Summary

मॉरिन न्यूरोजेनेसिस के दौरान नॉच सिग्नलिंग डायनेमिक्स की रियल-टाइम बायोल्यूमिनेसेंस इमेजिंग

Published: December 12, 2019
doi:

Summary

तंत्रिका स्टेम/जनक कोशिकाएं नॉच सिग्नलिंग घटकों की विभिन्न अभिव्यक्ति गतिशीलता प्रदर्शित करती हैं जो सेलुलर घटनाओं के विभिन्न परिणामों का कारण बनती हैं । इस तरह की गतिशील अभिव्यक्ति वास्तविक समय की निगरानी से प्रकट किया जा सकता है, स्थिर विश्लेषण से नहीं, एक अत्यधिक संवेदनशील बायोल्यूमिनेसेंस इमेजिंग सिस्टम का उपयोग करके जो जीन अभिव्यक्तियों में तेजी से परिवर्तन के दृश्य को सक्षम बनाता है।

Abstract

नॉच सिग्नलिंग सेल-सेल इंटरैक्शन द्वारा तंत्रिका स्टेम/जनक कोशिकाओं के रखरखाव को नियंत्रित करता है । नॉच सिग्नलिंग के घटक गतिशील अभिव्यक्ति प्रदर्शित करते हैं। नॉच सिग्नलिंग इफेक्टर हेस1 और नॉच लिगामेंट डेल्टा-लाइक1 (Dll1) को तंत्रिका स्टेम/प्रोजेनिटर कोशिकाओं में दोलन तरीके से व्यक्त किया जाता है । क्योंकि इन जीनों की ऑसिलेक्टरी एक्सप्रेशन की अवधि बहुत कम (2 एच) होती है, इसलिए उनकी चक्रीय अभिव्यक्ति पर नजर रखना मुश्किल होता है। जीन अभिव्यक्ति या प्रोटीन गतिशीलता में इस तरह के तेजी से परिवर्तन की जांच करने के लिए, तेजी से प्रतिक्रिया संवाददाताओं की आवश्यकता है । अपनी तेजी से परिपक्वता गतिज और उच्च संवेदनशीलता के कारण, बायोल्यूमिनेसेंस रिपोर्टर लूसिफेरेज़ जीवित कोशिकाओं में तेजी से जीन अभिव्यक्ति परिवर्तन ों की निगरानी करने के लिए उपयुक्त है। हम प्रमोटर गतिविधि की निगरानी के लिए एक अस्थिर लूसिफ़ेरेज रिपोर्टर का इस्तेमाल किया और एकल सेल संकल्प पर प्रोटीन गतिशीलता की दृश्य के लिए एक लूसिफ़ेरेज-फ्यूज्ड रिपोर्टर । ये बायोल्यूमिनेसेंस रिपोर्टर्स तेजी से कारोबार दिखाते हैं और बहुत कमजोर संकेत पैदा करते हैं; इसलिए, हमने ऐसे बेहोश संकेतों का पता लगाने के लिए एक अत्यधिक संवेदनशील बायोल्यूमिनेसेंस इमेजिंग सिस्टम विकसित किया है। ये विधियां हमें जीवित कोशिकाओं और ऊतकों में विभिन्न जीन अभिव्यक्ति गतिशीलता की निगरानी करने में सक्षम बनाती हैं, जो वास्तविक सेलुलर राज्यों को समझने में मदद करने के लिए महत्वपूर्ण जानकारी हैं।

