Summary

Påvisning af kræft i æggestokkene ved hjælp af foto akustisk flow cytometri

Published: January 17, 2020
doi:

Summary

En protokol præsenteres for at detektere cirkulerende ovarie tumorceller udnytter en skræddersyet foto akustisk flow system og målrettede folinsyre-udjævnede kobber sulfid nanopartikler.

Abstract

Mange undersøgelser tyder på, at opregning af cirkulerende tumorceller (CTCs) kan vise løfte som en prognose værktøj for kræft i æggestokkene. De nuværende strategier til påvisning af ctc’er omfatter flowcytometri, mikrofluidisk-enheder og realtids polymerasekædereaktion (RT-PCR). På trods af de seneste fremskridt, metoder til påvisning af tidlig ovariecancer metastase stadig mangler følsomhed og specificitet kræves for klinisk oversættelse. Her præsenteres en ny metode til påvisning af ovarie cirkulerende tumorceller ved hjælp af photoacoustic flow flowcytometri (pafc), der udnytter en brugerdefineret tredimensionel (3D) trykt system, herunder et flow kammer og sprøjtepumpe. Denne metode udnytter folinsyre-udjævnede kobber sulfid nanopartikler (FA-CuS NPs) til at målrette SKOV-3 ovariecancerceller af PAFC. Dette arbejde viser affiniteten af disse kontrastmidler til kræftceller i æggestokkene. Resultaterne viser NP-karakterisering, PAFC-detektion og NP-optagelse ved Fluorescens mikroskopi, hvilket demonstrerer potentialet i dette nye system til påvisning af ovarie Ctc’er ved fysiologisk relevante koncentrationer.

Introduction

Kræft i æggestokkene er en af de dødeligste gynækologiske maligniteter og resulterede i en anslået 184.800 dødsfald på verdensplan i 20181. Flere undersøgelser har vist sammenhængen mellem ovariecancer progression (dvs. metastase) og tilstedeværelsen af ctcs2,3,4. Den mest almindeligt forekommende metode til påvisning og isolering af Ctc’er udnytter Cellsearch-systemet, som er rettet mod EpCam-receptoren5. EpCam udtryk, dog, er nedreguleret i epitelial til mesenchymal overgang, som har været impliceret i kræft metastaser6. Trods forskud, nuværende kliniske teknologier stadig lider af lav nøjagtighed, høje omkostninger, og kompleksitet. På grund af disse ulemper, nye teknologier til opdagelse og optælling af æggestokkene CTCs er blevet et vigtigt område for forskning.

For nylig opstod pafc som en effektiv metode til ikke-invasiv påvisning af kræftceller, analyse af nanomaterialer og identifikation af bakterier7,8,9. PAFC adskiller sig fra traditionel fluorescens flow cytometri ved at detektere analytter i flow ved at udnytte foto akustik. Den foto akustiske effekt genereres, når laserlys absorberes af et materiale, der forårsager termo elastisk ekspansion, producerer en akustisk bølge, der kan påvises ved en ultralyd transducer10,11. Fordele ved pafc over traditionelle flow cytometri metoder omfatter enkelhed, nem oversættelse til kliniske indstillinger, og påvisning af ctcs på hidtil uset dybder i patientprøver12,13. Nylige undersøgelser har udnyttet pafc systemer til påvisning af celler ved hjælp af endogene og eksogene kontrast14,15. I nærheden af infrarød (NIR) lysabsorberende kontrastmidler såsom indocyaningrøn farvestof og metal NPS (f. eks. guld og CuS) er blevet anvendt til selektiv mærkning af celler og væv i kombination med foto akustisk billeddannelse16,17,18. På grund af den forbedrede indtrængningsdybde af NIR-lys i biologisk væv kan foto akustisk detektion af absorbenter udføres ved større dybder til kliniske anvendelser. På grund af det store potentiale for brug i klinikken har kombinationen af målrettede NIR-kontrastmidler med PAFC skabt betydelig interesse for påvisning af Ctc’er.

PAFC i kombination med målrettede kontraststoffer giver en forbedret tilgang til analyse af patientprøver med høj gennemløb med forbedret nøjagtighed og målrettet påvisning af Ctc’er. En af de vigtigste detekterings strategier for Ctc’er er den specifikke målretning af membran proteiner, der findes på cellen af interesse. En bemærkelsesværdig egenskab ved æggestokkene CTCs er over ekspression af folatreceptorer placeret på deres ydre membran19. Folatreceptor målretning er en ideel strategi for identifikation af æggestokkene Ctc’er i blodet, fordi endogene celler, som har højere ekspression af folinsyre receptorer, generelt er luminale og har begrænset eksponering for blodbanen20. Kobber sulfid NPs (CuS NPs) er for nylig blevet anerkendt for deres evne til at målrette folatreceptorer udtrykt på kræftceller21. Kombineret med deres biokompatibilitet, lethed af syntese, og absorption dybt i NIR, disse NP kontrastmidler gøre en ideel målretning strategi for påvisning af æggestokkene CTCs udnytte PAFC.

