Summary

Erfassung der Herzverletzungsreaktion von gezielten Zellpopulationen über cleared Heart Three-Dimensional Imaging

Published: March 17, 2020
doi:

Summary

Die Proliferation von Cardiomyozyten nach einer Verletzung ist ein dynamischer Prozess, der eine Symphonie extrazellulärer Hinweise aus Nicht-Myozyten-Zellpopulationen erfordert. Mit Lineage-Tracing, passiven CLARITY und dreidimensionalen konfokalen Mikroskopie-Techniken mit ganzer Montage können wir den Einfluss einer Vielzahl von Zelltypen auf die Herzreparatur und -regeneration analysieren.

Abstract

Herz-Kreislauf-Erkrankungen übertreffen alle anderen Todesursachen und sind für unglaubliche 31 % der Todesfälle weltweit verantwortlich. Diese Krankheit manifestiert sich bei Herzverletzungen, in erster Linie in Form eines akuten Myokardinfarkts. Mit wenig Resilienz nach Verletzungen wird das einst gesunde Herzgewebe durch faseriges, nicht kontraktiles Narbengewebe ersetzt und ist oft ein Vorspiel zu Herzinsuffizienz. Um neue Behandlungsmöglichkeiten in der regenerativen Medizin zu identifizieren, konzentrierte sich die Forschung auf Wirbeltiere mit angeborenen regenerativen Fähigkeiten. Ein solcher Modellorganismus ist die Neonatalmaus, die auf Herzverletzungen mit robuster Myokardregeneration reagiert. Um eine Verletzung bei der neonatalen Maus zu induzieren, die klinisch relevant ist, haben wir eine Operation entwickelt, um die linke vordere absteigende Arterie (LAD) zu verdecken, die einen Myokardinfarkt widerspiegelt, der durch Arteriosklerose im menschlichen Herzen ausgelöst wird. In Verbindung mit der Technologie, um Veränderungen sowohl innerhalb von Kardiomyozyten als auch innerhalb von Nicht-Myozytenpopulationen zu verfolgen, bietet uns dieses Modell eine Plattform, um die Mechanismen zu identifizieren, die die Herzregeneration leiten. Einblicke in Veränderungen der Herzzellpopulationen nach Verletzungen stützten sich einst stark auf Methoden wie Gewebeschnitt und histologische Untersuchung, die sich auf zweidimensionale Analysen beschränken und dabei oft das Gewebe schädigen. Darüber hinaus ist es diesen Methoden nicht in der Lage, Veränderungen in Zelllinien nachzuverfolgen, anstatt lediglich eine Momentaufnahme der Verletzungsreaktion bereitzustellen. Hier beschreiben wir, wie technologisch fortschrittliche Methoden in Linienverfolgungsmodellen, ganzer Organreinigung und dreidimensionaler (3D) Vollmontagemikroskopie eingesetzt werden können, um Mechanismen der Herzreparatur aufzuklären. Mit unserem Protokoll für die Operation an Myokardinfarktoperationen der Neonatalen Maus, die Gewebereinigung und die 3D-Gesamteorganbildgebung können die komplexen Wege, die die Kardiomyozytenproliferation induzieren, entwirrt werden, was neue therapeutische Ziele für die Herzregeneration enthüllt.

Introduction

Das Herz gilt seit langem als ein post-mitotisches Organ, aber neuere Beweise zeigen, dass Kardiomyozyten-Erneuerung tritt im erwachsenen menschlichen Herzen bei etwa 1% pro Jahr1. Jedoch, Diese niedrigen Raten der Kardiomyozyten Umsatz sind nicht ausreichend, um den massiven Verlust von Gewebe, die nach Verletzungen auftritt wieder aufzufüllen. Ein Herz, das einen Myokardinfarkt erlitten hat, wird etwa eine Milliarde Kardiomyozyten verlieren, die oft als Vorspiel zu Herzinsuffizienz und plötzlichem Herztod dienen2,3. Mit über 26 Millionen Menschen, die weltweit von Herzinsuffizienz betroffen sind, besteht ein unerfüllter Bedarf an Therapeutika, die die durch Herzerkrankungen verursachten Schäden umkehren können4.

