Biaksiyel Bazal Tonu ve Basınç Miyografkullanarak Mürin üreme sisteminin pasif testi
Summary
Bu protokol, minür vajina ve serviks üzerinde basınç miyograf testi yapmak için ticari olarak mevcut basınçlı miyograf sistemi kullanılmıştır. Kalsiyumlu ve kalsiyumsuz ortamkullanımı, düz kas hücrelerinin katkıları (SMC) bazal tonu ve pasif ekstrasellüler matriks (ECM) tahmini fizyolojik koşullar altında organlar için izole edildi.
Abstract
Kadın üreme organları, özellikle vajina ve serviks, çeşitli hücresel bileşenler vebenzersiz bir hücre dışı matris oluşur (ECM). Düz kas hücreleri vajinal ve servikal duvarlar içinde bir kontraktil fonksiyon sergiler. Biyokimyasal ortama ve organ duvarlarının mekanik distansiyonuna bağlı olarak, düz kas hücreleri kontraktil koşulları değiştirir. Temel fizyolojik koşullar altında düz kas hücrelerinin katkısı bazal tonu olarak sınıflandırılır. Daha spesifik olarak, bazal bir ton hormonal ve nöral stimülasyon yokluğunda düz kas hücrelerinin temel kısmi daralması olduğunu. Ayrıca, ECM organ duvarları ve biyokimyasal ipuçları için bir rezervuar olarak fonksiyonları için yapısal destek sağlar. Bu biyokimyasal ipuçları çeşitli organ fonksiyonları için hayati önem taşımaktadır, bu tür büyümeyi teşvik ve homeostaz bakımı gibi. Her organın ECM öncelikle kollajen lifleri oluşur (çoğunlukla kollajen türleri I, III, ve V), elastik lifler, ve glikozaminoglikanlar / proteoglikanlar. ECM’nin bileşimi ve organizasyonu her organın mekanik özelliklerini belirler. ECM bileşimindeki bir değişiklik, pelvik organ prolapsusu veya erken servikal remodeling gibi üreme patolojilerinin gelişmesine yol açabilir. Ayrıca, ECM mikroyapısı ve sertlik değişiklikleri düz kas hücre aktivitesi ve fenotip değiştirebilir, böylece kontraktil kuvvet kaybına neden.
Bu çalışmada, rapor edilen protokoller, estrus’ta 4-6 aylıkken gebe olmayan vajina ve serviksin bazal tonu ve pasif mekanik özelliklerini değerlendirmek için kullanılmaktadır. Organlar ticari olarak kullanılabilen basınç miyografına monte edildi ve hem basınç çapı hem de kuvvet boyu testleri yapıldı. Üreme organlarının mekanik karakterizasyonu için örnek veriler ve veri analizi teknikleri dahildir. Bu tür bilgiler matematiksel modeller oluşturmak ve rasyonel kadın sağlığı patolojileri için terapötik müdahaleler tasarımı için yararlı olabilir.
Introduction
Vajinal duvar dört tabakadan oluşur, epitel, lamina propria, muscularis, ve adventiti. Epitel öncelikle epitel hücrelerinden oluşur. Lamina propria elastik ve fibrillar kollajen lifleri büyük miktarda vardır. Kas da elastin ve kollajen lifleri oluşur ama düz kas hücrelerinin artan miktarda vardır. Adventiti elastin oluşur, kollajen, ve fibroblastlar, önceki katmanlara göre azaltılmış konsantrasyonlarda da olsa. Onlar organların kontraktil doğada bir rol oynamak gibi düz kas hücreleri biyomekanik motive araştırma grupları için ilgi vardır. Bu nedenle, düz kas hücre alanı fraksiyonu ve organizasyon sayısal mekanik fonksiyonu anlamak için anahtardır. Önceki araştırmalar vajinal duvar içinde düz kas içeriği öncelikle çevresel ve uzunlamasına eksende organize olduğunu göstermektedir. Histolojik analiz, düz kas alanı fraksiyonunun duvarın proksimal ve distal kesitleriiçin yaklaşık %35 olduğunu göstermektedir 1.