Introduction

स्तनधारी मस्तिष्क बड़ी संख्या में विभिन्न प्रकार के न्यूरॉन्स और ग्लियल कोशिकाओं से बना है। सभी कोशिकाएं तंत्रिका स्टेम/जनक कोशिकाओं (एनपीसी) से उत्पन्न होती हैं, जो पहले अपनी संख्या का विस्तार करने के लिए पैदा होती हैं, फिर न्यूरॉन्स में अंतर करना शुरू करती हैं, और अंत में ग्लियल कोशिकाओं को जन्म देती हैं1,2,3,4,5। एक बार कोशिकाओं को न्यूरॉन्स में अंतर कर दिया है, वे पैदा या अपनी संख्या में वृद्धि नहीं कर सकते हैं, और इसलिए, बाद के चरणों तक NPCs के रखरखाव महत्वपूर्ण है । सेल-सेल इंटरैक्शन के माध्यम से पायदान सिग्नलिंग एनपीसी6,7को बनाए रखने में महत्वपूर्ण भूमिका निभाता है । पायदान लिगांड पड़ोसी कोशिकाओं की सतह पर झिल्ली प्रोटीन, पायदान के साथ बातचीत करते हैं और नॉच प्रोटीन को सक्रिय करते हैं। सक्रियण के बाद, नॉच प्रोटीन का प्रोटेलियोलिसिस होता है, जिससे कोशिका झिल्ली से नॉभलियस8,9,10में नॉच (एनआईसीडी) के इंट्रासेल्युलर डोमेन को जारी किया जाता है। नाभिक में, एनआईसीडी Hes1 और Hes5 (Hes1/5)के प्रमोटर क्षेत्रों को बांधता है और इन जीन की अभिव्यक्ति को सक्रिय करता है । Hes1/5 प्रवण जीन Ascl1 और Neurogenin1/2 (Neurog1/2)11,12,13,14की अभिव्यक्ति को दबाना । क्योंकि प्रवण जीन न्यूरोनल भेदभाव को प्रेरित करते हैं, Hes1/5 एनपीसी को बनाए रखने में आवश्यक भूमिकाएं निभाते हैं । इसके अलावा, के रूप में प्रवण जीन पायदान लिगांड डेल्टा की अभिव्यक्ति को सक्रिय कर सकते है-like1 (Dll1), Hes1/5 भी Dll1की अभिव्यक्ति को दबाना । इसलिए, Dll1 की अभिव्यक्ति पड़ोसी कोशिकाओं को नॉच सिग्नलिंग के माध्यम से Dll1 के लिए नकारात्मक होने की ओर ले जाती है। इस तरह, कोशिकाएं आसन्न कोशिकाओं को उनके समान भाग्य का पालन करने से रोकती हैं, एक घटना जिसे पार्श्व अवरोध8के रूप में जाना जाता है। विकासशील मस्तिष्क में, पार्श्व अवरोध विभिन्न विभिन्न कोशिका प्रकारों को उत्पन्न करने में भूमिका निभाता है।

एकल कोशिका स्तर पर रीयल – टाइम इमेजिंग एनपीसी15,16,17में नॉच सिग्नलिंग के घटकों की गतिशील अभिव्यक्ति का पता चलता है । नॉच सिग्नलिंग Hes1की अभिव्यक्ति को सक्रिय करता है, लेकिन Hes1 प्रोटीन अपने प्रमोटर को बांधता है और अपनी अभिव्यक्ति को दबाता है। इसके अलावा, Hes1 एक अत्यंत अस्थिर प्रोटीन है, जो सर्वव्यापी-प्रोटेसोम मार्ग से अपमानित है; इसलिए, अपने स्वयं के प्रमोटर का दमन केवल अल्पकालिक होता है और फिर प्रतिलेखन फिर से शुरू होता है। इस तरह, Hes1 की अभिव्यक्ति 2 एच चक्र18में प्रतिलेखन और अनुवाद दोनों स्तरों पर दोलन करती है। हे1 की आदोलनीय अभिव्यक्ति,बदले में, आवधिक दमन15,16,17,19के माध्यम से एसीसीएल 1, न्यूरोजी2 और Dll1 जैसे डाउनस्ट्रीम लक्ष्य जीन की दोलन अभिव्यक्ति को प्रेरित करती है। जबकि प्रवण जीन न्यूरोनल भेदभाव को प्रेरित कर सकते हैं, उनकी दोलन अभिव्यक्ति न्यूरोनल भेदभाव के लिए पर्याप्त नहीं है; बल्कि उनकी निरंतर अभिव्यक्ति न्यूरोनल भेदभाव के लिए आवश्यक है। न्यूरोनल विभेदन14,15,16को प्रेरित करने के बजाय एनपीसी को बनाए रखने के लिए प्रवणीय जीन की आदोलनात्मक अभिव्यक्ति महत्वपूर्ण है । Dll1 की अभिव्यक्ति न्यूरोजेनेसिस और सोमिटोजेनेसिस जैसे विभिन्न मॉर्फोजेनेसिस के दौरान ट्रांसक्रिप्शन और ट्रांसलेशनल दोनों स्तरों पर दोलन करती है। Dll1 की गतिशील अभिव्यक्ति सामान्य मॉर्फोजेनेसिस के लिए महत्वपूर्ण है और Dll1 की स्थिर अभिव्यक्ति न्यूरोजेनेसिस और सोमिटोजेनेसिस17में दोषलाती है । ये निष्कर्ष विभिन्न विकासात्मक घटनाओं के नियमन पर जीन अभिव्यक्ति और प्रोटीन काइनेटिक्स की गतिशीलता वाले महत्वपूर्ण कार्य को प्रदर्शित करते हैं (यानी, विभिन्न अभिव्यक्ति गतिशीलता सेलुलर व्यवहार में विभिन्न आउटपुट का उत्पादन करती है)।