Um diese Lücke in der Therapeutik zu überbrücken, haben Wissenschaftler begonnen, evolutionär konservierte Mechanismen zu untersuchen, die der endogene Regeneration nach Verletzungen zugrunde liegen. Ein Modell zur Untersuchung der Herzregeneration von Säugetieren ist die Neonatalmaus. In der Woche nach der Geburt haben neonatale Mäuse eine robuste regenerative Reaktion nach Herzschäden5. Wir haben bereits gezeigt, dass neonatale Mäuse ihr Herz durch Kardiomyozytenproliferation nach einer apikalen Resektionregenerierenkönnen 5 . Obwohl diese Technik die Herzregeneration bei den Neonaten hervorrufen kann, fehlt es der Operation an klinischer Relevanz für menschliche Herzverletzungen. Um eine menschliche Verletzung im neonatalen Mausmodell nachzuahmen, haben wir eine Technik entwickelt, um einen Myokardinfarkt durch einen koronaren Arterienverschluss6zu induzieren. Diese Technik erfordert eine chirurgische Ligation der linken vorderen absteigenden Arterie (LAD), die für die Abgabe von 40%–50% des Blutes an das linksventrikuläre Myokard6,7verantwortlich ist. So führt die Operation zu einem Infarkt, der einen erheblichen Teil der linken ventrikulären Wand trifft. Diese Schädigung des Myokards stimuliert die Kardiomyozytenproliferation und Herzregeneration bei Neonaten5.

Die koronare Arterienverschlusschirurgie bietet eine hochreproduzierbare und direkt translationale Methode, um das Innenleben der Herzregeneration aufzudecken. Die neonatale Chirurgie parallel koronare Arterien-Atherosklerose im menschlichen Herzen, wo Ansammlung von Plaque in den inneren Wänden der Arterien kann eine Okklusion und nachfolgenden Myokardinfarktverursachen 8. Aufgrund einer Lücke in der therapeutischen Behandlung von Herzinsuffizienz-Patienten ist ein Okklusion im LAD mit Sterblichkeitsraten verbunden, die innerhalb eines Jahres nach der Verletzung9bis zu 26% erreichen, und wurde daher als “Witwenmacher” bezeichnet. Fortschritte in der Therapeutik erfordern ein Modell, das die komplexen physiologischen und pathologischen Auswirkungen von Herzverletzungen genau widerspiegelt. Unser chirurgisches Protokoll für neonatale Mausherzverletzungen bietet eine Plattform, die es Forschern ermöglicht, die molekularen und zellulären Hinweise zu untersuchen, die die Herzregeneration von Säugetieren nach einer Verletzung signalisieren.

Jüngste Forschungen zeigen die dynamische Beziehung zwischen der extrazellulären Umgebung und sich ausbreitenden Kardiomyozyten. Beispielsweise kann das postnatale regenerative Fenster erweitert werden, indem die Steifigkeit der extrazellulären Matrix um das Herz10verringert wird. Biomaterialien aus der neonatalen extrazellulären Matrix können auch die Herzregeneration in erwachsenen Säugetierherzen nach einer Herzverletzung fördern11. Auch die begleitende Proliferation von Kardiomyozyten ist eine angiogene Reaktion12,13; Kollateralarterienbildung, die nur für das regenerierende Herz der Neonatalmaus einzigartig ist, erwies sich als wesentlich für die Stimulierung der Herzregeneration12. Darüber hinaus hat unser Labor gezeigt, dass die Nervensignalisierung die Proliferation der Kardiomyozyten und die Herzregeneration durch Modulation der Wachstumsfaktorspiegel sowie die Entzündungsreaktion nach Derverletzung14reguliert. Diese Ergebnisse unterstreichen die Notwendigkeit, nicht-Myozyten-Zellpopulationen als Reaktion auf Herzverletzungen zu verfolgen. Um dieses Ziel zu erreichen, haben wir das Cre-lox-Rekombinationssystem in transgenen Mäuselinien genutzt, um die konstitutive oder bedingte Expression fluoreszierender Reporterproteine für die Linienverfolgung zu integrieren. Darüber hinaus können wir fortschrittliche Methoden verwenden, um die klonale Expansionsmusterung mit der Regenbogen-Mauslinie zu bestimmen, die auf der stochastischen Expression der cre-abhängigen, mehrfarbigen fluoreszierenden Reporter beruht, um die klonale Expansion von Zielzellpopulationen zu bestimmen15. Die Verwendung von Linienverfolgung enden mit der neonatalen koronaren Arterienverschlusschirurgie ist ein leistungsfähiges Werkzeug, um die komplizierten zellulären Mechanismen der Herzregeneration zu sezieren.

