Summary

Создание и характеристика малого кишечника нейроэндокринных опухолевых сфероидов

Published: October 14, 2019
doi:

Summary

Нейроэндокринные опухоли (NET) происходят из нейроэндокринных клеток нервного гребня. Они медленно растут и бросают вызов культуре. Мы представляем альтернативную стратегию для выращивания NETs из тонкой кишки, культивируя их как сфероиды. Эти сфероиды имеют маркеры NET тонкой кишки и могут быть использованы для тестирования на наркотики.

Abstract

Опухоли тонкой кишки (SBNETs) являются редкими раковыми заболеваниями, происходящими из энтерохромаффиновых клеток кишечника. Исследования в этой области были ограничены, потому что очень мало пациентов, полученных SBNET клеточных линий были созданы. Хорошо дифференцированные клетки SBNET медленно растут и их трудно размножаться. Несколько установленных клеточных линий не всегда доступны, и через некоторое время в культуре может не продолжать выражать характеристики клеток NET. Создание новых клеточных линий может занять много лет, так как клетки SBNET имеют долгое время удвоения и многие шаги по обогащению необходимы для того, чтобы устранить быстрое разделение связанных с раком фибробластов. Чтобы преодолеть эти ограничения, мы разработали протокол к культуре SBNET клеток из хирургически удаленных опухолей, как сфероиды во внеклеточной матрицы (ECM). ECM образует трехмерную матрицу, которая инкапсулирует клетки SBNET и имитирует микро-среду опухоли, позволяя клеткам SBNET расти. Здесь мы охарактеризовали темпы роста сфероидов SBNET и описали методы выявления маркеров SBNET с помощью иммунофлюоресценциальной микроскопии и иммуногистохимии, чтобы подтвердить, что сфероиды являются нейроэндокринными опухолевыми клетками. Кроме того, мы использовали сфероиды SBNET для тестирования цитотоксичности рапамицина.

Introduction

Опухоли тонкой кишки нейроэндокринных (SBNETs) происходят из энтерохромаффина клеток тонкой кишки. Хотя SBNETs, как известно, растут медленно, они обычно метастазируют в печень1. Хотя хирургическое удаление или абляция опухоли может быть рассмотренво во многих случаях, рецидив почти универсальный, и, следовательно, медицинская терапия играет важную роль в управлении. Огромные усилия были вложены для создания новых линий клеток SBNET для тестирования на наркотики. Однако успеха получило очень мало. Только 6 сотовых линий SBNET (KRJ-I, CND2, GOT1, P-STS, L-STS, H-STS) были зарегистрированы2,3,4,5; и, к сожалению, одна клеточная линия больше не выражает NET маркеры6 и три других SBNET клеточных линий (KRJ-I, L-STS, H-STS) были определены, чтобы быть производным от преобразованных лимфобластов вместо NETs7. Для ускорения выявления лекарств для таргетирования СБНЕТ необходимы альтернативные методы тестирования на наркотики in vitro.

Здесь мы пользуемся наличием резецированных SBNETs и создали способ культуры этих пациентов полученных SBNETs как сфероиды, растущие в ECM. Общая цель этой рукописи заключается в описании метода культуры SBNET как трехмерной (3D) культуры и наброски процедур для характеристики этих сфероидов для удержания маркеров SBNET путем обертывания иммунофлюоресценции и иммуногистохимии.

Кроме того, мы демонстрируем, как эти сфероиды SBNET могут быть использованы для тестирования эффекта рапамицина, противоракового препарата для NETs8. Обоснованием этого протокола является разработка нового метода для выращивания клеток SBNET in vitro и их использования для тестирования на наркотики. Преимущество этого метода по сравнению с традиционным методом создания клеточной линии SBNET заключается в том, что 3D культуры SBNETs могут быть быстро получены и тестирование на наркотики может быть сделано в течение 3 недель. Сфероиды SBNET потенциально могут быть использованы в качестве модели для выполнения экранов в пробирке наркотиков для выявления новых препаратов для пациентов SBNET. Поскольку линии клеток SBNET не являются широко доступными, 3D культуры сфероидов SBNET могут служить новой моделью in vitro для изучения SBNETs и могут быть распространены среди ученых в этой области.