नॉच सिग्नलिंग की गतिशीलता का विश्लेषण करने के लिए, ऊतकों और कोशिकाओं का स्थिर विश्लेषण अपर्याप्त है क्योंकि वे लगातार बदल रहे हैं। एकल कोशिकाओं की वास्तविक समय इमेजिंग जीन अभिव्यक्ति में गतिशीलता को प्रकट करने के लिए एक शक्तिशाली उपकरण है। नॉच सिग्नलिंग अणुओं की गतिशील अभिव्यक्ति 2-3 घंटे की अवधि में तेजी से चक्रीय प्रतिक्रियाओं से गुजरती है। यह तेजी से आवधिक अभिव्यक्ति वास्तविक समय की निगरानी के लिए दो कठिन समस्याओं को प्रस्तुत करता है: (1) अणुओं की अभिव्यक्ति को निम्न स्तर तक दबा दिया जाता है, और (2) तेजी से कारोबार के लिए तेजी से प्रतिक्रिया संवाददाताओं की आवश्यकता होती है। इन समस्याओं को दूर करने के लिए, हमने पहले एक बायोल्यूमिनेसेंस रियल-टाइम इमेजिंग विधि20विकसित की थी। क्योंकि बायोल्यूमिनेसेंस रिपोर्टर फ्लोरोसेंट रिपोर्टर्स की तुलना में उच्च संवेदनशीलता और कम परिपक्वता समय है, यह रणनीति हमें जीवित कोशिकाओं में तेजी से गतिशीलता की निगरानी करने में सक्षम बनाती है। वास्तविक समय दृश्य का उपयोग करते हुए, हमने पाया कि अधिक जीन गतिशील अभिव्यक्ति का प्रदर्शन से हम पहले सोचा था । इसके अलावा, जीवित कोशिकाओं में अभिव्यक्ति और प्रोटीन गतिशीलता और विभिन्न जैविक घटनाओं में इन गतिशीलता के महत्व को दिखाने वाली रिपोर्टों की संख्या में वृद्धि हुई है, जो जीन अभिव्यक्तियों21,22में गतिशीलता की मौलिक भूमिका का सुझाव देता है।

इस रिपोर्ट में, हम दोनों विसोसिएटसंस्कृतियों और कॉर्टिकल स्लाइस संस्कृतियों में एनपीसी में नॉच लिगांड Dll1 की अभिव्यक्ति की कल्पना करने के लिए एक तरीका का वर्णन करते हैं । एकल सेल स्तर पर Dll1 प्रतिलेखन की गतिशीलता की निगरानी करने के लिए, हमने पीडीसी1-यूबी-फ्लूक रिपोर्टर, एक Dll1 प्रमोटर संचालित अस्थिर लूसिफ़ेरे रिपोर्टर को ले जाने वाले ट्रांसजेनिक चूहों के भ्रूण टेलेंसेफेलोन से प्राप्त एनपीसी की विसोशिएट संस्कृतियों को उत्पन्न किया। वीवो में Dll1 प्रोटीन गतिशीलता की निगरानी के लिए, हमने कॉर्टेक्स में एनपीसी में Dll1-Fluc फ्यूजन रिपोर्टर पेश किया और कॉर्टिकल स्लाइस संस्कृतियों में एनपीसी में रिपोर्टर की अभिव्यक्ति की कल्पना की । रीयल-टाइम इमेजिंग ने हमें उच्च लौकिक संकल्प पर जीवित कोशिकाओं में जीन अभिव्यक्ति और प्रोटीन गतिशीलता की विभिन्न विशेषताओं को पकड़ने में सक्षम बनाया।

