Summary

Etablering och karakterisering av små tarm neuroendokrina tumör spheroids

Published: October 14, 2019
doi:

Summary

Neuroendokrina tumörer (NETs) härstammar från neuroendokrina celler i neurala Crest. De är långsamt växande och utmanande för kulturen. Vi presenterar en alternativ strategi för att odla nät från tunntarm genom odling av dem som spheroids. Dessa spheroids har små tarm nät markörer och kan användas för drogtester.

Abstract

Små tarm neuroendokrina tumörer (SBNETs) är sällsynta cancerformer som härrör från enterochromaffin celler i tarmen. Forskning inom detta område har begränsats eftersom mycket få patient härledda SBNET cellinjer har genererats. Väl differentierade SBNET celler är långsamt växande och är svåra att propagera. De få cell linjer som har upprättats är inte lätt tillgängliga, och efter tid i kulturen får inte fortsätta att uttrycka egenskaper hos netto celler. Generera nya cellinjer kan ta många år sedan SBNET celler har en lång fördubbling tid och många berikande steg behövs för att eliminera den snabbt dividera cancer-associerade fibroblaster. För att övervinna dessa begränsningar har vi utvecklat ett protokoll till kultur SBNET celler från kirurgiskt borttagna tumörer som spheroids i extracellulära matrix (ECM). ECM bildar en 3-dimensionell matris som kapslar SBNET celler och härmar tumören mikro-miljö för att tillåta SBNET celler att växa. Här har vi karakteriserat tillväxttakten för SBNET spheroids och beskrivna metoder för att identifiera SBNET markörer med hjälp av immunofluorescensmikroskopi och immunohistokemi för att bekräfta att spheroids är neuroendokrina tumörceller. Dessutom använde vi SBNET spheroids för att testa cytotoxicitet av rapamycin.

Introduction

Små tarm neuroendokrina tumörer (SBNETs) härstammar från enterochromaffin celler i tunntarmen. Även om sbnets är allmänt kända för att växa långsamt, de ofta metastasera till levern1. Medan kirurgiskt avlägsnande eller tumör ablation kan övervägas i många fall, upprepning är nästan universell, och, därför, medicinsk behandling spelar en viktig roll i förvaltningen. Enorma ansträngningar har investerats för att generera nya SBNET cellinjer för drogtester. Men det har varit mycket liten framgång. Endast 6 sbnet cellinjer (KRJ-I, CND2, GOT1, P-STS, L-STS, H-STS) har rapporterats2,3,4,5; och tyvärr en cell linje inte längre uttrycker netto markörer6 och tre andra sbnet cellinjer (KRJ-I, L-STS, H-STS) bestämdes att härledas från transformerade lymfoblaster i stället för nät7. För att påskynda identifieringen av läkemedel för att inrikta sig på SBNETs, behövs alternativa metoder för in vitro-drogtester.

Här drar vi nytta av tillgängligheten av resected SBNETs och har etablerat ett sätt att odla dessa patient-härledda SBNETs som spheroids växer i ECM. Det övergripande målet med detta manuskript är att beskriva en metod för att odla SBNET som en tredimensionell (3D) kultur och skissera förfaranden för att karakterisera dessa spheroids för bibehållande av SBNET markörer genom immunofluorescensfärgning och immunohistokemi.

Dessutom visar vi hur dessa SBNET spheroids kan användas för att testa effekten av rapamycin, en anti-cancerläkemedel för NETs8. Logiken bakom detta protokoll är att utveckla en ny metod för att odla SBNET-celler in vitro och använda dem för drogtester. Fördelen med denna teknik över den traditionella metoden för att etablera en SBNET cellinjer är att 3D-kulturer av SBNETs snabbt kan erhållas och drogtester kan göras inom 3 veckor. SBNET spheroids kan potentiellt användas som en modell för att utföra in vitro-läkemedel skärmar för att identifiera nya läkemedel för SBNET patienter. Eftersom SBNET cellinjer inte är allmänt tillgängliga, 3D-kulturer av SBNET spheroids kan fungera som en ny in vitro-modell för att studera SBNETs och kan delas mellan forskare inom området.

