Summary

Biaxial basal tone og passiv testning af murine reproduktive system ved hjælp af en Tryk Myograph

Published: August 13, 2019
doi:

Summary

Denne protokol udnyttede et kommercielt tilgængeligt tryk myograph-system til at udføre tryk myograph test på murine vagina og livmoderhalsen. Ved hjælp af medier med og uden calcium blev bidragene fra de glatte muskelceller (SMC) basal tone og passiv ekstracellulær matrix (ECM) isoleret for organerne underestimerede fysiologiske forhold.

Abstract

De kvindelige reproduktive organer, især vagina og livmoderhalsen, er sammensat af forskellige cellulære komponenter og en unik ekstracellulær matrix (ECM). Glatte muskelceller udviser en kontraktile funktion inden for vaginal og cervikal vægge. Afhængigt af det biokemiske miljø og den mekaniske udspiling af orgel væggene, de glatte muskelceller ændre kontraktile betingelser. Bidraget fra de glatte muskelceller under baseline fysiologiske betingelser er klassificeret som en basal tone. Mere specifikt, en basal tone er den baseline delvis konstriktion af glatte muskelceller i fravær af hormonelle og neurale stimulation. Desuden, ECM giver strukturel støtte til orgel vægge og funktioner som et reservoir for biokemiske signaler. Disse biokemiske signaler er afgørende for forskellige organfunktioner, såsom tilskyndelse til vækst og opretholdelse af homøostase. ECM af hvert organ er sammensat primært af kollagen fibre (for det meste kollagen typer I, III, og V), elastiske fibre, og glycosaminoglycans/proteoglycans. Sammensætningen og organiseringen af ECM diktere de mekaniske egenskaber af hvert organ. En ændring i ECM sammensætning kan føre til udvikling af reproduktive patologier, såsom bækkenorganprolaps eller tidlig cervikal remodeling. Endvidere, ændringer i ECM mikrostruktur og stivhed kan ændre glatte muskel celle aktivitet og fænotype, hvilket resulterer i tab af kontraktile kraft.

I dette arbejde, de rapporterede protokoller anvendes til at vurdere basal tone og passive mekaniske egenskaber af den ikke-gravide murine vagina og livmoderhalsen på 4-6 måneder i estrus. Organerne blev monteret i et kommercielt tilgængeligt tryk myograph, og både tryk-diameter og Force-længde tests blev udført. Prøve data og dataanalyse teknikker til mekanisk karakterisering af de reproduktive organer er inkluderet. Sådanne oplysninger kan være nyttige til at konstruere matematiske modeller og rationelt designe terapeutiske interventioner for kvinders sundhedsmæssige patologier.

Introduction

Den vaginale væg består af fire lag, Epitelet, lamina propria, muscularis og adventitia. Epitel består primært af epiteliale celler. Den lamina propria har en stor mængde af elastiske og fibrillar kollagen fibre. Muscularis er også sammensat af elastin og kollagen fibre, men har en øget mængde af glatte muskelceller. Adventitien består af elastin, kollagen og fibroblaster, omend i reducerede koncentrationer sammenlignet med de tidligere lag. De glatte muskelceller er af interesse for biomekorisk motiverede forskergrupper, da de spiller en rolle i den kontraktile karakter af organerne. Som sådan, kvantificere den glatte muskel celleområde fraktion og organisation er nøglen til at forstå den mekaniske funktion. Tidligere undersøgelser tyder på, at den glatte muskel indhold i den vaginale væg primært er organiseret i den omgående og længdeakse. Histologisk analyse tyder på, at den glatte muskel område fraktion er ca 35% for både proksimale og distale sektioner af væggen1.