Dette arbejde beskriver forberedelsen af FA-CuS NPs og deres anvendelse til påvisning af kræftceller i æggestokkene i et foto akustisk flow system. CuS NPs modificeres med folinsyre til specifikt at målrette ovarie Ctc’er og udsender et foto akustisk signal, når det stimuleres med en 1.053 nm-laser. Resultaterne viser den vellykkede påvisning af kræftceller i æggestokkene inkuberet med disse foto akustiske kontrastmidler i PAFC systemet. Disse resultater viser påvisning af kræftceller i æggestokkene ned til koncentrationer på 1 celle/μL, og Fluorescens mikroskopi bekræfter en vellykket optagelse af disse partikler af SKOV-3 ovariecancerceller22. Dette arbejde giver en detaljeret beskrivelse af FA-CuS NPs syntese, forberedelse af prøver til fluorescens mikroskopi, opførelse af det foto akustiske flow system, og den foto akustiske påvisning af æggestokkene cancerceller. Den præsenterede metode viser vellykket identifikation af æggestokkene CTCs i flow udnytte FA-CuS NPs. det fremtidige arbejde vil fokusere på den kliniske anvendelse af denne teknologi i retning af tidlig påvisning af ovariecancer metastaser.

Protocol

1. nanopartikel syntese og funktionalisering Bemærk: syntesen af FA-CuS-NPs opnås ved hjælp af en enkelt pulje syntesemetode, der er tilpasset fra en tidligere offentliggjort protokol21.Forsigtig: al syntese bør forekomme i en ventileret kemisk røg hætte. Før syntese filtreres ca. 300 mL deioniseret (DI) vand, dog med et 0,2 μm sterilt filter. Rengør en 250 mL glas rund bund kolbe med en vaskemiddel opløsning, og skyl med DI-vand. Der t…

Representative Results

Figur 1a viser et typisk tem billede af de syntetiserede nanopartikler. Den gennemsnitlige størrelse af den typiske nanopartikel er ca. 8,6 nm ± 2,5 nm. Nanopartikel måling blev udført i ImageJ. Der blev anvendt tærskel-og vandskule funktioner til at adskille partiklerne til måling. De horisontale og lodrette diametre af hver partikel blev målt vinkelret på hinanden og yderligere gennemsnit. For DLS er en repræsentativ måling vist i…

Discussion

Denne protokol er en enkel metode til påvisning af ovarie Ctc’er, der udnytter PAFC og et målrettet CuS-kontrastmiddel. Mange metoder er blevet udforsket til påvisning af æggestokkene ctcs, herunder mikrofluidisk enheder, RT-PCR, og fluorescens flow flowcytometri23,24,25. Disse spænder i kompleksitet, omkostninger og nøjagtighed, begrænser deres effektivitet i kliniske indstillinger. PAFC introducerer flere fordele i forh…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne vil gerne anerkende Madeleine Howell for hendes hjælp med syntese, Matthew Chest for hans hjælp til at designe flow systemet, og Ethan Marschall for at få hjælp til SolidWorks.