Protocol

क्योटो विश्वविद्यालय के फ्रंटियर लाइफ एंड मेडिकल साइंसेज संस्थान में संस्थागत पशु देखभाल और उपयोग समिति द्वारा पशु विषयों सहित सभी प्रक्रिया को अनुमोदित किया गया है । 1. बायोल्यूमिनेसेंस र…

Representative Results

जीन Hes1/7 के भाव विभिन्न कोशिका रेखाओं में और सोमिटोजेनेसिस के दौरान 2 एच दोलन चक्र प्रदर्शित करते हैं । इसके अलावा, दोलन की अवधि बहुत कम है और उनके mRNAs और प्रोटीन दोनों लगभग 20 min के आधे जीवन के साथ बेहद अस्थ…

Discussion

नॉच सिग्नलिंग के घटक सोमिटोजेनेसिस के दौरान सिंक्रोनी में दोलन अभिव्यक्ति दिखाते हैं लेकिन न्यूरोजेनेसिस के दौरान सिंक्रोनी से बाहर होते हैं, जिससे बाद के मामले में स्थिर विश्लेषण द्वारा अभिव्यक्त…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

हम वीडियो के उत्पादन का समर्थन करने के लिए Yumiko Iwamoto शुक्रिया अदा करते हैं । हम इमेज एनालिसिस की चर्चा और समर्थन के लिए अकिहिरो इसोमुरा के आभारी भी हैं, ट्रांसजेनिक जानवरों की पीढ़ी के लिए तकनीकी समर्थन के लिए हितोशी मियाची, युजी शिंजो (ओलंपस मेडिकल साइंस), मासातोशी इगावा (ओलंपस मेडिकल साइंस), ताकुया इशिज़ु (ओलंपस मेडिकल साइंस), ताकुया इशिज़ु ( ओलंपस मेडिकल साइंस) और ओइन कुनिताकी (एंडोर जापान) बायोल्यूमिनेसेंस इमेजिंग सिस्टम की तकनीकी सहायता और चर्चाओं के लिए। इस काम को कोर रिसर्च फॉर इवोल्यूशनल साइंस एंड टेक्नोलॉजी (जेपीएमजेसीआर12डब्ल्यू2) (आरके), इनोवेटिव एरियापर साइंटिफिक रिसर्च के लिए ग्रांट-इन-एड (एचएस के लिए एमईएक्सटी 24116705 और आरकेएस के लिए एमईएक्सटी 16एच06480), ग्रांट-इन-एड फॉर साइंटिफिक रिसर्च (सी) (जेएसपीएस) द्वारा समर्थित किया गया था। 18K06254) (एचएस), Takeda फाउंडेशन (आरके और एचएस), और शिक्षा, संस्कृति, खेल, विज्ञान और प्रौद्योगिकी, जापान मंत्रालय से रहने की प्रणाली के लिए गतिशील दृष्टिकोण के लिए मंच ।