Livmoderhalsen er en meget kollagenous struktur, der indtil for nylig, blev anset for at have minimal glat muskel celleindhold2,3. Nylige undersøgelser, dog, har antydet, at glatte muskelceller kan have en større overflod og rolle i livmoderhalsen4,5. Livmoderhalsen udviser en gradient af glatte muskelceller. Det interne operativsystem indeholder 50-60% glatte muskelceller, hvor det eksterne operativsystem kun indeholder 10%. Mus undersøgelser, dog, rapportere livmoderhalsen, der skal bestå af 10-15% glatte muskelceller og 85-90% fibrøst bindevæv uden omtale af regionale forskelle6,7,8. I betragtning af, at musemodel adskiller sig fra den hyppigt rapporterede menneskelige model, yderligere undersøgelser vedrørende mus livmoderhalsen er nødvendige.

Formålet med denne protokol var at belyse de mekaniske egenskaber af murine vagina og livmoderhalsen. Dette blev opnået ved hjælp af en Tryk myograph enhed, der muliggør vurdering af mekaniske egenskaber i de circumferentielle og aksiale retninger samtidig samtidig bevare indfødte celle-matrix interaktioner og organ geometri. Organerne blev monteret på to brugerdefinerede kanyle og sikret med silke 6-0 suturer. Prøvning af tryk diameter blev udført omkring den anslåede fysiologiske aksiale strækning for at bestemme overensstemmelsen og tangent moduli9. Der blev udført Force-length-tests for at bekræfte den anslåede aksiale strækning og for at sikre, at de mekaniske egenskaber blev kvantificeret i det fysiologiske område. Forsøgsprotokollen blev udført på den ikke-gravide murine vagina og livmoderhalsen ved 4-6 måneders alderen i estrus.

Protokollen er opdelt i to vigtigste mekaniske test sektioner: basal tone og passiv test. En basal tone er defineret som baseline partielle konstriktion af glatte muskelceller, selv i fravær af eksterne lokale, hormonelle og neurale stimulation10. Denne baseline kontraktile natur af vagina og livmoderhalsen giver karakteristisk mekanisk adfærd, som derefter måles ved tryk myograph system. De passive egenskaber vurderes ved at fjerne det intercellulære calcium, der bevarer den grundlæggende tilstand af sammentrækning, hvilket resulterer i afslapning af de glatte muskelceller. I den passive tilstand, kollagen og elastin fibre giver den dominerende bidrag til de mekaniske egenskaber af organerne.

Murine-modellen anvendes i udstrakt grad til at studere patologier i kvinders reproduktive sundhed. Musen giver flere fordele ved at kvantificere de udviklende relationer mellem ECM og mekaniske egenskaber i det reproduktive system11,12,13,14. Disse fordele omfatter korte og velkarakteriserede estrous cyklusser, relativt lave omkostninger, nem håndtering, og en relativt kort gestationstid15. Desuden er genomet af laboratorie mus godt kortlagt og genetisk modificerede mus er værdifulde værktøjer til at teste mekanistiske hypoteser16,17,18.

Kommercielt tilgængelige tryk myograph systemer anvendes i udstrakt grad til at kvantificere de mekaniske reaktioner af forskellige væv og organer. Nogle bemærkelsesværdige strukturer analyseret på trykket myograph system omfatter elastiske arterier19,20,21,22, vener og væv manipuleret vaskulære grafts23,24, spiserøret25, og de store tarme26. Tryk myograph-teknologien muliggør samtidig vurdering af egenskaber i de aksiale og circumferentielle retninger, samtidig med at de indfødte celle-ECM-interaktioner og in vivo-geometri bevares. På trods af den omfattende brug af myograph systemer i blødt væv og orgel mekanik, en protokol, der udnytter trykket myograph teknologi ikke tidligere var blevet udviklet til vagina og livmoderhalsen. Forudgående undersøgelser af de mekaniske egenskaber i vagina og livmoderhalsen blev vurderet uniaksialt27,28. Disse organer, dog oplever multiaksial lastning i kroppen29,30, således kvantificere deres biksimale mekaniske respons er vigtigt.

