Summary

从新鲜冷冻的小鼠骨骼中产生高质量RNA的激光捕获微解剖协议

Published: September 16, 2019
doi:

Summary

开发了激光捕获微分体(LCM)协议,以获得足够数量的高质量RNA,用于骨细胞的基因表达分析。目前的研究集中在小鼠股骨部分。然而,这里报道的LCM协议可用于研究任何硬组织细胞的基因表达。

Abstract

RNA的产生和完整性对RNA分析起决定性作用。然而,在整个激光捕获微解剖(LCM)过程中,保持RNA完整性往往在技术上具有挑战性。由于LCM研究对低含量材料起作用,因此对RNA产量有限的担忧也很重要。因此,开发了一种LCM协议,以获得足够数量的高质量RNA,用于骨细胞的基因表达分析。评估了染色方案、冷冻切片厚度、微解剖组织数量、RNA提取试剂盒和LCM系统对从微解剖骨细胞中获得的RNA产量和完整性的影响。八微米厚的冷冻骨部分使用胶膜制成,并使用商业LCM染色的快速协议进行染色。样品夹在聚乙烯对苯二甲酸酯(PET)膜和粘合膜之间。利用重力采集样品和基于柱的RNA提取方法获得足够产量的高质量RNA的LCM系统。目前的研究集中在小鼠股骨部分。然而,这里报道的LCM协议可用于研究任何硬组织细胞在生理条件和疾病过程中的原位基因表达。

Introduction

组织由异构和空间分布的细胞类型组成。给定组织中的不同细胞类型对同一信号的反应可能不同。因此,能够分离特定的细胞群,以评估不同细胞类型在生理和病理条件下的作用是至关重要的。激光捕获微解剖(LCM)提供了一种相对快速和精确的方法,用于从复杂组织1中分离和去除指定的细胞。LCM 系统使用激光束的力量将感兴趣的细胞与组织组织部分分离,而无需酶处理或培养生长。这意味着细胞处于其自然组织栖息地,并且组织架构,包括不同细胞之间的空间关系被保留。捕获的细胞和残余组织的形态保存完好,可以从同一张幻灯片按顺序取样几个组织成分。分离的细胞随后可用于对其RNA、DNA、蛋白质或代谢物含量2、3的后续分析。

为了分析不同细胞群的基因表达,或经过不同的处理,有必要获得足够质量和数量的mRNA,以便随后的分析4,5。与DNA相比,RNA对固定更敏感,当目标是研究RNA时,建议使用冷冻组织。由于 mRNA 因无处不在的核糖核酸酶 (RNase) 而迅速降解,因此在试样处理和制备过程中需要严格的无RNase条件,并避免在室温下储存样品。此外,快速技术没有任何长时间的水相步骤是至关重要的,以防止RNA降解6。RNA的产生和完整性也会受到LCM过程和LCM系统使用7,8的影响。目前,有4个不同操作原理的LCM系统可供2。RNA提取方法也很重要,因为不同的RNA分离试剂盒已经过测试,RNA数量和质量有显著差异,7,8。

任何组织制备方法都需要在获得良好的形态对比和保持RNA完整性之间找到平衡,以便进行进一步分析。为了从骨头中制备冷冻部分,开发了一个粘合膜,并持续改进了9。骨部分被切割并直接在粘结膜上染色。这种胶膜适用于多种染色类型,并可用于使用LCM9、10、11、12、13分离感兴趣的细胞和骨低温细胞。 14.所有步骤,包括手术切除,嵌入,冻结,切割和染色可以在不到一小时的时间内完成。重要的是,细胞,如成骨细胞,骨衬里细胞,和成骨细胞可以清楚地识别9,10,11,12,13,14。该方法具有快速简便的优点。生成骨骼冷冻节的另一种方法是使用磁带传输系统15。然而,后一种技术更耗时,需要额外的仪器,因为部分必须通过紫外线(UV)交联将部分从胶带转移到预涂膜幻灯片上。虽然磁带传输系统已成功与 LCM16、17、18、19结合,但需要注意的是,交联涂层可以创建背景模式,可以干扰细胞类型识别20。

