Summary

Approche expérimentale pour examiner la signalisation de leptine dans les corps carotides et ses effets sur le contrôle de la respiration

Published: October 25, 2019
doi:

Summary

Notre étude se concentre sur les effets de la signalisation de leptine dans le corps carotide (CB) sur la réponse ventilatoire hypoxique (HVR). Nous avons effectué des expériences de « perte de fonction » mesurant l’effet de la leptine sur le HVR après la dénervation CB et les expériences de « gain de fonction » mesurant le HVR après surexpression du récepteur de la leptine dans CB.

Abstract

Une hormone produite par l’adipocyte la leptine est un stimulant respiratoire puissant, qui peut jouer un rôle important dans la défense de la fonction respiratoire dans l’obésité. Les corps carotides (CB), un organe clé de la sensibilité hypoxique périphérique, expriment le long isoforme fonctionnel du récepteur de la leptine (LepRb) mais le rôle de la signalisation de lepin dans le contrôle de la respiration n’a pas été entièrement élucidé. Nous avons examiné la réponse ventilatoire hypoxique (HVR) (1) chez les souris C57BL/6J avant et après l’infusion de leptine à la ligne de base et après la dénervation de CB ; (2) dans LepRb-déficients obèses souris db/db à la ligne de base et après le lepRb surexpression dans les CBs. Dans les souris de C57BL/6J, le leptin a augmenté HVR et les effets de la leptine sur HVR ont été supprimés par la dénervation de CB. Chez les souris db/db, l’expression lepRb en CB a augmenté le HVR. Par conséquent, nous concluons que la leptine agit dans CB pour augmenter les réponses à l’hypoxie.

Introduction

Un adipocyte produit des actes d’hormone de leptine dans l’hypothalamus pour supprimer la prise de nourriture et augmenter le taux métabolique. Les études exécutées dans notre laboratoire1,2 et par d’autres investigateurs3,4 ont prouvé que le leptine augmente la réponse ventilatoire hypercapnique (HVR) empêchant l’hypoventilation d’obésité dans la leptine l’obésité déficiente. Cependant, une majorité d’individus obèses ont des niveaux élevés de leptine de plasma et démontrent la résistance aux effets métaboliques et respiratoires de l’hormone5,6,7,8. La résistance à la leptine est multifactorielle, mais la perméabilité limitée de la barrière hémato-encéphalique (BBB) à la leptine joue un rôle majeur. Nous proposons que la leptine agit au-dessous de BBB dans un organe clé de la sensibilité hypoxique périphérique, les corps carotides (CB), pour défendre la respiration dans les individus obèses. Les CB expriment le long isoforme fonctionnel du récepteur de lepin, LepRb, mais le rôle de CB dans les effets respiratoires de la leptine n’a pas été suffisamment élucidé9,10.

Le but de notre méthode était d’examiner l’effet de la signalisation de leptine dans le CB sur HVR. Notre justification était d’effectuer (a) la perte des expériences de fonction infusant la leptine chez les souris avec les corps carotides intacts et les corps carotides denervated suivis des mesures de HVR ; b) gain d’expériences fonctionnelles chez des souris db/db dépourvues de LepRb, dans lesquelles nous avons mesuré le HVR à la ligne de base et après l’expression de LepRb exclusivement en CB. L’avantage de nos techniques était que nous avons effectué toutes nos expériences chez des souris non anésiles non retenues pendant le sommeil et l’éveil. Les chercheurs précédents ont effectué leurs expériences sous anesthésie9 ou n’ont pas mesuré les effets de la leptine pendant le sommeil10. En outre, notre étude est la première à utiliser un gain unique de l’approche de fonction avec l’expression sélective de LepRb dans CB décrit ci-dessus.

Dans le contexte général, notre approche peut être généralisée à d’autres récepteurs exprimés dans CB et leur rôle dans la sensibilité hypoxique. Les investigateurs peuvent infuser un ligand à un récepteur d’intérêt et mesurer le HVR à la ligne de base et après la dénervation de CB. En tant qu’approche complémentaire, un récepteur d’intérêt peut être surexprimé dans les mesures CB et HVR peuvent être effectuées avant et après la surexpression en utilisant notre technologie décrite dans ce manuscrit.