Desuden tyder nylige arbejde på, at glatte muskelceller kan spille en potentiel rolle i bløddels patologier5,28,31,32. Dette giver en anden attraktion ved at udnytte trykket myograph teknologi, da det bevarer den indfødte celle-matrix interaktioner, hvilket tillader afgrænsning af det bidrag, glatte muskelceller spiller i fysiologiske og patofysiologiske Betingelser. Heri, foreslår vi en protokol til at kvantificere de multiaksiale mekaniske egenskaber i vagina og livmoderhalsen under både basal tone og passive betingelser.

Protocol

Nulliparous 4-6 måneder kvindelige C57BL6J mus (29,4 ± 6,8 gram) hos estrus blev anvendt til dette studie. Alle procedurer blev godkendt af instituttet Animal Care og use Committee på Tulane University. Efter fødslen akklimede musene i en uge før eutanasi og blev opstaldet under standardbetingelser (12-timers lys/mørke cyklusser). 1. mus offer på estrus Fastlæg den estrøse cyklus: den estrous cyklus blev overvåget ved visuel vurdering i overensstemmelse med tidligere unders…

Representative Results

En vellykket analyse af de mekaniske egenskaber af de kvindelige reproduktive organer er betinget af passende organ dissektion, kanyle og testning. Det er bydende nødvendigt at explant livmoder horn til vagina uden nogen defekter (figur 1). Afhængigt af organ typen vil kanyle størrelsen variere (figur 2). Der skal ske en kanylering, således at organet ikke kan bevæge sig under forsøget, men heller ikke beskadiger organets væg under proceduren (figur 3</str…

Discussion

Den protokol, der er fastsat i denne artikel præsenterer en metode til bestemmelse af de mekaniske egenskaber af murine vagina og livmoderhalsen. De mekaniske egenskaber, der analyseres i denne protokol, omfatter både de passive og basale tone forhold i organerne. Passive og basale tone forhold induceres ved at ændre det biokemiske miljø, hvor orglet er nedsænket. For denne protokol indeholder de medier, der er involveret i basal testning, calcium. Afprøvning af basal tone tilstand tillader isolering af den glatte …

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Arbejdet blev finansieret af NSF CAREER Award Grant #1751050.

Materials

2F catheter Millar SPR-320 catheter to measure cervical pressure
6-0 Suture Fine Science Tools 18020-60 larger suture ties
CaCl2 (anhydrous) VWR 97062-590 HBSS concentration: 140 mg/ mL
CaCl2-2H20 Fischer chemical BDH9224-1KG
KRB concentration: 3.68 g/L
Dextrose (D-glucose) VWR 101172-434 HBSS concentration: 1000 mg/mL
KRB concentration: 19.8 g/L
Dumont #5/45 Forceps Fine Science Tools 11251-35 curved forceps
Dumont SS Forceps Fine Science Tools 11203-25 straight forceps
Eclipse Nikon E200 microscope used for imaging
Flow meter Danish MyoTechnologies 161FM flow meter within the testing apparatus
Force Transducer – 110P Danish MyoTechnologies 100079 force transducer
ImageJ SciJava ImageJ1 used to measure volume
Instrument Cases Fine Science Tools 20830-00 casing to hold dissection tools
KCl Fisher Chemical 97061-566 HBSS concentration: 400 mg/ mL
KRB concentration: 3.5 g/L
KH2PO4 G-Biosciences 71003-454 HBSS concentration: 60 mg/ mL
MgCl2 VWR 97064-150
KRB concentration: 1.14 g/L
MgCl2-6H2O VWR BDH9244-500G HBSS concentration: 100 mg/ mL
MgSO4-7H20 VWR 97062-134 HBSS concentration: 48 mg/ mL
Mircosoft excel Microsoft 6278402 program used for spreadsheet
Na2HPO4 (dibasic anhydrous) VWR 97061-588 HBSS concentration: 48 mg/mL
KRB concentration: 1.44 g/L
NaCl VWR 97061-274 HBSS concentration: 8000 mg/mL
KRB concentration: 70.1 g/L
NaHCO3 VWR 97062-460 HBSS concentration: 350 mg/ mL
KRB concentration: 21.0 g/L
Pressure myograph systems Danish MyoTechnologies 110P and 120CP Pressure myograph system:
prorgram, cannulation device,
and controller unit
Pressure Transducer Danish MyoTechnologies 100106 pressure transducer
Student Dumont #5 Forceps Fine Science Tools 91150-20 straight forceps
Student Vannas Spring Scissors Fine Science Tools 91500-09 micro-scissors
Tissue dye Bradley Products 1101-3 ink to measure in vivo stretch
Ultrasound transducer FujiFilm Visual Sonics LZ-550 ultrasound transducer used; 256 elements, 40 MHz center frequency
VEVO2100 FujiFilm Visual Sonics VS-20035 ultrasound used for imaging
Wagner Scissors Fine Science Tools 14069-12 larger scissors