Protocol

Все эксперименты с использованием образцов нейроэндокринной опухоли человека были одобрены комитетом больницы и клиник Университета Айовы (Протокол No 199911057). Список всех материалов и оборудования описан в таблице материалов. Список медиа-медиа роста и ключевых решений можно …

Representative Results

Есть в настоящее время только 2 SBNET клеточных линий, установленных и опубликованных2,3,4,5, и они не легко доступны для многих исследователей. Здесь мы предлагаем культуре SBNET в качестве сфероидов в ECM и использовать его в…

Discussion

Опухолевые 3D культуры стали ценным ресурсом для доклинического тестирования нанаркотики 15. Различные опухолевые органоидные биобанки недавно были созданы из рака молочной железы и опухолей рака предстательной железы16,17. В этом исследован?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана NIH грантов P50 CA174521 (J.R. Хоу и А. М. Bellizzi). P.H. Ear является получателем премии P50 CA174521 по улучшению карьеры.

Materials

Anti-rabbit FITC Jackson ImmunoResearch 11-095-152 Secondary antibody couple to a green fluorophore
Antigen Retrieval Solution Agilent Dako S2367 Solution at pH 9 for preparing slides for IHC
Autostainer Link 48 Agilent Dako Not Available Automated system for antibody staining
Cell freezing container Thermo Scientific 5100-0001 Container to for freezing cells
CellSence Olympus Version 1.18 Computer software for using fluorescent microscope
Chromogranin A antibody Abcam-45179 RB-9003-PO Antibodies for IF
Chromogranin A antibody (clone LK2H10) Thermo Scientific MA5-13096 Antibodies for IHC
Collagenase Sigma C0130 Enzyme for digesting tumor tissue
DMEM Gibco 11965-092 Medium for tissue preparation
DMEM/F12 Gibco 11320-033 Medium for organoid cultures
DMSO Sigma D8418 Solvent for dissolving drug
DNAse Sigma DN25 Enzyme for digesting tumor tissue
Ethidium Homodimer Chemodex CDX-E0012-T1E DNA and RNA binding dye
FBS Gibco 16000044 Reagent for culture media
Fluorescent microscope Olympus CKX35 Microscope for taking pictures of SBENT spheroids
Glutamine Gibco A2916801 Reagent for culture media
ImageJ National Institutes of Health Version 1.51 Computer software for image analysis
Insulin Sigma I0516 Reagent for culture media
Matrigel Corning 356235 Matrix to embed and anchore organoids
Mounting medium (VECTASHIELD) Vector Laboratories H-1200 Fixative for labelled-cells with a nuclear stain
Nicotinamide Sigma 72340 Reagent for culture media
Paraformaldehyde Electron Microscopy Sciences 15710 Reagent to fix cells
PEN/STREP Gibco 15140-122 Reagent for culture media
PT Link Agilent Dako Not Available Automated system to prepare slides for IHC staining
Rapamycin Alfa Aesar J62473 Drug that can inhibit NET growth
Secondary antibodies for IHC Agilent Dako K8000 Secondary antibodies for IHC using Polymer-based EnVision FLEX system
SSTR2 antibody GeneScritp A01591 Antibodies for IF
SSTR2 antibody (clone UMB1) Abcam ab134152 Antibodies for IHC
Synaptophysin antibody Abcam 32127 Antibodies for IF
Synaptophysin antibody (clone DAK-SYNAP) Agilent Dako M7315 Antibodies for IHC
TritonX Mallinckrodt 3555 KBGE Reagent to permeablize cells
Y-2763 ROCK inhibitor Adipogen AG-CR1-3564-M005 To improve SBNET spheroid viability after freeze thaw