Serviks son derece kolajnöz bir yapıdır, yakın zamana kadar, minimal düz kas hücre içeriği olduğu düşünüldü2,3. Son çalışmalar, ancak, düz kas hücreleri serviks daha büyük bir bolluk ve rol olabileceğini ileri sürmüşlerdir4,5. Serviks düz kas hücrelerinin bir gradyan sergiler. Internal os dış işletim sistemi sadece% 10 içeren% 50-60 düz kas hücreleri içerir. Fare çalışmaları, ancak, serviks rapor oluşur 10-15% düz kas hücreleri ve 85-90% fibröz bağ dokusu bölgesel farklılıklar hiçbir söz ile6,7,8. Fare modelinin sık bildirilen insan modelinden farklı olduğu göz önüne alındığında, fare serviksi ile ilgili daha fazla araştırma yapılması gerekmektedir.
Bu protokolün amacı, murine vajina ve serviksin mekanik özelliklerini açıklamaktı. Bu, doğal hücre-matris etkileşimlerini ve organ geometrisini korurken aynı anda çevresel ve eksenel yönlerdemekanik özelliklerin değerlendirilmesini sağlayan bir basınçlı miyograf cihazı kullanılarak gerçekleştirilmiştir. Organlar iki özel kanülüzerine monte edildi ve ipek 6-0 dikişile güvence altına alındı. Basınç çapı testleri uyum ve teğet modüler9belirlemek için tahmini fizyolojik eksenel streç etrafında yapılmıştır. Kuvvet uzunluğu testleri tahmini eksenel streç onaylamak ve mekanik özellikleri fizyolojik aralığında ölçüldü sağlamak için yapılmıştır. Deneysel protokol 4-6 aylık estrus’ta gebe olmayan murine vajina ve serviks üzerinde uygulandı.
Protokol iki ana mekanik test bölümüne ayrılmıştır: bazal ton ve pasif test. Bazal tonu düz kas hücrelerinin temel kısmi daralması olarak tanımlanır, dış lokal yokluklarda bile, hormonal, ve nöral stimülasyon10. Vajina ve serviksin bu temel kontraktil yapısı, daha sonra basınç miyograf sistemi ile ölçülen karakteristik mekanik davranışlar verir. Pasif özellikleri daralma temel durumunu koruyan hücreler arası kalsiyum kaldırarak değerlendirilir, düz kas hücrelerinin gevşemesi ile sonuçlanan. Pasif durumda, kollajen ve elastin lifleri organların mekanik özellikleri için baskın katkılar sağlar.
Murine modeli kadınların üreme sağlığıpatolojileri üzerinde yoğun olarak kullanılmaktadır. Fare üreme sistemi11,12,13,14içinde ECM ve mekanik özellikleri arasında gelişen ilişkileri ölçmek için çeşitli avantajlar sunuyor. Bu avantajlar kısa ve iyi karakterize ester döngüleri, nispeten düşük maliyet, kullanım kolaylığı ve nispeten kısa gebelik süresi15içerir. Ayrıca, laboratuvar farelerin genomu iyi eşlenmiş ve genetiği değiştirilmiş fareler mekanistik hipotezler16,17,18test etmek için değerli araçlardır.
Ticari olarak mevcut basınçlı miyograf sistemleri çeşitli doku ve organların mekanik tepkilerini ölçmek için yaygın olarak kullanılmaktadır. Basınç miyograf sistemi üzerinde analiz bazı önemli yapılar elastik arterler dahil19,20,21,22, damarlar ve doku mühendislik vasküler greftler23,24, yemek borusu25, ve kalın bağırsak26. Basınç miyograf teknolojisi eksenel ve çevresel yönlerdeki özelliklerin eşzamanlı olarak değerlendirilmesini sağlarken, yerli hücre-ECM etkileşimlerini ve in vivo geometrisini korur. Yumuşak doku ve organ mekaniğinde miyograf sistemlerinin yaygın kullanımına rağmen, basınç miyografsı teknolojisini kullanan bir protokol daha önce vajina ve serviks için geliştirilmemiştir. Vajina ve serviksmekanik özellikleri önceki araştırmalar uniaksiyel27,28değerlendirildi . Bu organlar, ancak, vücut içinde multiaksiyel yükleme deneyimi29,30, böylece biaksiyel mekanik tepki niceliksel önemlidir.
Ayrıca, son çalışmalar düz kas hücreleri yumuşak doku patolojileripotansiyelbir rol oynayabilir düşündürmektedir 5,28,31,32. Bu, doğal hücre-matris etkileşimlerini koruduğu için basınç miyograf teknolojisini kullanmanın başka bir çekiciliği sağlar, böylece düz kas hücrelerinin fizyolojik ve patofizyolojik olarak oynadığı katkının belirtilmesine izin verir. Koşul -ları. Burada, vajina ve serviksin çok eksenli mekanik özelliklerini hem bazal ton hem de pasif koşullar altında ölçmek için bir protokol öneriyoruz.