Referências

  1. Capone, D., et al. Evaluating Residual Strain Throughout the Murine Female Reproductive System. Journal of Biomechanics. 82, 299-306 (2019).
  2. Danforth, D. The fibrous nature of the human cervix, and its relation to the isthmic segment in gravid and nongravid uteri. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 53 (4), 541-560 (1947).
  3. Hughesdon, P. The fibromuscular structure of the cervix and its changes during pregnancy and labour. Journal of Obstetrics and Gynecology of the British Commonwealth. 59, 763-776 (1952).
  4. Bryman, I., Norstrom, A., Lindblo, B. Influence of neurohypophyseal hormones on human cervical smooth muscle cell contractility in vitro. Obstetrics and Gynecology. 75 (2), 240-243 (1990).
  5. Joy, V., et al. A New Paradigm for the Role of Smooth Muscle Cells in the Human Cervix. Obstetrics. 215 (4), e471-e478 (2016).
  6. Xu, X., Akgul, Y., Mahendroo, M., Jerschow, A. Ex vivo assessment of mouse cervical remodeling through pregnancy via Na (23) MRS. NMR Biomedical. 23 (23), 907-912 (2014).
  7. Leppert, P. Anatomy and Physiology of cervical ripening. Clinical Obstetrics and Gynecology. 43 (43), 433-439 (2000).
  8. Schlembach, D., et al. Cervical ripening and insufficiency: from biochemical and molecular studies to in vivo clinical examination. European Journal of Obstetrics, Gynecology, and Reproductive Biology. 144, S70-S79 (2000).
  9. Stoka, K., et al. Effects of Increased Arterial Stiffiness on Atherosclerotic Plaque Amounts. Journal of Biomechanical Engineering. 140 (5), (2018).
  10. Mohram, D., Heller, L. Ch. 7. Cardiovascular Physiology. , (2006).
  11. Yoshida, K., et al. Quantitative Evaluation of Collagen Crosslinks and Corresponding Tensile Mechanical Properties in Mouse Cervical Tissue during Normal Pregnancy. PLoS One. 9, e112391 (2014).
  12. Mahendroo, M. Cervical remodeling in term and preterm birth: insight from an animal model. Society for Reproduction and Fertility. 143 (4), 429-438 (2012).
  13. Elovitz, M., Miranlini, C. Can medroxyprogesterone acetate alter Toll-like receptor expression in a mouse model of intrauterine inflammation?. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 193 (3), 1149-1155 (2005).
  14. Ripperda, C., et al. Vaginal estrogen: a dual-edged sword in postoperative healing of the vaginal wall. North American Menopause Society. 24 (7), 838-849 (2017).
  15. Nelson, J., Felicio, P., Randall, K., Sims, C., Finch, E. A Longitudinal Study of Estrous Cyclicity in Aging C57/6J Mice: Cycle, Frequency, Length, and Vaginal Cytology. Biology of Reproduction. 27 (2), 327-339 (1982).
  16. Ferruzzi, J., Collins, M., Yeh, A., Humphrey, J. Mechanical assessment of elastin integrity in fibrillin-1-deficient carotid arteries: implications for Marfan Syndrome. Cardiovascular Research. 92 (2), 287-295 (2011).
  17. Mariko, B., et al. Fribrillin-1 genetic deficiency leads to pathological ageing of arteries in mice. The Journal of Pathology. 224 (1), 33-44 (2011).
  18. Rahn, D., Ruff, M., Brown, S., Tibbals, H., Word, R. Biomechanical Properties of The Vaginal Wall: Effect of Pregnancy, Elastic Fiber Deficiency, and Pelvic Organ Prolapse. American Urogynecological Society. 198 (5), (2009).