Protocol

Tous les protocoles expérimentaux ont été approuvés par le Comité institutionnel de soins et d’utilisation des animaux (MO18M211). 1. Infusion de leptin REMARQUE: Afin d’examiner l’effet de la leptine sur la respiration, nous avons infusé la leptine sous-cutanée dans les souris maigres c57BL/6J par une pompe osmotique pour augmenter les niveaux circulants de leptine à ceux observés chez les souris obèses. Préparation de…

Representative Results

L’infusion continue de leptine a considérablement augmenté le HVR chez les souris maigres C57BL/6J de 0,23 à 0,31 ml/min/g/FiO2 (P lt; 0,001, figure 2)11. CSND a aboli l’augmentation induite par la leptine dans HVR (figure 2), tandis qu’aucun effet atténuant de CSND sur HVR n’a été observé dans le groupe de chirurgie de faux après perfusion de leptine. L’expression de LepRb dans le…

Discussion

L’objectif principal de notre étude était d’examiner les effets respiratoires de la signalisation de leptine dans le CB. Plusieurs protocoles ont été élaborés pour évaluer le rôle de la leptine d’une manière mécaniste. Tout d’abord, la contribution spécifique de CB au HVR a été analysée par la quantification soigneuse du HVR pendant les 2 premières min d’exposition hypoxique. Deuxièmement, la pertinence de cb dans la régulation de la leptine du contrôle de la respiration a été examinée par deux appro…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

R01HL138932, RO1HL133100, RO1HL128970, AHACDA34700025

Materials

1ml Insulin Syringes BD Biosciences 309311
1x PBS (pH 7.4) Gibco 10010-023 500 ml
Ad-Lacz Dr. Christopher Rhodes (University of Chicago) 1×1010 pfu/ml
Ad-LepRb-GFP Vector Biolabs ADV-263380 2-5×1010 pfu/ml
Anesthetic cart Atlantic Biomedical
Betadine Purdue Products Ltd. 12496-0757-5
Buprenorphine (Buprenex) Reckitt Benckiser Healthcare Ltd. 12496-0757-5 0.3mg/ml
C57Bl/6J Jackson laboratory 000664 Mice Strain
Cotton Gauze Sponges Fisherbrand 22-362-178
db/db Jackson laboratory 000697 Mice Strain
Ethanol Pharmco-AAPER 111000200
Isoflurane Vetone 502017
Lab Chart Data Science International (DSI) Software
Matrigel Matrix BD Biosciences 356234
Micro Spring Scissors World Precision Instruments (WPI) 14124
Mouse Ox Plus STARR Life Sciences Corp. Software
Mouse Ox Plus Collar Sensor STARR Life Sciences Corp. 015022-2 Medium Collar Clip Special 7”
Mouse Whole Body Plethysmography Chamber Data Science International (DSI) PLY3211
Ohio Care Plus Incubator Ohmeda HCHD000173
Operating Scissors World Precision Instruments (WPI) 501753-G Straight
Osmotic Pump Alzet 1003D 1ul per hour, 3 days
Phenol Sigma-Aldrich P4557
Recombinant Mouse Leptin protein R&D systems 498-OB-05M 5mg
Saline RICCA Chemical 7210-16 0.9% Sodium Chloride
Sterile Surgical Suture DemeTech DT-639-1 Silk, size 6-0
Thermometer Innovative Calibration Solutions (INNOCAL) EW 20250-91