Die Verfolgung der Abstammung fluoreszierend markierter Zellen mit dreidimensionaler (3D) Ganzkörperbildgebung ist mit der traditionellen Schnitt- und Rekonstruktionstechnik schwer zu erreichen – insbesondere dann, wenn Zellpopulationen zerbrechlich sind, wie Nervenfasern oder Blutgefäße. Während eine direkte Ganzkörperbildgebung des Organs durch optische Steilerstellung oberflächliche Zellpopulationen erfassen kann, bleiben Strukturen, die tief im Gewebe liegen, unzugänglich. Um diese Barrieren zu umgehen, wurden Geweberäumtechniken entwickelt, um die Opazität ganzer Organgewebe zu reduzieren. In jüngster Zeit wurden signifikante Fortschritte bei Clear Lipid-ausgetauschten Acrylamid-hybridisierten Rigid Imaging-kompatiblen Tissue hYdrogel (CLARITY)-basierten Methoden gemacht, die festes Gewebe über die Lipidextraktion16ablöschen. Es werden auch Schritte unternommen, um den Brechungsindex zu homogenisieren und anschließend die Lichtstreuung während der Bildgebung zu reduzieren17. Eine solche Methode ist die aktive CLARITY, die die Lipidzersetzung durch Elektrophorese beschleunigt, um das Waschmittel im gesamten Gewebe zu durchdringen18. Obwohl diese Geweberäummethode wirksam ist, erfordert sie teure Geräte und kann Gewebeschäden verursachen, wodurch der Ansatz mit empfindlichen Zellpopulationen wie den Herznerven 19 unvereinbarist. So verwenden wir den passiven CLARITY-Ansatz, der auf Wärme angewiesen ist, um das Eindringen von Reinigungsmitteln sanft zu erleichtern und so bei der Retention komplizierter Zellstrukturen zu helfen20,21.

Passive CLARITY wird in der Regel als weniger effizient als aktive CLARITY18, da die Technik wird oft von zwei Haupthindernissen begleitet: die Unfähigkeit, die gesamte Organtiefe zu löschen und die große Menge an Zeit benötigt, um erwachsene Gewebe zu löschen. Unser passiver CLARITY-Ansatz überwindet diese beiden Barrieren mit einem beschleunigten Clearing-Prozess, der in der Lage ist, neonatales und erwachsenes Herzgewebe vollständig zu beseitigen. Unsere passive CLARITY Gewebeclearing-Technik hat eine Effizienz erreicht, die die Visualisierung einer Vielzahl von Herzzellpopulationen ermöglicht, einschließlich seltener Populationen, die im erwachsenen Herzen verteilt sind. Wenn das gelöschte Herz mit konfokaler Mikroskopie abgebildet wird, kann die Architektur der zellspezifischen Musterung während der Entwicklung, Krankheit und Regeneration beleuchtet werden.