  19. Caulk, A., Nepiyushchikh, Z., Shaw, R., Dixon, B., Gleason, R. Quantification of the passive and active biaxial mechanical behavior and microstructural organization of rat thoracic ducts. Royal Society Interface. 12 (108), 20150280 (2015).
  20. Amin, M., Le, V., Wagenseil, J. Mechanical Testing of Mouse Carotid Arteries: from Newborn to Adult. Journal of Visualized Experiments. (60), e3733 (2012).
  21. Sokolis, D., Sassani, S., Kritharis, E., Tsangaris, S. Differential histomechanical response of carotid artery in relation to species and region: mathematical description accounting for elastin and collagen anisiotropy. Medical and Biological Engineering and Computing. 49 (8), 867-879 (2011).
  22. Kim, J., Baek, S. Circumferential variations of the mechanical behavior of the porcine thoracic aorta during the inflation test. Journal of Biomechanics. 44 (10), 1941-1947 (2011).
  23. Faury, G., et al. Developmental adaptation of the mouse cardiovascular system to elastin haploinsufficency. Journal of Clinical Investigation. 11 (9), 1419-1428 (2003).
  24. Naito, Y., et al. Beyond Burst Pressure: Initial Evaluation of the Natural History of the Biaxial Mechanical Properties of Tissue-Engineered Vascular Grafts in the Venous Circulation Using a Murine Model. Tissue Engineering. 20, 346-355 (2014).
  25. Sommer, G., et al. Multaxial mechanical response and constitutive modeling of esophageal tissues: Impact on esophageal tissue engineering. Acta Biomaterialia. 9 (12), 9379-9391 (2013).
  26. Sokolis, D., Orfanidis, I., Peroulis, M. Biomechanical testing and material characterization for the rat large intestine: regional dependence of material parameters. Physiological Measurement. 32 (12), 1969-1982 (2011).
  27. Martins, P., et al. Prediction of Nonlinear Elastic Behavior of Vaginal Tissue: Experimental Results and Model Formation. Computational Methods of Biomechanics and Biomedical Engineering. 13 (3), 317-337 (2010).
  28. Feola, A., et al. Deterioration in Biomechanical Properties of the Vagina Following Implantation of a High-stiffness Prolapse Mesh. BJOG: An International Journal of Obstetrics and Gynaecology. 120 (2), 224-232 (2012).
  29. Huntington, A., Rizzuto, E., Abramowitch, S., Prete, Z., De Vita, R. Anisotropy of the Passive and Active Rat Vagina Under Biaxial Loading. Annals of Biomedical Engineering. 47, 272-281 (2018).
  30. Tokar, S., Feola, A., Moalli, P., Abramowitch, S. Characterizing the Biaxial Mechanical Properties of Vaginal Maternal Adaptations During Pregnancy. ASME 2010 Summer Bioengineering Conference, Parts A and B. , 689-690 (2010).
  31. Feloa, A., et al. Impact of Pregnancy and Vaginal Delivery on the Passive and Active Mechanics of the Rat Vagina. Annals of Biomedical Engineering. 39 (1), 549-558 (2010).
  32. Baah-Dwomoh, A., Alperin, M., Cook, M., De Vita, R. Mechanical Analysis of the Uterosacral Ligament: Swine vs Human. Annual Biomedical Engineering. 46 (12), 2036-2047 (2018).
  33. Champlin, A. Determining the Stage of the Estrous Cycle in the Mouse by the Appearance. Biology of Reproduction. 8 (4), 491-494 (1973).