Protocol
Representative Results
Discussion
Bu makalede verilen protokol, murine vajina ve serviksin mekanik özelliklerini belirlemek için bir yöntem sunmaktadır. Bu protokolde analiz edilen mekanik özellikler, organların hem pasif hem de bazal ton koşullarını içerir. Pasif ve bazal ton koşulları, organın sular altında kaldığı biyokimyasal ortamın değiştirilmesiyle indüklenir. Bu protokol için bazal testlerde yer alan ortam kalsiyum içerir. Bazal ton durumunutest kadın üreme organları içinde düz kas hücresi mekanik katkı izolasyon sa?…
Declarações
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Çalışma NSF CAREER ödül hibe #1751050 tarafından finanse edilmiştir.
Materials
| 2F catheter | Millar | SPR-320 | catheter to measure cervical pressure |
| 6-0 Suture | Fine Science Tools | 18020-60 | larger suture ties |
| CaCl2 (anhydrous) | VWR | 97062-590 | HBSS concentration: 140 mg/ mL |
| CaCl2-2H20 | Fischer chemical | BDH9224-1KG | KRB concentration: 3.68 g/L |
| Dextrose (D-glucose) | VWR | 101172-434 | HBSS concentration: 1000 mg/mL KRB concentration: 19.8 g/L |
| Dumont #5/45 Forceps | Fine Science Tools | 11251-35 | curved forceps |
| Dumont SS Forceps | Fine Science Tools | 11203-25 | straight forceps |
| Eclipse | Nikon | E200 | microscope used for imaging |
| Flow meter | Danish MyoTechnologies | 161FM | flow meter within the testing apparatus |
| Force Transducer – 110P | Danish MyoTechnologies | 100079 | force transducer |
| ImageJ | SciJava | ImageJ1 | used to measure volume |
| Instrument Cases | Fine Science Tools | 20830-00 | casing to hold dissection tools |
| KCl | Fisher Chemical | 97061-566 | HBSS concentration: 400 mg/ mL KRB concentration: 3.5 g/L |
| KH2PO4 | G-Biosciences | 71003-454 | HBSS concentration: 60 mg/ mL |
| MgCl2 | VWR | 97064-150 | KRB concentration: 1.14 g/L |
| MgCl2-6H2O | VWR | BDH9244-500G | HBSS concentration: 100 mg/ mL |
| MgSO4-7H20 | VWR | 97062-134 | HBSS concentration: 48 mg/ mL |
| Mircosoft excel | Microsoft | 6278402 | program used for spreadsheet |
| Na2HPO4 (dibasic anhydrous) | VWR | 97061-588 | HBSS concentration: 48 mg/mL KRB concentration: 1.44 g/L |
| NaCl | VWR | 97061-274 | HBSS concentration: 8000 mg/mL KRB concentration: 70.1 g/L |
| NaHCO3 | VWR | 97062-460 | HBSS concentration: 350 mg/ mL KRB concentration: 21.0 g/L |
| Pressure myograph systems | Danish MyoTechnologies | 110P and 120CP | Pressure myograph system: prorgram, cannulation device, and controller unit |
| Pressure Transducer | Danish MyoTechnologies | 100106 | pressure transducer |
| Student Dumont #5 Forceps | Fine Science Tools | 91150-20 | straight forceps |
| Student Vannas Spring Scissors | Fine Science Tools | 91500-09 | micro-scissors |
| Tissue dye | Bradley Products | 1101-3 | ink to measure in vivo stretch |
| Ultrasound transducer | FujiFilm Visual Sonics | LZ-550 | ultrasound transducer used; 256 elements, 40 MHz center frequency |
| VEVO2100 | FujiFilm Visual Sonics | VS-20035 | ultrasound used for imaging |
| Wagner Scissors | Fine Science Tools | 14069-12 | larger scissors |
Referências
- Capone, D., et al. Evaluating Residual Strain Throughout the Murine Female Reproductive System. Journal of Biomechanics. 82, 299-306 (2019).
- Danforth, D. The fibrous nature of the human cervix, and its relation to the isthmic segment in gravid and nongravid uteri. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 53 (4), 541-560 (1947).
- Hughesdon, P. The fibromuscular structure of the cervix and its changes during pregnancy and labour. Journal of Obstetrics and Gynecology of the British Commonwealth. 59, 763-776 (1952).