Protocol

Alla experiment med Human neuroendokrina tumör prover har godkänts av University of Iowa Hospital and Clinics IRB kommittén (protokollnummer 199911057). En lista över alla material och all utrustning beskrivs i material tabellen. En lista över tillväxtmedia och nyckellösningar finns i tabell 1. 1. liten tarm neuroendokrina tumör (SBNET) insamling och cell dissociation Få resected PATIENTSBNET prover efter tumör vävnader bekräftelse från …

Representative Results

Det finns för närvarande endast 2 sbnet cellinjer etablerade och publicerade2,3,4,5 och de är inte lätt tillgängliga för många forskare. Här föreslår vi att kulturen SBNET som spheroids i ECM och använda detta som en alternativ modell för att studera SBNET läkemedels känslighet. Patient-derived tumör från en sbnet att metastaserat till levern samlades, smält för att frigöra s…

Discussion

Tumör 3D-kulturer har blivit en värdefull resurs för prekliniska drogtester15. Olika tumör Organoid biobanker har nyligen etablerats från bröstcancer och prostatacancertumörer16,17. I denna studie ger vi ett detaljerat protokoll till kultur SBNET som spheroids och en enkel och snabb metod för att validera sfäroid kulturer för netto markörer genom immunofluorescensbildning och test läkemedels känslighet. Från vår erfarenhet k…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av NIH Grants P50 CA174521 (till Jr Howe och A.M. Bellizzi). P.H. ear är mottagare av P50 CA174521 karriär Enhancement program Award.

Materials

Anti-rabbit FITC Jackson ImmunoResearch 11-095-152 Secondary antibody couple to a green fluorophore
Antigen Retrieval Solution Agilent Dako S2367 Solution at pH 9 for preparing slides for IHC
Autostainer Link 48 Agilent Dako Not Available Automated system for antibody staining
Cell freezing container Thermo Scientific 5100-0001 Container to for freezing cells
CellSence Olympus Version 1.18 Computer software for using fluorescent microscope
Chromogranin A antibody Abcam-45179 RB-9003-PO Antibodies for IF
Chromogranin A antibody (clone LK2H10) Thermo Scientific MA5-13096 Antibodies for IHC
Collagenase Sigma C0130 Enzyme for digesting tumor tissue
DMEM Gibco 11965-092 Medium for tissue preparation
DMEM/F12 Gibco 11320-033 Medium for organoid cultures
DMSO Sigma D8418 Solvent for dissolving drug
DNAse Sigma DN25 Enzyme for digesting tumor tissue
Ethidium Homodimer Chemodex CDX-E0012-T1E DNA and RNA binding dye
FBS Gibco 16000044 Reagent for culture media
Fluorescent microscope Olympus CKX35 Microscope for taking pictures of SBENT spheroids
Glutamine Gibco A2916801 Reagent for culture media
ImageJ National Institutes of Health Version 1.51 Computer software for image analysis
Insulin Sigma I0516 Reagent for culture media
Matrigel Corning 356235 Matrix to embed and anchore organoids
Mounting medium (VECTASHIELD) Vector Laboratories H-1200 Fixative for labelled-cells with a nuclear stain
Nicotinamide Sigma 72340 Reagent for culture media
Paraformaldehyde Electron Microscopy Sciences 15710 Reagent to fix cells
PEN/STREP Gibco 15140-122 Reagent for culture media
PT Link Agilent Dako Not Available Automated system to prepare slides for IHC staining
Rapamycin Alfa Aesar J62473 Drug that can inhibit NET growth
Secondary antibodies for IHC Agilent Dako K8000 Secondary antibodies for IHC using Polymer-based EnVision FLEX system
SSTR2 antibody GeneScritp A01591 Antibodies for IF
SSTR2 antibody (clone UMB1) Abcam ab134152 Antibodies for IHC
Synaptophysin antibody Abcam 32127 Antibodies for IF
Synaptophysin antibody (clone DAK-SYNAP) Agilent Dako M7315 Antibodies for IHC
TritonX Mallinckrodt 3555 KBGE Reagent to permeablize cells
Y-2763 ROCK inhibitor Adipogen AG-CR1-3564-M005 To improve SBNET spheroid viability after freeze thaw