  34. Byers, S., Wiles, M., Dunn, S., Taft, R. Mouse Estrous Cycle Identification Tool and Images. PLoS One. 7 (4), e35538 (2012).
  35. McLean, A. Performing Vaginal Lavage, Crystal Violet Staining and Vaginal Cytological Evaluation for Mouse Estrous Cycle Staging Identification. Journal of Visualized Experiments. 67, e4389 (2012).
  36. Bugg, G., Riley, M., Johnston, T., Baker, P., Taggart, M. Hypoxic inhibition of human myometrial contractions in vitro: implications for the regulation of parturition. European Journal of Clinical Investigation. 36 (2), 133-140 (2006).
  37. Taggart, M., Wray, S. Hypoxia and smooth muscle function: key regulatory events during metabolic stress. Journal of Physiology. 509, 315-325 (1998).
  38. Yoo, K., et al. The effects of volatile anesthetics on spontaneous contractility of isolated human pregnant uterine muscle: a comparison among sevoflurane, desflurane, isoflurane, and halothane. Anesthesia and Analgesia. 103 (2), 443-447 (2006).
  39. de Souza, L., et al. Effects of redox disturbances on intentional contractile reactivity in rats fed with a hypercaloric diet. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. , 6364821 (2018).
  40. Jaue, D., Ma, Z., Lee, S. Cardiac muscarinic receptor function in rats with cirrhotic cardiomyopathy. Hepatology. 25, 1361-1365 (1997).
  41. Xu, Q., Shaffer, E. The potential site of impaired gallbladder contractility in an animal mode of cholesterol gallstone disease. Gastroenterology. 110 (1), 251-257 (1996).
  42. Rodriguez, U., et al. Effects of blast induced Neurotrauma on pressurized rodent middle cerebral arteries. Journal of Visualized Experimentals. (146), e58792 (2019).
  43. Rubod, C., Boukerrou, M., Brieu, M., Dubois, P., Cosson, M. Biomechanical Properties of Vaginal Tissue Part 1: New Experimental Protocol. Journal of Urology. 178, 320-325 (2007).
  44. Robison, K., Conway, C., Desrosiers, L., Knoepp, L., Miller, K. Biaxial Mechanical Assessment of the Murine Vaginal Wall Using Extension-Inflation Testing. Journal of Biomechanical Engineering. 139 (10), 104504 (2017).
  45. Van loon, P. Length-Force and Volume-Pressure Relationships of Arteries. Biorheology. 14 (4), 181-201 (1977).
  46. Fernandez, M., et al. Investigating the Mechanical Function of the Cervix During Pregnancy using Finite Element Models Derived from High Resolution 3D MRI. Computational Methods Biomechanical and Biomedical Engineering. 19 (4), 404-417 (2015).
  47. House, M., Socrate, S. The Cervix as a Biomechanical Structure. Ultrasound Obstetric Gynecology. 28 (6), 745-749 (2006).
  48. Martins, P., et al. Biomechanical Properties of Vaginal Tissue in Women with Pelvic Organ Prolapse. Gynecologic and Obstetrics Investigation. 75, 85-92 (2013).
  49. Rada, C., Pierce, S., Grotegut, C., England, S. Intrauterine Telemetry to Measure Mouse Contractile Pressure In vivo. Journal of Visualized Experiments. (98), e52541 (2015).
  50. Lumsden, M. A., Baird, D. T. Intra-uterine pressure in dysmenorrhea. Acta Obstectricia at Gynecologica Scandinavica. 64 (2), 183-186 (1985).