- Bryman, I., Norstrom, A., Lindblo, B. Influence of neurohypophyseal hormones on human cervical smooth muscle cell contractility in vitro. Obstetrics and Gynecology. 75 (2), 240-243 (1990).
- Joy, V., et al. A New Paradigm for the Role of Smooth Muscle Cells in the Human Cervix. Obstetrics. 215 (4), e471-e478 (2016).
- Xu, X., Akgul, Y., Mahendroo, M., Jerschow, A. Ex vivo assessment of mouse cervical remodeling through pregnancy via Na (23) MRS. NMR Biomedical. 23 (23), 907-912 (2014).
- Leppert, P. Anatomy and Physiology of cervical ripening. Clinical Obstetrics and Gynecology. 43 (43), 433-439 (2000).
- Schlembach, D., et al. Cervical ripening and insufficiency: from biochemical and molecular studies to in vivo clinical examination. European Journal of Obstetrics, Gynecology, and Reproductive Biology. 144, S70-S79 (2000).
- Stoka, K., et al. Effects of Increased Arterial Stiffiness on Atherosclerotic Plaque Amounts. Journal of Biomechanical Engineering. 140 (5), (2018).
- Mohram, D., Heller, L. Ch. 7. Cardiovascular Physiology. , (2006).
- Yoshida, K., et al. Quantitative Evaluation of Collagen Crosslinks and Corresponding Tensile Mechanical Properties in Mouse Cervical Tissue during Normal Pregnancy. PLoS One. 9, e112391 (2014).
- Mahendroo, M. Cervical remodeling in term and preterm birth: insight from an animal model. Society for Reproduction and Fertility. 143 (4), 429-438 (2012).
- Elovitz, M., Miranlini, C. Can medroxyprogesterone acetate alter Toll-like receptor expression in a mouse model of intrauterine inflammation?. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 193 (3), 1149-1155 (2005).
- Ripperda, C., et al. Vaginal estrogen: a dual-edged sword in postoperative healing of the vaginal wall. North American Menopause Society. 24 (7), 838-849 (2017).
- Nelson, J., Felicio, P., Randall, K., Sims, C., Finch, E. A Longitudinal Study of Estrous Cyclicity in Aging C57/6J Mice: Cycle, Frequency, Length, and Vaginal Cytology. Biology of Reproduction. 27 (2), 327-339 (1982).
- Ferruzzi, J., Collins, M., Yeh, A., Humphrey, J. Mechanical assessment of elastin integrity in fibrillin-1-deficient carotid arteries: implications for Marfan Syndrome. Cardiovascular Research. 92 (2), 287-295 (2011).
- Mariko, B., et al. Fribrillin-1 genetic deficiency leads to pathological ageing of arteries in mice. The Journal of Pathology. 224 (1), 33-44 (2011).
- Rahn, D., Ruff, M., Brown, S., Tibbals, H., Word, R. Biomechanical Properties of The Vaginal Wall: Effect of Pregnancy, Elastic Fiber Deficiency, and Pelvic Organ Prolapse. American Urogynecological Society. 198 (5), (2009).
- Caulk, A., Nepiyushchikh, Z., Shaw, R., Dixon, B., Gleason, R. Quantification of the passive and active biaxial mechanical behavior and microstructural organization of rat thoracic ducts. Royal Society Interface. 12 (108), 20150280 (2015).
- Amin, M., Le, V., Wagenseil, J. Mechanical Testing of Mouse Carotid Arteries: from Newborn to Adult. Journal of Visualized Experiments. (60), e3733 (2012).
- Sokolis, D., Sassani, S., Kritharis, E., Tsangaris, S. Differential histomechanical response of carotid artery in relation to species and region: mathematical description accounting for elastin and collagen anisiotropy. Medical and Biological Engineering and Computing. 49 (8), 867-879 (2011).
- Kim, J., Baek, S. Circumferential variations of the mechanical behavior of the porcine thoracic aorta during the inflation test. Journal of Biomechanics. 44 (10), 1941-1947 (2011).
- Faury, G., et al. Developmental adaptation of the mouse cardiovascular system to elastin haploinsufficency. Journal of Clinical Investigation. 11 (9), 1419-1428 (2003).
- Naito, Y., et al. Beyond Burst Pressure: Initial Evaluation of the Natural History of the Biaxial Mechanical Properties of Tissue-Engineered Vascular Grafts in the Venous Circulation Using a Murine Model. Tissue Engineering. 20, 346-355 (2014).