通常,只有少量的RNA从微解剖细胞中提取,RNA的质量和数量通常通过微毛细血管电泳21来评估。计算机程序用于为称为RNA完整性数(RIN)的RNA提取物分配质量指数。RIN值1.0表示完全退化的RNA,而值10.0表示RNA完全完好22。通常,超过5的索引被认为足以用于RNA研究。据报道,RIN值为5.0±10.0的样本中的基因表达模式相互关联良好23。虽然这种方法的灵敏度很高,但由于仅能检测到总RNA的50 pg/μL,但如果样品中的RNA浓度非常低,则很难获得质量评估。因此,为了评估RNA的质量,LCM后剩余的组织部分常被用来提取RNA,通过移液缓冲液移至幻灯片24。

虽然LCM已广泛用于不同的冷冻组织,但提取RNA的RIN值很少报告。此外,没有比较研究来阐明研究小鼠骨骼RNA的最适当方法。在本研究中,使用成年小鼠股骨的冷冻部分优化样品制备、LCM协议和RNA提取,以获得高质量的RNA。本协议特别针对使用重力采集样品的LCM系统进行了优化。

Protocol

严格按照现行的动物护理指南使用小鼠的骨组织,并竭尽全力将动物的痛苦降到最低。 1. 动物和冷冻嵌入 室内动物在恒定室温(RT;24°C)和12小时光/12小时暗循环条件下,可免费获得食物和水。注:本研究中的骨组织取自3个月大的雄性野生型C57BL/6小鼠。 在尸检时,在一般麻醉下从腹腔中分离小鼠(氯胺酮/西拉辛,100/6毫克/千克腹腔内)。<s…

Representative Results

开发了一种LCM协议,以获得足够数量的高质量RNA,用于小鼠股骨细胞的基因表达分析。在优化的协议中,8 μm厚的冷冻骨部分被切割在粘结膜上,并使用商业LCM冷冻截面染色的快速协议进行染色。样品夹在PET膜和粘合膜之间。小鼠骨细胞使用使用重力采集样品的LCM系统进行微解剖。采用基于柱的RNA提取方法获得足够产量的高质量RNA。使用微毛细血管电泳测量了分离RNA的产量和完整性(<strong class="xf…

Discussion

RNA质量和数量在样品制备的所有阶段(如组织操作、LCM 过程和RNA提取)都会受到负面影响。因此,开发了LCM协议,以获得足够数量的高质量RNA,用于后续的基因表达分析。

对于LCM,大多数实验室使用7~8微米厚的2节。较厚的部分将允许收获更多的材料。然而,如果它们太厚,这可能会降低显微分辨率,激光可能无法穿过。最佳组织厚度可能取决于所使用的LCM系统(以?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

作者感谢乌特·泽茨和尼科尔·金纳的出色技术支持,以及Vetcore和动物护理人员的支持。

Materials

2-Mercaptoethanol Sigma 63689-25ML-F
Absolute ethanol EMPLURA Merck Millipore 8,18,76,01,000
Adhesive film (LMD film) Section-Lab C-FL001
Agilent 2100 Bioanalyzer System Agilent Technologies
Agilent RNA 6000 Pico Chip Kit Agilent Technologies 5067-1513
Arcturus HistoGene Staining Solution Applied Biosystems 12241-05
Cryofilm fitting tool Section-Lab C-FT000
Cryostat Leica CM 1950 Leica Biosystems
glass microscope slides, cut colour frosted orange VWR Life Science 631-1559
Histology tissue molds PVC MEDITE 48-6302-00
LMD7 Laser Mikrodissektion System Leica Microsystems
Low profile Microtome Blades Leica DB80 XL Leica Biosystems 14035843496
Nuclease-free water VWR Life Science E476-500ML
PET membrane slides 1.4 mircon Molecular Machines & Industries GmbH 50102
RNase Away surface decontaminant Molecular BioProduct 7002
RNeasy Micro Kit Qiagen 74004
Tissue-Tek optimal cutting temperature (OCT) compound Sakura Finetek 4583
Xylene VWR Life Science 2,89,73,363