  51. Milsom, I., Andersch, B., Sundell, G. The Effect of Flurbiprofen and Naproxen Sodium On Intra-Uterine Pressure and Menstrual Pain in Patients With Primary Dysmennorrhea. Acta Obstetricia et Gynecologica Scandinavica. 67 (8), 711-716 (1988).
  52. Park, K., et al. Vasculogenic female sexual dysfunction: the hemodynamic basis for vaginal engorgement insufficiency and clitoral erectile insufficiency. International Journal of Impotence Journal. 9 (1), 27-37 (1997).
  53. Bulletti, C., et al. Uterine Contractility During Menstrual Cycle. Human Reproduction. 15, 81-89 (2000).
  54. Kim, N. N., et al. Effects of Ovariectomy and Steroid Hormones on Vaginal Smooth Muscle Contractility. International Journal of Impotence Research. 16, 43-50 (2004).
  55. Giraldi, A., et al. Morphological and Functional Characterization of a Rat Vaginal Smooth Muscle Sphincter. International Journal of Impotence Research. 14, 271-282 (2002).
  56. Gleason, R., Gray, S. P., Wilson, E., Humphrey, J. A Multiaxial Computer-Controlled Organ Culture and Biomechanical Device for Mouse Carotid Arteries. Journal of Biomechanical Engineering. 126 (6), 787-795 (2005).
  57. Swartz, M., Tscumperlin, D., Kamm, R., Drazen, J. Mechanical Stress is Communicated Between Different Cell Types to Elicit Matrix Remodeling. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 98 (11), 6180-6185 (2001).
  58. Rachev, A. Remodeling of Arteries in Response to Changes in their Mechanical Environment. Biomechanics of Soft Tissue in Cardiovascular Systems. 441, 221-271 (2003).
  59. Lee, E. J., Holmes, J., Costa, K. Remodeling of Engineered Tissue Anisotropy in Response to Altered Loading Conditions. Annals of Biomedical Engineering. 36 (8), 1322-1334 (2008).
  60. Akintunde, A., et al. Effects of Elastase Digestion on the Murine Vaginal Wall Biaxial Mechanical Response. Journal of Biomechanical Engineering. 141 (2), 021011 (2018).
  61. Griffin, M., Premakumar, Y., Seifalian, A., Butler, P., Szarko, M. Biomechanical Characterization of Human Soft Tissues Using Indentation and Tensile Testing. Journal of Visualized Experiments. (118), e54872 (2016).
  62. Myers, K., Socrate, S., Paskaleva, A., House, M. A Study of the Anisotripy and Tension/Compression Behavior of Human Cervical Tissue. Journal of Biomechanical Engineering. 132 (2), 021003 (2010).
  63. Murtada, S., Ferruzzi, J., Yanagisawa, H., Humphrey, J. Reduced Biaxial Contractility in the Descending Thoracic Aorta of Fibulin-5 Deficent Mice. Journal of Biomechanical Engineering. 138 (5), 051008 (2016).
  64. Berkley, K., McAllister, S., Accius, B., Winnard, K. Endometriosis-induced vaginal hyperalgesia in the rat: effect of estropause, ovariectomy, and estradiol replacement. Pain. 132, s150-s159 (2007).
  65. van der Walt, I., Bø, K., Hanekom, S., Rienhardt, G. Ethnic Differences in pelvic floor muscle strength and endurance in South African women. International Urogynecology Journal. 25 (6), 799-805 (2014).
check_url/pt/60125?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
White, S. E., Conway, C. K., Clark, G. L., Lawrence, D. J., Bayer, C. L., Miller, K. S. Biaxial Basal Tone and Passive Testing of the Murine Reproductive System Using a Pressure Myograph. J. Vis. Exp. (150), e60125, doi:10.3791/60125 (2019).

View Video