Protocol

Alle Experimente wurden in Übereinstimmung mit dem Guide for the Use and Care of Laboratory Animals und in Übereinstimmung mit dem Institutional Animal Care and Use Committee in der School of Medicine and Public Health der University of Wisconsin-Madison durchgeführt. Alle Methoden wurden auf Wildtyp C57BL/6J (B6) und transgenen Mauslinien von Jackson Laboratories durchgeführt. 1. Koronare Arterienokklusion (Myokardinfarkt) Induziert durch Ligation der linken vorderen absteigenden Arterie (L…

Representative Results

Oft führen die beiden anspruchsvollsten Schritte das Herz aus der Brusthöhle und ligan den LAD. Um diese Schritte zu beheben, können Anpassungen bei der Platzierung der anfänglichen Punktion zwischen den vierten interkostalen Muskeln vorgenommen werden; Wenn die Punktion und die stumpfe Sezierung zu nah am Brustbein sind, kann das Herz die Brusthöhle möglicherweise nicht verlassen (Abbildung 1A). Zusätzlich kann ein erhöhter Druck auf den …

Discussion

Zell-Zell-Wechselwirkungen zwischen Kardiomyozyten und Nicht-Myozytenpopulationen sind ein entscheidender Faktor dafür, ob das Herz nach verletzungen fibrosis oder repariert wird. Es wurden Entdeckungen gemacht, die zeigen, dass eine Vielzahl von Zelltypen, einschließlich Nerven14, Epikardialzellen24, Peritonealmakrophagen25, Arteriole12,13und lymphatische Endothelzellen26…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Die Finanzierung dieses Projekts wurde von der UW School of Medicine and Public Health aus dem Wisconsin Partnership Program (A.I.M.) und einem American Heart Association Career Development Award 19CDA34660169 (A.I.M.) bereitgestellt.

Materials

1-thioglycerol
6-0 Prolene Sutures Ethicon 8889H Polypropylene Sutures
Acrylamide
Boric acid
Curved Forceps Excelta 16-050-146 Half Curved, Serrated, 4 in
Dressing Forceps Fisherbrand 13-812-39 Dissecting, 4.5 in
Glass Vial Fisherbrand 03-339-26A 12 x 35 mm Vial with Cap
Histodenz Sigma-Aldrich Density gradient medium
Iridectomy Scissors Fine Science Tools 15000-03 2 mm Cutting Edge
Large Dissecting Scissors Fisherbrand 08-951-20 Straight, 6 in
Needle Holder Fisherbrand 08-966 Mayo-Hegar, 6 in
Paraformaldehyde
Phosphate Buffer
Sharp Forceps Sigma-Adrich Z168777 Fine Tip, Straight, 4.25 in
Small Dissecting Scissor Walter Stern Inc 25870-002 30 mm Cutting Edge
Sodium Azide
Sodium Dodecyl Sulfate (SDS)
Tissue Forceps Excelta 16050133 Medium Tissue, 1X2 Teeth
VA-044 Wako Chemicals Water-soluble azo initiator