- Sommer, G., et al. Multaxial mechanical response and constitutive modeling of esophageal tissues: Impact on esophageal tissue engineering. Acta Biomaterialia. 9 (12), 9379-9391 (2013).
- Sokolis, D., Orfanidis, I., Peroulis, M. Biomechanical testing and material characterization for the rat large intestine: regional dependence of material parameters. Physiological Measurement. 32 (12), 1969-1982 (2011).
- Martins, P., et al. Prediction of Nonlinear Elastic Behavior of Vaginal Tissue: Experimental Results and Model Formation. Computational Methods of Biomechanics and Biomedical Engineering. 13 (3), 317-337 (2010).
- Feola, A., et al. Deterioration in Biomechanical Properties of the Vagina Following Implantation of a High-stiffness Prolapse Mesh. BJOG: An International Journal of Obstetrics and Gynaecology. 120 (2), 224-232 (2012).
- Huntington, A., Rizzuto, E., Abramowitch, S., Prete, Z., De Vita, R. Anisotropy of the Passive and Active Rat Vagina Under Biaxial Loading. Annals of Biomedical Engineering. 47, 272-281 (2018).
- Tokar, S., Feola, A., Moalli, P., Abramowitch, S. Characterizing the Biaxial Mechanical Properties of Vaginal Maternal Adaptations During Pregnancy. ASME 2010 Summer Bioengineering Conference, Parts A and B. , 689-690 (2010).
- Feloa, A., et al. Impact of Pregnancy and Vaginal Delivery on the Passive and Active Mechanics of the Rat Vagina. Annals of Biomedical Engineering. 39 (1), 549-558 (2010).
- Baah-Dwomoh, A., Alperin, M., Cook, M., De Vita, R. Mechanical Analysis of the Uterosacral Ligament: Swine vs Human. Annual Biomedical Engineering. 46 (12), 2036-2047 (2018).
- Champlin, A. Determining the Stage of the Estrous Cycle in the Mouse by the Appearance. Biology of Reproduction. 8 (4), 491-494 (1973).
- Byers, S., Wiles, M., Dunn, S., Taft, R. Mouse Estrous Cycle Identification Tool and Images. PLoS One. 7 (4), e35538 (2012).
- McLean, A. Performing Vaginal Lavage, Crystal Violet Staining and Vaginal Cytological Evaluation for Mouse Estrous Cycle Staging Identification. Journal of Visualized Experiments. 67, e4389 (2012).
- Bugg, G., Riley, M., Johnston, T., Baker, P., Taggart, M. Hypoxic inhibition of human myometrial contractions in vitro: implications for the regulation of parturition. European Journal of Clinical Investigation. 36 (2), 133-140 (2006).
- Taggart, M., Wray, S. Hypoxia and smooth muscle function: key regulatory events during metabolic stress. Journal of Physiology. 509, 315-325 (1998).
- Yoo, K., et al. The effects of volatile anesthetics on spontaneous contractility of isolated human pregnant uterine muscle: a comparison among sevoflurane, desflurane, isoflurane, and halothane. Anesthesia and Analgesia. 103 (2), 443-447 (2006).
- de Souza, L., et al. Effects of redox disturbances on intentional contractile reactivity in rats fed with a hypercaloric diet. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. , 6364821 (2018).
- Jaue, D., Ma, Z., Lee, S. Cardiac muscarinic receptor function in rats with cirrhotic cardiomyopathy. Hepatology. 25, 1361-1365 (1997).
- Xu, Q., Shaffer, E. The potential site of impaired gallbladder contractility in an animal mode of cholesterol gallstone disease. Gastroenterology. 110 (1), 251-257 (1996).
- Rodriguez, U., et al. Effects of blast induced Neurotrauma on pressurized rodent middle cerebral arteries. Journal of Visualized Experimentals. (146), e58792 (2019).
- Rubod, C., Boukerrou, M., Brieu, M., Dubois, P., Cosson, M. Biomechanical Properties of Vaginal Tissue Part 1: New Experimental Protocol. Journal of Urology. 178, 320-325 (2007).
- Robison, K., Conway, C., Desrosiers, L., Knoepp, L., Miller, K. Biaxial Mechanical Assessment of the Murine Vaginal Wall Using Extension-Inflation Testing. Journal of Biomechanical Engineering. 139 (10), 104504 (2017).
