Mechanical Function of the Cervix During Pregnancy using Finite Element Models Derived from High Resolution 3D MRI. Computational Methods Biomechanical and Biomedical Engineering. 19 (4), 404-417 (2015).
  47. House, M., Socrate, S. The Cervix as a Biomechanical Structure. Ultrasound Obstetric Gynecology. 28 (6), 745-749 (2006).
  48. Martins, P., et al. Biomechanical Properties of Vaginal Tissue in Women with Pelvic Organ Prolapse. Gynecologic and Obstetrics Investigation. 75, 85-92 (2013).
  49. Rada, C., Pierce, S., Grotegut, C., England, S. Intrauterine Telemetry to Measure Mouse Contractile Pressure In vivo. Journal of Visualized Experiments. (98), e52541 (2015).
  50. Lumsden, M. A., Baird, D. T. Intra-uterine pressure in dysmenorrhea. Acta Obstectricia at Gynecologica Scandinavica. 64 (2), 183-186 (1985).
  51. Milsom, I., Andersch, B., Sundell, G. The Effect of Flurbiprofen and Naproxen Sodium On Intra-Uterine Pressure and Menstrual Pain in Patients With Primary Dysmennorrhea. Acta Obstetricia et Gynecologica Scandinavica. 67 (8), 711-716 (1988).
  52. Park, K., et al. Vasculogenic female sexual dysfunction: the hemodynamic basis for vaginal engorgement insufficiency and clitoral erectile insufficiency. International Journal of Impotence Journal. 9 (1), 27-37 (1997).
  53. Bulletti, C., et al. Uterine Contractility During Menstrual Cycle. Human Reproduction. 15, 81-89 (2000).
  54. Kim, N. N., et al. Effects of Ovariectomy and Steroid Hormones on Vaginal Smooth Muscle Contractility. International Journal of Impotence Research. 16, 43-50 (2004).
  55. Giraldi, A., et al. Morphological and Functional Characterization of a Rat Vaginal Smooth Muscle Sphincter. International Journal of Impotence Research. 14, 271-282 (2002).
  56. Gleason, R., Gray, S. P., Wilson, E., Humphrey, J. A Multiaxial Computer-Controlled Organ Culture and Biomechanical Device for Mouse Carotid Arteries. Journal of Biomechanical Engineering. 126 (6), 787-795 (2005).
  57. Swartz, M., Tscumperlin, D., Kamm, R., Drazen, J. Mechanical Stress is Communicated Between Different Cell Types to Elicit Matrix Remodeling. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 98 (11), 6180-6185 (2001).
  58. Rachev, A. Remodeling of Arteries in Response to Changes in their Mechanical Environment. Biomechanics of Soft Tissue in Cardiovascular Systems. 441, 221-271 (2003).
  59. Lee, E. J., Holmes, J., Costa, K. Remodeling of Engineered Tissue Anisotropy in Response to Altered Loading Conditions. Annals of Biomedical Engineering. 36 (8), 1322-1334 (2008).
  60. Akintunde, A., et al. Effects of Elastase Digestion on the Murine Vaginal Wall Biaxial Mechanical Response. Journal of Biomechanical Engineering. 141 (2), 021011 (2018).
  61. Griffin, M., Premakumar, Y., Seifalian, A., Butler, P., Szarko, M. Biomechanical Characterization of Human Soft Tissues Using Indentation and Tensile Testing. Journal of Visualized Experiments. (118), e54872 (2016).
  62. Myers, K., Socrate, S., Paskaleva, A., House, M. A Study of the Anisotripy and Tension/Compression Behavior of Human Cervical Tissue. Journal of Biomechanical Engineering. 132 (2), 021003 (2010).
  63. Murtada, S., Ferruzzi, J., Yanagisawa, H., Humphrey, J. Reduced Biaxial Contractility in the Descending Thoracic Aorta of Fibulin-5 Deficent Mice. Journal of Biomechanical Engineering. 138 (5), 051008 (2016).
  64. Berkley, K., McAllister, S., Accius, B., Winnard, K. Endometriosis-induced vaginal hyperalgesia in the rat: effect of estropause, ovariectomy, and estradiol replacement. Pain. 132, s150-s159 (2007).
  65. van der Walt, I., Bø, K., Hanekom, S., Rienhardt, G. Ethnic Differences in pelvic floor muscle strength and endurance in South African women. International Urogynecology Journal. 25 (6), 799-805 (2014).
check_url/pt/60125?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
White, S. E., Conway, C. K., Clark, G. L., Lawrence, D. J., Bayer, C. L., Miller, K. S. Biaxial Basal Tone and Passive Testing of the Murine Reproductive System Using a Pressure Myograph. J. Vis. Exp. (150), e60125, doi:10.3791/60125 (2019).

View Video