Referências

  1. Lazar, E., Sadek, H. A., Bergmann, O. Cardiomyocyte renewal in the human heart: insights from the fall-out. European Heart Journal. 38 (30), 2333-2342 (2017).
  2. Kikuchi, K., Poss, K. D. Cardiac regenerative capacity and mechanisms. Annual Review of Cell and Developmental Biology. 28, 719-741 (2012).
  3. Habecker, B. A., et al. Molecular and cellular neurocardiology: development, and cellular and molecular adaptations to heart disease. The Journal of Physiology. 594 (14), 3853-3875 (2016).
  4. Savarese, G., Lund, L. H. Global Public Health Burden of Heart Failure. Cardiac Failure Review. 3 (1), 7-11 (2017).
  5. Porrello, E. R., et al. Transient regenerative potential of the neonatal mouse heart. Science. 331 (6020), 1078-1080 (2011).
  6. Mahmoud, A. I., Porrello, E. R., Kimura, W., Olson, E. N., Sadek, H. A. Surgical models for cardiac regeneration in neonatal mice. Nature Protocols. 9 (2), 305-311 (2014).
  7. Karwowski, J., et al. Relationship between infarct artery location, acute total coronary occlusion, and mortality in STEMI and NSTEMI patients. Polish Archives of Internal Medicine. 127 (6), 401-411 (2017).
  8. Lusis, A. J. Atherosclerosis. Nature. 407 (6801), 233-241 (2000).
  9. MAGGIC. The survival of patients with heart failure with preserved or reduced left ventricular ejection fraction: an individual patient data meta-analysis. European Heart Journal. 33 (14), 1750-1757 (2012).
  10. Notari, M., et al. The local microenvironment limits the regenerative potential of the mouse neonatal heart. Science Advances. 4 (5), 5553 (2018).
  11. Porrello, E. R., et al. Regulation of neonatal and adult mammalian heart regeneration by the miR-15 family. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (1), 187-192 (2013).
  12. Das, S., et al. A Unique Collateral Artery Development Program Promotes Neonatal Heart Regeneration. Cell. 176 (5), 1128-1142 (2019).
  13. Wang, Z., et al. Decellularized neonatal cardiac extracellular matrix prevents widespread ventricular remodeling in adult mammals after myocardial infarction. Acta Biomateria. 87, 140-151 (2019).
  14. Mahmoud, A. I., et al. Nerves Regulate Cardiomyocyte Proliferation and Heart Regeneration. Developmental Cell. 34 (4), 387-399 (2015).
  15. Yanai, H., Tanaka, T., Ueno, H. Multicolor lineage tracing methods and intestinal tumors. Journal of Gastroenterology. 48 (4), 423-433 (2013).
  16. Ariel, P. A beginner’s guide to tissue clearing. The International Journal of Biochemistry & Cell Biology. 84, 35-39 (2017).
  17. Chung, K., et al. Structural and molecular interrogation of intact biological systems. Nature. 497 (7449), 332-337 (2013).
  18. Epp, J. R., et al. Optimization of CLARITY for Clearing Whole-Brain and Other Intact Organs. eNeuro. 2 (3), (2015).
  19. Lee, H., Park, J. H., Seo, I., Park, S. H., Kim, S. Improved application of the electrophoretic tissue clearing technology, CLARITY, to intact solid organs including brain, pancreas, liver, kidney, lung, and intestine. BMC Developmental Biol. 14, 48 (2014).
  20. Wan, P., et al. Evaluation of seven optical clearing methods in mouse brain. Neurophotonics. 5 (3), 035007 (2018).
  21. Phillips, J., et al. Development of passive CLARITY and immunofluorescent labelling of multiple proteins in human cerebellum: understanding mechanisms of neurodegeneration in mitochondrial disease. Scientific Reports. 6, 26013 (2016).
  22. Blom, J. N., Lu, X., Arnold, P., Feng, Q. Myocardial Infarction in Neonatal Mice, A Model of Cardiac Regeneration. Journal of Visualized Experiments. (111), e54100 (2016).
  23. Sereti, K. I., et al. Analysis of cardiomyocyte clonal expansion during mouse heart development and injury. Nature Communications. 9 (1), 754 (2018).
  24. Lepilina, A., et al. A dynamic epicardial injury response supports progenitor cell activity during zebrafish heart regeneration. Cell. 127 (3), 607-619 (2006).
  25. Wang, J., Kubes, P. A Reservoir of Mature Cavity Macrophages that Can Rapidly Invade Visceral Organs to Affect Tissue Repair. Cell. 165 (3), 668-678 (2016).
  26. Vieira, J. M., et al. The cardiac lymphatic system stimulates resolution of inflammation following myocardial infarction. Journal of Clinical Investigation. 128 (8), 3402-3412 (2018).

Play Video

Citar este artigo
Salamon, R. J., Zhang, Z., Mahmoud, A. I. Capturing the Cardiac Injury Response of Targeted Cell Populations via Cleared Heart Three-Dimensional Imaging. J. Vis. Exp. (157), e60482, doi:10.3791/60482 (2020).

View Video