Materials

Bioluminescence Imaging System
Chilled water circulator (chiller) Julabo Model: F12-ED
Cooled CCD camera Andor Technology Model: iKon-M 934
Incubator system TOKAI HIT Model: INU-ONICS
Inverted microscope Olympus Model: IX81
Inverted microscope Olympus Model: IX83
LED illumination device CoolLED Model: pE1
MetaMorph MOLECULAR DEVICES Model: 40000
Mix gas controller Tokken Model: TK-MIGM OLO2
Objective lens Olympus Model: UPLFLN 40X O
Preparations for Dissection
Dissection microscope Nikon Model: SMZ-2B
Fluorescence stereoscopic microscope Leica Model: MZ16FA
Fine forceps DUMONT INOX No.5
Scissors, Micro scissors
Forceps
Ring-shaped forceps
10-cm plastic petri dish greiner 664160-013
35-mm plastic petri dish greiner 627160
PBS Nacalai Tesque 14249-24
DMEM/F12 invitrogen 11039-021
Reagents for NPC dissociation culture
B27 supplement invitrogen 12587-010
bFGF invitrogen 13256-029 Stock solution: 1 μg/ml in 0.1% BSA/PBS
D-luciferin Nacalai Tesque 01493-85 Stock solution: 100mM in 0.9% saline
DNase Worthington Biochemical Corporation LK003172 Stock solution: 1000U/ml in EBSS
EBSS Worthington Biochemical Corporation LK003188
Glass bottom dish IWAKI 3910-035
N2 supplement (100x) invitrogen 17502-048
N-acetyl-cystein Sigma A-9165-25G
Papain Worthington Biochemical Corporation LK003178 Stock solution: 7U/ml in EBSS
Penicillin/Streptmycine Nacalai Tesque 09367-34
Poly-L-lysine Sigma P-6281 40 mg/ml in DW
Preparations for in utero electroporation
50-ml syringe TERUMO 181228T
Electrode Neppagene 7-mm
Electroporator Neppagene CUY21 EDIT
Forceps
Gauzes Kawamoto co. 7161
Micro capillary Made in-house
PBS Nacalai Tesque 14249-24
Pentbarbital Kyoritsuseiyaku Somnopentyl
Ring-shaped forceps
Scissors, Micro scissors
Suture needle Akiyama MEDICAL MFG. CO F17-40B2
Xylazine Bayer Seractal
Preparations for Slice culture
10-cm plastic petri dish greiner 664160-013
35-mm plastic petri dish greiner 627160
Culture insert Millipore PICM01250
DMEM/F12 invitrogen 11039-021
Fetal Bovine Serum Sigma 172012-500ML
Fine forceps DUMONT INOX No.5
Forceps
Horse Serum Gibco 16050-122
Micro surgical knife Alcon 19 Gauge V-Lance
Multi-gas incubator Panasonic MCO-5MUV-PJ
N2/B27 media Made in-house ref. NPC dissociatioin culture
PBS Nacalai Tesque 14249-24
Ring-shaped forceps
Scissors, Micro scissors
Silicon rubber cutting board Made in-house