Materials

0.025% Trypsin With EDTA Corning 25-053-Cl
0.2 µm 1000 mL Vacuum Filtration Unit VWR 10040-440 For filtering larger volumes of DI water.
0.2 µm sterile syringe filter VWR 28145-477
3D Printed Tank Custom-made
Acquisition Card National Instruments PXIe-5170R 250 MS/s, 8-Channel, 14-bit
Alconox Sigma-Aldrich 242985-1.8KG Detergent used for cleaning glassware.
Amicon Ultra-15 Centrifugal Filters Millipore UFC903024
Amicon Ultra-4 Centrifugal Filters Millipore UFC803024
Bright-Line Hematocytometer Hausser Scientific 1492
Copper(II) Chloride ACROS ORGANICS 206532500
Coupling Objective Thorlabs LMH-10x-532 To couple pulsed light to optical fiber.
Coupling Stage Newport F-91-C1-T Stage for coupling pulsed light to objective. Holds FP-1A and LMH-10x-532
CPX Series Digital Ultrasonic Cleaning Bath Fisherbrand Model CPX3800
Data Acquisition software National Instruments NI LabVIEW 2017 (32-bit) LabVIEW used to synchronize laser pulses with data acquisition.
Data Processing Software Mathworks Matlab R2016a Reconstructions and graphs produced using Matlab software.
FBS Sigma-Aldrich F2442-500ML
Fiber Chuck Newport FPH-DJ Used to hold the bare fiber.
Fiber Coupler Newport FP-1A 3-Axis stage for positioning fiber chuck and optical fiber at the focus of the objective.
Folic Acid Sigma-Aldrich F7876-10G
Formvar Coated TEM Grids Electron Microscopy Sciences FCF300-CU-SB
Masterflex Tubing Cole Parmer EW-96420-14
McCoy's 5A Medium ATCC 30-2007
Norm-Ject 10 mL Syringes HENKE SASS WOLF 4100-X00V0
Optical Fiber Thorlabs FG550LEC Used to expose sample to pulsed light.
PBS Alfa Aesar J62036
Penicillin Streptomycin GIBCO 15140-122
Pulsed Laser RPMC Lasers Inc Quantus-Q1D-1053 Pulsed laser source with specifications 1053 nm, 8 ns pulse, 10 Hz maximum.
Pulser/Receiver Olympus 5077PR Receives, filters, and amplifies photoacoustic signals. Operated with 59 dB Gain.
Quartz Capillary Tube Sutter Instrument QF150-75-10
RPMI Midum 1640 (1X) Folic Acid Free Gibco 27016-021
Silicone Momentive Performance Materials, Inc. GE284
SKOV-3 Cells ATCC HTB-77
Sodium Bicarbonate Sigma-Aldrich S5761
Sodium Carbonate Sigma-Aldrich S7795-500G
Sodium Hydroxide Beads BDH BDH9292-500G
Sodium Sulfide Nonahydrate Sigma-Aldrich 431648-50G
Syringe Pumps New Era Pump Systems Inc DUAL-1000
Texas Red-X-Succinimydl ester Invitrogen 1949071
Transducer Olynmpus V214-BB-RM Ultrasound detector with central frequency of 50 MHz and -6 dB fractional bandwidth of 82%.
Trypan Blue Solution .4% Amresco K940-100ML
Tween 20 Sigma-Aldrich P7949-100ML
Ultrasound Gel Parker Laboratories Inc. Aquasonic 100 Ultrasound gel for transducer coupling