Referências

  1. Maxwell, J. E., Sherman, S. K., Howe, J. R. Translational Diagnostics and Therapeutics in Pancreatic Neuroendocrine Tumors. Clinical Cancer Research. 22, 5022-5029 (2016).
  2. Pfragner, R., et al. Establishment of a continuous cell line from a human carcinoid of the small intestine (KRJ-I). International Journal of Oncology. 8, 513-520 (1996).
  3. Kolby, L., et al. A transplantable human carcinoid as model for somatostatin receptor-mediated and amine transporter-mediated radionuclide uptake. American Journal of Pathology. 158, 745-755 (2001).
  4. Van Buren, G., et al. The development and characterization of a human midgut carcinoid cell line. Clinical Cancer Research. 13, 4704-4712 (2007).
  5. Pfragner, R., et al. Establishment and characterization of three novel cell lines – P-STS, L-STS, H-STS – derived from a human metastatic midgut carcinoid. Anticancer Research. 29, 1951-1961 (2009).
  6. Ellis, L. M., Samuel, S., Sceusi, E. Varying opinions on the authenticity of a human midgut carcinoid cell line–letter. Clinical Cancer Research. 16, 5365-5366 (2010).
  7. Hofving, T., et al. The neuroendocrine phenotype, genomic profile and therapeutic sensitivity of GEPNET cell lines. Endocrine Related Cancer. 25, 367-380 (2018).
  8. Moreno, A., et al. Antitumor activity of rapamycin and octreotide as single agents or in combination in neuroendocrine tumors. Endocrine Related Cancer. 15, 257-266 (2008).
  9. Broutier, L., et al. Culture and establishment of self-renewing human and mouse adult liver and pancreas 3D organoids and their genetic manipulation. Nature Protocols. 11, 1724-1743 (2016).
  10. Saito, Y., et al. Establishment of Patient-Derived Organoids and Drug Screening for Biliary Tract Carcinoma. Cell Reports. 27, 1265-1276 (2019).
  11. Park, S. J., et al. Detection of bone marrow metastases of neuroblastoma with immunohistochemical staining of CD56, chromogranin A, and synaptophysin. Applied Immunohistochemisty and Molecular Morphology. 18, 348-352 (2010).
  12. Clifton-Bligh, R. J., et al. Improving diagnosis of tumor-induced osteomalacia with Gallium-68 DOTATATE PET/CT. The Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 98, 687-694 (2013).
  13. Clinton, J., McWilliams-Koeppen, P. Initiation, Expansion, and Cryopreservation of Human Primary Tissue-Derived Normal and Diseased Organoids in Embedded Three-Dimensional Culture. Current Protocols in Cell Biology. 82, 66 (2019).
  14. Markovits, J., Roques, B. P., Le Pecq, J. B. Ethidium dimer: a new reagent for the fluorimetric determination of nucleic acids. Analytical Biochemistry. 94, 259-264 (1979).
  15. Weeber, F., Ooft, S. N., Dijkstra, K. K., Voest, E. E. Tumor Organoids as a Pre-clinical Cancer Model for Drug Discovery. Cell Chemical Biology. 24, 1092-1100 (2017).
  16. Sachs, N., et al. A Living Biobank of Breast Cancer Organoids Captures Disease Heterogeneity. Cell. 172, 373-386 (2018).
  17. Puca, L., et al. Patient derived organoids to model rare prostate cancer phenotypes. Nature Communication. 9, 2404 (2018).
  18. Singh, S. P., et al. SSTR2-based reporters for assessing gene transfer into non-small cell lung cancer: evaluation using an intrathoracic mouse model. Human Gene Therapy. 22, 55-64 (2011).
check_url/pt/60303?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Ear, P. H., Li, G., Wu, M., Abusada, E., Bellizzi, A. M., Howe, J. R. Establishment and Characterization of Small Bowel Neuroendocrine Tumor Spheroids. J. Vis. Exp. (152), e60303, doi:10.3791/60303 (2019).

View Video