Referências

  1. Ross, S. E., Greenberg, M. E., Stiles, C. D. Basic helix-loop-helix factors in cortical development. Neuron. 39, 13-25 (2003).
  2. Pontious, A., Kowalczyk, T., Englund, C., Hevner, R. F. Role of intermediate progenitor cells in cerebral cortex development. Developmental Neuroscience. 30, 24-32 (2007).
  3. Kriegstein, A., Alvarez-Buylla, A. The glial nature of embryonic and adult neural stem cells. Annual Review of Neuroscience. 32, 149-184 (2009).
  4. Paridaen, J. T., Huttner, W. B. Neurogenesis during development of the vertebrate central nervous system. EMBO Reports. 15, 351-364 (2014).
  5. Taverna, E., Götz, M., Huttner, W. B. The cell biology of neurogenesis: toward an understanding of the development and evolution of the neocortex. Annual Review of Cell and Developmental Biology. 30, 465-502 (2014).
  6. Louvi, A., Artavanis-Tsakonas, S. Notch signaling in vertebrate neural development. Nature Reviews Neuroscience. 7, 93-102 (2006).
  7. Pierfelice, T., Alberi, L., Gaiano, N. Notch in the Vertebrate Nervous System: An Old Dog with New Tricks. Neuron. 69, 840-855 (2011).
  8. Bray, S. Notch signalling: a simple pathway becomes complex. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 7, 678-689 (2006).
  9. Bray, S. Notch signalling in context. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 17, 722-735 (2016).
  10. Kopan, R., Ilagan, M. X. G. The Canonical Notch Signaling Pathway: Unfolding the Activation Mechanism. Cell. 137, 216-233 (2009).
  11. Ishibashi, M., et al. Persistent expression of helix-loop-helix factor HES-1 prevents mammalian neural differentiation in the central nervous system. The EMBO Journal. 13, 1799-1805 (1994).
  12. Ohtsuka, T., et al. Hes1 and Hes5 as notch effectors in mammalian neuronal differentiation. The EMBO Journal. 18, 2196-2207 (1999).
  13. Ohtsuka, T., Sakamoto, M., Guillemot, F., Kageyama, R. Roles of the Basic Helix-Loop-Helix Genes Hes1 and Hes5 in Expansion of Neural Stem Cells of the Developing Brain. Journal of Biological Chemistry. 276, 30467-30474 (2001).
  14. Kageyama, R., Ohtsuka, T., Kobayashi, T. The Hes gene family: repressors and oscillators that orchestrate embryogenesis. Development. 134, 1243-1251 (2007).
  15. Shimojo, H., Ohtsuka, T., Kageyama, R. Oscillations in Notch Signaling Regulate Maintenance of Neural Progenitors. Neuron. 58, 52-64 (2008).
  16. Imayoshi, I., et al. Oscillatory control of factors determining multipotency and fate in mouse neural progenitors. Science. 342, 1203-1208 (2013).
  17. Shimojo, H., et al. Oscillatory control of Delta-like1 in cell interactions regulates dynamic gene expression and tissue morphogenesis. Genes and Development. 30, 102-116 (2016).
  18. Hirata, H., et al. Oscillatory expression of the bHLH factor Hes1 regulated by a negative feedback loop. Science. 298, 840-843 (2002).
  19. Kageyama, R., Ohtsuka, T., Shimojo, H., Imayoshi, I. Dynamic Notch signaling in neural progenitor cells and a revised view of lateral inhibition. Nature Neuroscience. 11, 1247-1251 (2008).
  20. Masamizu, Y., et al. Real-time imaging of the somite segmentation clock: revelation of unstable oscillators in the individual presomitic mesoderm cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103, 1313-1318 (2006).
  21. Levine, J. H., Lin, Y., Elowitz, M. B. Functional roles of pulsing in genetic circuits. Science. 342, 1193-1200 (2013).
  22. Purvis, J. E., Lahav, G. Encoding and decoding cellular information through signaling dynamics. Cell. 152, 945-956 (2013).
  23. Luker, G. D., Pica, C. M., Song, J., Luker, K. E., Piwnica-Worms, D. Imaging 26S proteasome activity and inhibition in living mice. Nature Medicine. 9, 969-973 (2003).
  24. Yamaguchi, S., et al. Synchronization of Cellular Clocks in the Suprachiasmatic Nucleus. Science. 302, 1408-1412 (2003).
  25. Kiyohara, Y. B., et al. The BMAL1 C terminus regulates the circadian transcription feedback loop. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103, 10074-10079 (2006).
  26. Behar, M., Hoffmann, A. Understanding the temporal codes of intra-cellular signals. Current Opinion in Genetics and Development. 20, 684-693 (2010).
  27. Elowitz, M. B., Levine, A. J., Siggia, E. D., Swain, P. S. Stochastic Gene Expression in a Single Cell. Science. 297, 1183-1186 (2002).
  28. Nelson, D. E., et al. Oscillations in NF-kappaB signaling control the dynamics of gene expression. Science. 306, 704-708 (2004).
  29. Purvis, J. E., et al. p53 dynamics control cell fate. Science. 336, 1440-1444 (2012).
  30. Hansen, A. S., O’Shea, E. K. Promoter decoding of transcription factor dynamics involves a trade-off between noise and control of gene expression. Molecular Systems Biology. 9, 704 (2014).
  31. Hansen, A. S., O’Shea, E. K. cis Determinants of Promoter Threshold and Activation Timescale. Cell Reports. 12, 1226-1233 (2015).
  32. Johnson, H. E., Toettcher, J. E. Signaling Dynamics Control Cell Fate in the Early Drosophila Embryo. Developmental Cell. 48, 361-370 (2019).
  33. Badr, C. E., Tannous, B. A. Bioluminescence imaging: Progress and applications. Trends in Biotechnology. 29, 624-633 (2011).
  34. Nakajima, Y., Ohmiya, Y. Bioluminescence assays: multicolor luciferase assay, secreted luciferase assay and imaging luciferase assay. Expert Opinion on Drug Discovery. 5, 835-849 (2010).
  35. Nakajima, Y., et al. Enhanced beetle luciferase for high-resolution bioluminescence imaging. PLoS One. 5, (2010).
  36. Stacer, A. C., et al. NanoLuc reporter for dual luciferase imaging in living animals. Molecular Imaging. 12, (2013).
check_url/pt/60455?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Shimojo, H., Kageyama, R. Real-time Bioluminescence Imaging of Notch Signaling Dynamics during Murine Neurogenesis. J. Vis. Exp. (154), e60455, doi:10.3791/60455 (2019).

View Video