- Van loon, P. Length-Force and Volume-Pressure Relationships of Arteries. Biorheology. 14 (4), 181-201 (1977).
- Fernandez, M., et al. Investigating the Mechanical Function of the Cervix During Pregnancy using Finite Element Models Derived from High Resolution 3D MRI. Computational Methods Biomechanical and Biomedical Engineering. 19 (4), 404-417 (2015).
- House, M., Socrate, S. The Cervix as a Biomechanical Structure. Ultrasound Obstetric Gynecology. 28 (6), 745-749 (2006).
- Martins, P., et al. Biomechanical Properties of Vaginal Tissue in Women with Pelvic Organ Prolapse. Gynecologic and Obstetrics Investigation. 75, 85-92 (2013).
- Rada, C., Pierce, S., Grotegut, C., England, S. Intrauterine Telemetry to Measure Mouse Contractile Pressure In vivo. Journal of Visualized Experiments. (98), e52541 (2015).
- Lumsden, M. A., Baird, D. T. Intra-uterine pressure in dysmenorrhea. Acta Obstectricia at Gynecologica Scandinavica. 64 (2), 183-186 (1985).
- Milsom, I., Andersch, B., Sundell, G. The Effect of Flurbiprofen and Naproxen Sodium On Intra-Uterine Pressure and Menstrual Pain in Patients With Primary Dysmennorrhea. Acta Obstetricia et Gynecologica Scandinavica. 67 (8), 711-716 (1988).
- Park, K., et al. Vasculogenic female sexual dysfunction: the hemodynamic basis for vaginal engorgement insufficiency and clitoral erectile insufficiency. International Journal of Impotence Journal. 9 (1), 27-37 (1997).
- Bulletti, C., et al. Uterine Contractility During Menstrual Cycle. Human Reproduction. 15, 81-89 (2000).
- Kim, N. N., et al. Effects of Ovariectomy and Steroid Hormones on Vaginal Smooth Muscle Contractility. International Journal of Impotence Research. 16, 43-50 (2004).
- Giraldi, A., et al. Morphological and Functional Characterization of a Rat Vaginal Smooth Muscle Sphincter. International Journal of Impotence Research. 14, 271-282 (2002).
- Gleason, R., Gray, S. P., Wilson, E., Humphrey, J. A Multiaxial Computer-Controlled Organ Culture and Biomechanical Device for Mouse Carotid Arteries. Journal of Biomechanical Engineering. 126 (6), 787-795 (2005).
- Swartz, M., Tscumperlin, D., Kamm, R., Drazen, J. Mechanical Stress is Communicated Between Different Cell Types to Elicit Matrix Remodeling. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 98 (11), 6180-6185 (2001).
- Rachev, A. Remodeling of Arteries in Response to Changes in their Mechanical Environment. Biomechanics of Soft Tissue in Cardiovascular Systems. 441, 221-271 (2003).
- Lee, E. J., Holmes, J., Costa, K. Remodeling of Engineered Tissue Anisotropy in Response to Altered Loading Conditions. Annals of Biomedical Engineering. 36 (8), 1322-1334 (2008).
- Akintunde, A., et al. Effects of Elastase Digestion on the Murine Vaginal Wall Biaxial Mechanical Response. Journal of Biomechanical Engineering. 141 (2), 021011 (2018).
- Griffin, M., Premakumar, Y., Seifalian, A., Butler, P., Szarko, M. Biomechanical Characterization of Human Soft Tissues Using Indentation and Tensile Testing. Journal of Visualized Experiments. (118), e54872 (2016).
- Myers, K., Socrate, S., Paskaleva, A., House, M. A Study of the Anisotripy and Tension/Compression Behavior of Human Cervical Tissue. Journal of Biomechanical Engineering. 132 (2), 021003 (2010).
- Murtada, S., Ferruzzi, J., Yanagisawa, H., Humphrey, J. Reduced Biaxial Contractility in the Descending Thoracic Aorta of Fibulin-5 Deficent Mice. Journal of Biomechanical Engineering. 138 (5), 051008 (2016).
- Berkley, K., McAllister, S., Accius, B., Winnard, K. Endometriosis-induced vaginal hyperalgesia in the rat: effect of estropause, ovariectomy, and estradiol replacement. Pain. 132, s150-s159 (2007).
- van der Walt, I., Bø, K., Hanekom, S., Rienhardt, G. Ethnic Differences in pelvic floor muscle strength and endurance in South African women. International Urogynecology Journal. 25 (6), 799-805 (2014).