Referências

  1. Ferlay, J., et al. Estimating the global cancer incidence and mortality in 2018: GLOBOCAN sources and methods. International Journal of Cancer. 144 (8), 1941-1953 (2019).
  2. Zhang, X., et al. Analysis of circulating tumor cells in ovarian cancer and their clinical value as a biomarker. Cellular Physiology and Biochemistry. 48 (5), 1983-1994 (2018).
  3. Zhou, Y., et al. Prognostic value of circulating tumor cells in ovarian cancer: a meta-analysis. PLoS One. 10 (6), e0130873 (2015).
  4. Guo, Y. X., et al. Diagnostic value of HE4+ circulating tumor cells in patients with suspicious ovarian cancer. Oncotarget. 9 (7), 7522-7533 (2018).
  5. Lianidou, E., Hoon, D. 9 – Circulating Tumor Cells and Circulating Tumor DNA. Principles and Applications of Molecular Diagnostics. , 235-281 (2018).
  6. Gorges, T. M., et al. Circulating tumour cells escape from EpCAM-based detection due to epithelial-to-mesenchymal transition. BMC cancer. 12 (1), 178 (2012).
  7. Galanzha, E., Zharov, V. Circulating tumor cell detection and capture by photoacoustic flow cytometry in vivo and ex vivo. Cancers. 5 (4), 1691-1738 (2013).
  8. Nedosekin, D. A., et al. In vivo noninvasive analysis of graphene nanomaterial pharmacokinetics using photoacoustic flow cytometry. Journal of Applied Toxicology. 37 (11), 1297-1304 (2017).
  9. Zharov, V. P., Galanzha, E. I., Kim, J., Khlebtsov, N. G., Tuchin, V. V. Photoacoustic flow cytometry: principle and application for real-time detection of circulating single nanoparticles, pathogens, and contrast dyes in vivo. Journal of Biomedical Optic. 12 (5), 1-14 (2007).
  10. Miranda, C., Sampath Kumar, S., Muthuswamy, J., Smith, B. S. Photoacoustic micropipette. Applied Physics Letters. 113 (26), 264103 (2018).
  11. Miranda, C., Barkley, J., Smith, B. S. Intrauterine photoacoustic and ultrasound imaging probe. Journal of Biomedical Optics. 23 (4), 1-9 (2018).
  12. Galanzha, E. I., Zharov, V. P. Photoacoustic flow cytometry. Methods. 57 (3), 280-296 (2012).
  13. O’Brien, C. M., et al. Capture of circulating tumor cells using photoacoustic flowmetry and two phase flow. Journal of Biomedical Optics. 17 (6), 061221 (2012).
  14. Cai, C., et al. Photoacoustic flow cytometry for single sickle cell detection in vitro and in vivo. Analytical Cellular Pathology. 2016, 11 (2016).
  15. Galanzha, E. I., et al. In vivo magnetic enrichment, photoacoustic diagnosis, and photothermal purging of infected blood using multifunctional gold and magnetic nanoparticles. PLoS One. 7 (9), e45557 (2012).
  16. Hannah, A., Luke, G., Wilson, K., Homan, K., Emelianov, S. Indocyanine green-loaded photoacoustic nanodroplets: dual contrast nanoconstructs for enhanced photoacoustic and ultrasound imaging. ACS Nano. 8 (1), 250-259 (2013).
  17. Kim, S. E., et al. Near-infrared plasmonic assemblies of gold nanoparticles with multimodal function for targeted cancer theragnosis. Scientific Reports. 7 (1), 17327 (2017).
  18. Ku, G., et al. Copper sulfide nanoparticles as a new class of photoacoustic contrast agent for deep tissue imaging at 1064 nm. ACS Nano. 6 (8), 7489-7496 (2012).
  19. Parker, N., et al. Folate receptor expression in carcinomas and normal tissues determined by a quantitative radioligand binding assay. Analytical Biochemistry. 338 (2), 284-293 (2005).
  20. Cheung, A., et al. Targeting folate receptor alpha for cancer treatment. Oncotarget. 7 (32), 52553 (2016).
  21. Zhou, M., Song, S., Zhao, J., Tian, M., Li, C. Theranostic CuS nanoparticles targeting folate receptors for PET image-guided photothermal therapy. Journal of Materials Chemistry B. 3 (46), 8939-8948 (2015).
  22. Lusk, J. F., et al. Photoacoustic Flow System for the Detection of Ovarian Circulating Tumor Cells Utilizing Copper Sulfide Nanoparticles. ACS Biomaterials Science & Engineering. 5 (3), 1553-1560 (2019).
  23. Lee, M., et al. Predictive value of circulating tumor cells (CTCs) captured by microfluidic device in patients with epithelial ovarian cancer. Gynecologic Oncology. 145 (2), 361-365 (2017).
  24. Blassl, C., et al. Gene expression profiling of single circulating tumor cells in ovarian cancer-Establishment of a multi-marker gene panel. Molecular Oncology. 10 (7), 1030-1042 (2016).
  25. Lu, Y., et al. Isolation and characterization of living circulating tumor cells in patients by immunomagnetic negative enrichment coupled with flow cytometry. Cancer. 121 (17), 3036-3045 (2015).
  26. Bhattacharyya, K., Goldschmidt, B. S., Viator, J. A. Detection and capture of breast cancer cells with photoacoustic flow cytometry. Journal of Biomedical Optics. 21 (8), 087007 (2016).
  27. Zharov, V. P., Galanzha, E. I., Shashkov, E. V., Khlebtsov, N. G., Tuchin, V. V. In vivo photoacoustic flow cytometry for monitoring of circulating single cancer cells and contrast agents. Optics Letters. 31 (24), 3623-3625 (2006).
  28. Galanzha, E. I., et al. In vivo liquid biopsy using Cytophone platform for photoacoustic detection of circulating tumor cells in patients with melanoma. Science Translational Medicine. 11 (496), eaat5857 (2019).
  29. Cai, C., et al. In vivo photoacoustic flow cytometry for early malaria diagnosis. Cytometry Part A. 89 (6), 531-542 (2016).
  30. Galanzha, E. I., et al. In vivo magnetic enrichment and multiplex photoacoustic detection of circulating tumour cells. Nature Nanotechnology. 4 (12), 855 (2009).
check_url/pt/60279?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Lusk, J. F., Miranda, C., Smith, B. S. Ovarian Cancer Detection Using Photoacoustic Flow Cytometry. J. Vis. Exp. (155), e60279, doi:10.3791/60279 (2020).

View Video