Referências

  1. Maxwell, J. E., Sherman, S. K., Howe, J. R. Translational Diagnostics and Therapeutics in Pancreatic Neuroendocrine Tumors. Clinical Cancer Research. 22, 5022-5029 (2016).
  2. Pfragner, R., et al. Establishment of a continuous cell line from a human carcinoid of the small intestine (KRJ-I). International Journal of Oncology. 8, 513-520 (1996).
  3. Kolby, L., et al. A transplantable human carcinoid as model for somatostatin receptor-mediated and amine transporter-mediated radionuclide uptake. American Journal of Pathology. 158, 745-755 (2001).
  4. Van Buren, G., et al. The development and characterization of a human midgut carcinoid cell line. Clinical Cancer Research. 13, 4704-4712 (2007).
  5. Pfragner, R., et al. Establishment and characterization of three novel cell lines – P-STS, L-STS, H-STS – derived from a human metastatic midgut carcinoid. Anticancer Research. 29, 1951-1961 (2009).
  6. Ellis, L. M., Samuel, S., Sceusi, E. Varying opinions on the authenticity of a human midgut carcinoid cell line–letter. Clinical Cancer Research. 16, 5365-5366 (2010).
  7. Hofving, T., et al. The neuroendocrine phenotype, genomic profile and therapeutic sensitivity of GEPNET cell lines. Endocrine Related Cancer. 25, 367-380 (2018).
  8. Moreno, A., et al. Antitumor activity of rapamycin and octreotide as single agents or in combination in neuroendocrine tumors. Endocrine Related Cancer. 15, 257-266 (2008).
  9. Broutier, L., et al. Culture and establishment of self-renewing human and mouse adult liver and pancreas 3D organoids and their genetic manipulation. Nature Protocols. 11, 1724-1743 (2016).
  10. Saito, Y., et al. Establishment of Patient-Derived Organoids and Drug Screening for Biliary Tract Carcinoma. Cell Reports. 27, 1265-1276 (2019).
  11. Park, S. J., et al. Detection of bone marrow metastases of neuroblastoma with immunohistochemical staining of CD56, chromogranin A, and synaptophysin. Applied Immunohistochemisty and Molecular Morphology. 18, 348-352 (2010).
  12. Clifton-Bligh, R. J., et al. Improving diagnosis of tumor-induced osteomalacia with Gallium-68 DOTATATE PET/CT. The Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 98, 687-694 (2013).
  13. Clinton, J., McWilliams-Koeppen, P. Initiation, Expansion, and Cryopreservation of Human Primary Tissue-Derived Normal and Diseased Organoids in Embedded Three-Dimensional Culture. Current Protocols in Cell Biology. 82, 66 (2019).
  14. Markovits, J., Roques, B. P., Le Pecq, J. B. Ethidium dimer: a new reagent for the fluorimetric determination of nucleic acids. Analytical Biochemistry. 94, 259-264 (1979).
  15. Weeber, F., Ooft, S. N., Dijkstra, K. K., Voest, E. E. Tumor Organoids as a Pre-clinical Cancer Model for Drug Discovery. Cell Chemical Biology. 24, 1092-1100 (2017).
  16. Sachs, N., et al. A Living Biobank of Breast Cancer Organoids Captures Disease Heterogeneity. Cell. 172, 373-386 (2018).
  17. Puca, L., et al. Patient derived organoids to model rare prostate cancer phenotypes. Nature Communication. 9, 2404 (2018).
  18. Singh, S. P., et al. SSTR2-based reporters for assessing gene transfer into non-small cell lung cancer: evaluation using an intrathoracic mouse model. Human Gene Therapy. 22, 55-64 (2011).
check_url/pt/60303?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Ear, P. H., Li, G., Wu, M., Abusada, E., Bellizzi, A. M., Howe, J. R. Establishment and Characterization of Small Bowel Neuroendocrine Tumor Spheroids. J. Vis. Exp. (152), e60303, doi:10.3791/60303 (2019).

View Video