Referências

  1. Emmert-Buck, M. R., et al. Laser capture microdissection. Science. 274 (5289), 998-1001 (1996).
  2. Legres, L. G., Janin, A., Masselon, C., Bertheau, P. Beyond laser microdissection technology: follow the yellow brick road for cancer research. American journal of Cancer Research. 4 (1), 1-28 (2014).
  3. Datta, S., et al. Laser capture microdissection: Big data from small samples. Histology and histopathology. 30 (11), 1255-1269 (2015).
  4. Kerman, I. A., Buck, B. J., Evans, S. J., Akil, H., Watson, S. J. Combining laser capture microdissection with quantitative real-time PCR: effects of tissue manipulation on RNA quality and gene expression. Journal of Neuroscience Methods. 153 (1), 71-85 (2006).
  5. Adiconis, X., et al. Comparative analysis of RNA sequencing methods for degraded or low-input samples. Nature Methods. 10 (7), 623-629 (2013).
  6. Golubeva, Y. G., Warner, A. C. Laser Microdissection Workflow for Isolating Nucleic Acids from Fixed and Frozen Tissue Samples. Methods in Molecular Biology (Clifton, N.J.). 1723, 33-93 (2018).
  7. Farris, S., Wang, Y., Ward, J. M., Dudek, S. M. Optimized Method for Robust Transcriptome Profiling of Minute Tissues Using Laser Capture Microdissection and Low-Input RNA-Seq. Frontiers in Molecular Neuroscience. 10, 185 (2017).
  8. Garrido-Gil, P., Fernandez-Rodríguez, P., Rodríguez-Pallares, J., Labandeira-Garcia, J. L. Laser capture microdissection protocol for gene expression analysis in the brain. Histochemistry and Cell Biology. 148 (3), 299-311 (2017).
  9. Kawamoto, T., Kawamoto, K. Preparation of thin frozen sections from nonfixed and undecalcified hard tissues using Kawamot’s film method. Methods in Molecular Biology (Clifton, N.J.). 1130, 149-164 (2014).
  10. Streicher, C., et al. Estrogen Regulates Bone Turnover by Targeting RANKL Expression in Bone Lining Cells. Scientific Reports. 7 (1), 6460 (2017).
  11. Vaidya, M., et al. Osteoblast-specific overexpression of amphiregulin leads to transient increase in femoral cancellous bone mass in mice. Bone. 81, 36-46 (2015).
  12. Jay, F. F., et al. Amphiregulin lacks an essential role for the bone anabolic action of parathyroid hormone. Molecular and Cellular Endocrinology. 417, 158-165 (2015).
  13. Murali, S. K., Andrukhova, O., Clinkenbeard, E. L., White, K. E., Erben, R. G. Excessive Osteocytic Fgf23 Secretion Contributes to Pyrophosphate Accumulation and Mineralization Defect in Hyp Mice. PLoS Biology. 14 (4), e1002427 (2016).
  14. Andrukhova, O., Schüler, C., Bergow, C., Petric, A., Erben, R. G. Augmented Fibroblast Growth Factor-23 Secretion in Bone Locally Contributes to Impaired Bone Mineralization in Chronic Kidney Disease in Mice. Frontiers in Endocrinology. 9, 311 (2018).
  15. Golubeva, Y. G., Smith, R. M., Sternberg, L. R. Optimizing Frozen Sample Preparation for Laser Microdissection: Assessment of CryoJane Tape-Transfer System®. PLoS ONE. 8 (6), e66854 (2013).
  16. Pacheco, E., Hu, R., Taylor, S. Laser Capture Microdissection and Transcriptional Analysis of Sub-Populations of the Osteoblast Lineage from Undecalcified Bone. Methods in Molecular Biology (Clifton, N.J.). 1723, 191-202 (2018).