Referências

  1. O’donnell, C. P., et al. Leptin prevents respiratory depression in obesity. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 159, 1477-1484 (1999).
  2. Polotsky, V. Y., et al. Female gender exacerbates respiratory depression in leptin-deficient obesity. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 164, 1470-1475 (2001).
  3. Bassi, M., et al. Central leptin replacement enhances chemorespiratory responses in leptin-deficient mice independent of changes in body weight. Pflügers Archiv: European Journal of Physiology. 464, 145-153 (2012).
  4. Inyushkina, E. M., Merkulova, N. A., Inyushkin, A. N. Mechanisms of the respiratory activity of leptin at the level of the solitary tract nucleus. Neuroscience and Behavioral Physiology. 40, 707-713 (2010).
  5. Considine, R. V., et al. Serum immunoreactive-leptin concentrations in normal-weight and obese humans. New England Journal of Medicine. 334, 292-295 (1996).
  6. Maffei, M., et al. Leptin levels in human and rodent: measurement of plasma leptin and ob RNA in obese and weight-reduced subjects. Nature Medicine. 1, 1155-1161 (1995).
  7. Phipps, P. R., Starritt, E., Caterson, I., Grunstein, R. R. Association of serum leptin with hypoventilation in human obesity. Thorax. 57, 75-76 (2002).
  8. Berger, S., Polotsky, V. Y. Leptin and Leptin Resistance in the Pathogenesis of Obstructive Sleep Apnea: A Possible Link to Oxidative Stress and Cardiovascular Complications. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2018, 5137947 (2018).
  9. Ribeiro, M. J., et al. High fat diet blunts the effects of leptin on ventilation and on carotid body activity. The Journal of Physiology. 96, 3187-3199 (2018).
  10. Yuan, F., et al. Leptin signaling in the carotid body regulates a hypoxic ventilatory response through altering TASK channel expression. Frontiers in Physiology. 9, 249 (2018).
  11. Caballero-Eraso, C., et al. Leptin acts in the carotid bodies to increase minute ventilation during wakefulness and sleep and augment the hypoxic ventilatory response. The Journal of Physiology. 591, 151-172 (2018).
  12. Jun, J. C., Shin, M. K., Yao, Q., Devera, R., Fonti-Bevans, S., Polotsky, V. Y. Thermoneutrality modifies the impact of hypoxia on lipid metabolism. American Journal of Physiology Endocrinology and Metabolism. 304, 424-435 (2012).
  13. Polotsky, V. Y., et al. Impact of interrupted leptin pathways on ventilatory control. Journal of Applied Physiology. 96, 991-998 (2004).
  14. Pho, H., et al. The effect of leptin replacement on sleep-disordered breathing in the leptin-deficient ob/ob mouse. Journal of Applied Physiology. 120, 78-86 (2016).
  15. Hernandez, A. B., et al. Novel whole body plethysmography system for the continuous characterization of sleep and breathing in a mouse. Journal of Applied Physiology. 112, 671-680 (2012).
  16. Powell, F. L., Milsom, W. K., Mitchell, G. S. Time domains of the hypoxic ventilatory response. Respiration Physiology. 112, 123-134 (1998).
  17. Drorbaugh, J. E., Fenn, W. O. A barometric method for measuring ventilation in newborn infants. Pediatrics. 16, 81-87 (1955).
  18. Duffin, J. Measuring the ventilatory response to hypoxia. The Journal of Physiology. 587, 285-293 (2007).
  19. Teppema, L. J., Dahan, A. The Ventilatory Response to Hypoxia in Mammals: Mechanisms, Measurement, and Analysis. Physiological Reviews. 90, 675-754 (2010).
  20. Nurse, C. A., Fearon, I. M. Carotid body chemoreceptors in dissociated cell culture. Microscopy Research and Technique. 59, 249-255 (2002).
  21. Kumar, P., Prabhakar, N. R. Peripheral chemoreceptors: function and plasticity of the carotid body. Comprehensive Physiology. 2, 141-219 (2012).
  22. Roux, J. C., Peyronnet, J., Pascual, O., Dalmaz, Y., Pequignot, J. M. Ventilatory and central neurochemical reorganisation of O2 chemoreflex after carotid sinus nerve transection in rat. The Journal of Physiology. 522, 493-501 (2000).
check_url/pt/60298?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Shin, M., Kim, L. J., Caballero-Eraso, C., Polotsky, V. Y. Experimental Approach to Examine Leptin Signaling in the Carotid Bodies and its Effects on Control of Breathing. J. Vis. Exp. (152), e60298, doi:10.3791/60298 (2019).

View Video