  17. Nioi, P., et al. Transcriptional Profiling of Laser Capture Microdissected Subpopulations of the Osteoblast Lineage Provides Insight Into the Early Response to Sclerostin Antibody in Rats. Journal of Bone and Mineral Research. 30 (8), 1457-1467 (2015).
  18. Taylor, S., et al. Differential time-dependent transcriptional changes in the osteoblast lineage in cortical bone associated with sclerostin antibody treatment in ovariectomized rats. Bone Reports. 8, 95-103 (2018).
  19. Taylor, S., et al. Time-dependent cellular and transcriptional changes in the osteoblast lineage associated with sclerostin antibody treatment in ovariectomized rats. Bone. 84, 148-159 (2016).
  20. Martin, L. B. B., et al. Laser microdissection of tomato fruit cell and tissue types for transcriptome profiling. Nature Protocols. 11 (12), 2376-2388 (2016).
  21. Imbeaud, S., et al. Towards standardization of RNA quality assessment using user-independent classifiers of microcapillary electrophoresis traces. Nucleic Acids Research. 33 (6), e56 (2005).
  22. Schroeder, A., et al. The RIN: an RNA integrity number for assigning integrity values to RNA measurements. BMC Molecular Biology. 7, 3 (2006).
  23. Gallego Romero, I., Pai, A. A., Tung, J., Gilad, Y. RNA-seq: impact of RNA degradation on transcript quantification. BMC Biology. 12, 42 (2014).
  24. Bevilacqua, C., Makhzami, S., Helbling, J. C., Defrenaix, P., Martin, P. Maintaining RNA integrity in a homogeneous population of mammary epithelial cells isolated by Laser Capture Microdissection. BMC Cell Biology. 11, 95 (2010).
  25. Mahalingam, M., Murray, G. I. Laser Capture Microdissection: Insights into Methods and Applications. Laser Capture Microdissection: Methods and Protocols. , 1-17 (2018).
  26. Burgemeister, R., Gangnus, R., Haar, B., Schütze, K., Sauer, U. High quality RNA retrieved from samples obtained by using LMPC (laser microdissection and pressure catapulting) technology. Pathology, Research and Practice. 199 (6), 431-436 (2003).
  27. Cummings, M., et al. A robust RNA integrity-preserving staining protocol for laser capture microdissection of endometrial cancer tissue. Analytical Biochemistry. 416 (1), 123-125 (2011).
  28. Clément-Ziza, M., Munnich, A., Lyonnet, S., Jaubert, F., Besmond, C. Stabilization of RNA during laser capture microdissection by performing experiments under argon atmosphere or using ethanol as a solvent in staining solutions. RNA. 14 (12), 2698-2704 (2008).
  29. Kölble, K. The LEICA microdissection system: design and applications. Journal of Molecular Medicine. 78 (7), B24-B25 (2000).
  30. Böhm, M., Wieland, I., Schütze, K., Rübben, H. Microbeam MOMeNT: non-contact laser microdissection of membrane-mounted native tissue. The American Journal of Pathology. 151 (1), 63-67 (1997).
  31. Micke, P., et al. A fluid cover medium provides superior morphology and preserves RNA integrity in tissue sections for laser microdissection and pressure catapulting. The Journal of Pathology. 202 (1), 130-138 (2004).
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Citar este artigo
Marek, A., Schüler, C., Satué, M., Haigl, B., Erben, R. G. A Laser Capture Microdissection Protocol That Yields High Quality RNA from Fresh-frozen Mouse Bones. J. Vis. Exp. (151), e60197, doi:10.3791/60197 (2019).

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