Summary

Visualisering og analyse av farynle arterier ved hjelp av hele mount immunohistokjemi og 3D rekonstruksjon

Published: March 31, 2020
doi:

Summary

Her beskriver vi en protokoll for å visualisere og analysere de faryngeale buearteriene 3, 4 og 6 av museembryoer ved hjelp av hele mount immunofluorescens, vevsydding, konfokal mikroskopi og 3D-rekonstruksjon.

Abstract

Feil dannelse eller ombygging av farynleskearteriene (PAAer) 3, 4 og 6 bidrar til noen av de mest alvorlige formene for medfødt hjertesykdom. For å studere dannelsen av PAAer utviklet vi en protokoll ved hjelp av hele mount immunofluorescens kombinert med benzylalkohol/benzylbenzoat (BABB) vevsrydding og konfokal mikroskopi. Dette gjør det mulig for visualisering av faryngitteret i enfin cellulær oppløsning samt 3D-tilkoblingen til vaskulaturen. Ved hjelp av programvare har vi etablert en protokoll for å kvantifisere antall endotelceller (ECer) i PAAer, samt antall ECer i vaskulær plexus rundt PAAer innenfor farynlesbuer 3, 4 og 6. Når den brukes på hele embryoet, gir denne metodikken en omfattende visualisering og kvantitativ analyse av embryonalvaskulatur.

Introduction

Under museembryogenese oppstår faryngeal erkearterier (PAAer) som symmetriske, tosidige par arterier som forbinder hjertet med den dorsal aortae1. Som embryoet utvikler seg, gjennomgår de første og andre parpaene av PAAs regress, mens 3rd, 4th, og 6th PAAs gjennomgår en rekke asymmetriske remodeling hendelser for å danne aortaerinarteriene2.

PaAs 3, 4 og 6 utvikler seg via vaskuogenese, som er de novo-dannelsen av blodkar3. Defekter i dannelsen eller ombygging av disse erkearteriene gir opphav til ulike medfødte hjertefeil, slik som de som er sett hos pasienter med DiGeorge syndrom4,5. Derfor kan forståelse av mekanismer som regulerer utviklingen av PAAer føre til en bedre forståelse av medfødt hjertesykdom (CHD) etiologi.

Nåværende tilnærminger for visualisering og analyse av PAA-utvikling inkluderer immunfluorescens av vevsseksjoner, vaskulære støperier, India blekkinjeksjon, høy oppløsning episkopisk mikroskopi, og / eller helmontert immunohistochemistry1,4,5,6,7. Her beskriver vi en protokoll som kombinerer hele mount immunofluorescens, konfokal mikroskopi og 3D-bildegjengivelse for å samle inn, analysere og kvantifisere volumetriske data, vaskulær tilkobling og celleidentitet. Videre beskriver vi en metode for å compartmentalize og kvantifisere antall ECer i hver faryngeal bue som et middel til å studere dannelsen av faryngeal bue vaskulær plexus og dens ombygging i PAAs. Mens denne protokollen er designet for å analysere PAA-utvikling, kan den brukes til å analysere andre utviklende vaskulære nettverk.

Protocol

Dyrebruk og prosedyrer ble godkjent av Institutional Animal Care and Use Committee ved Rutgers University. 1. Utarbeidelse av løsninger Forbered 1 L fosfatbufret saltvann med 0,1% Triton-X-100 (PBST) og filtersteriliser. Denne løsningen kan lagres ved romtemperatur (RT) i minst et år. Forbered 600 μL blokkeringsbuffer bestående av 10 % av det normale eselserumet i PBST. Gjør denne løsningen frisk hver gang. Forbered 50 ml av følgende metanol (MeOH) fortynn…

Representative Results

Den helmonterte immunofluorescensprotokollen som presenteres her, gir klare og rene resultater, noe som åpner for 3D-rekonstruksjon av farynleerendotel, som sett i figur 1A. Det er viktig å inkubere embryoer i tilstrekkelig tid i hver antistoffløsning for å sikre fullstendig penetrasjon gjennom prøven, samt grundig vasking av embryoer etter antistoffinkubasjon. I figur 1Bvises store, lyse pr…

Discussion

Evnen til å visualisere endotelet i museembryoer i 3D har gitt ny innsikt i deres utvikling3. Her presenterer vi en protokoll som muliggjør høyoppløselig 3D-avbildning av embryoer, visualisering av vaskulær tilkobling og kvantitative analyser av PAA-dannelse. Denne protokollen kan brukes for å se hvordan genetiske endringer eller miljøfornærmelser påvirker PAA-utviklingen. Prosedyren som rapporteres her bruker antistoffer mot VEGFR2 og ERG for å visualisere PAA-dannelse og kvantifisere E…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker Brianna Alexander, Caolan O’Donnell og Michael Warkala for nøye lesing og redigering av dette manuskriptet. Dette arbeidet ble støttet av finansieringen fra National Heart, Lung and Blood Institute of nih R01 HL103920, R01 HL134935, R21 OD025323-01 til SA; AJR støttes av NHLBI HL103920-08S1 og National Institute of Arthritis and Musculoskeletal and Skin Diseases Training grant T32052283-11.

Materials

10x PBS MP Biomedicals PBS10X02
20x water immersion objective Nikon MRD77200
Agarose Bio-Rad Laboratories 1613101
Alexa Fluor 488 anti-goat Invitrogen A-11055
Alexa Fluor 555 anti-mouse Invitrogen A-31570
Analysis Software Imaris 9.2.0
Benzyl Alcohol Sigma-Aldrich 305197
Benzyl Benzoate Sigma-Aldrich 8.18701.0100
Cover Slips VWR 16004-312
DAPI (5 mg/mL stock) Fisher Scientific D3571
Eppendorf Tubes (2.0 mL) Fisher Scientific 05-408-138
Ethanol VWR 89370-084
Falcon tubes (50 mL) Corning 352098
Fast wells Grace Bio Labs 664113
Forceps Roboz RS-5015
Goat anti-VEGFR2 R&D Systems, Inc. AF644
Methanol VWR BDH1135-4LP
Microscope Nikon A1HD25
Mouse anti-ERG Abcam ab214341
Normal Donkey Serum Sigma-Aldrich D9663
Paraformaldehyde Electron Microscopy Sciences 15710
Pasteur pipets Fisher Scientific 13-678-20D
Petri dishes (35 mm) Genesee Scientific 32-103
Petri dishes (60 mm) Genesee Scientific 32-105
Plastic Molds VWR 18000-128
Scapels Exelint International Co. 29552
Triton-X-100 Fisher Scientific BP 151-500

Referências

  1. Hiruma, T., Nakajima, Y., Nakamura, H. Development of pharyngeal arch arteries in early mouse embryo. Journal of Anatomy. 201 (1), 15-29 (2002).
  2. Hutson, M. R., Kirby, M. L. Model systems for the study of heart development and disease Cardiac neural crest and conotruncal malformations. Seminars in Cell & Developmental Biology. 18 (1), 101-110 (2007).
  3. Wang, X., et al. Endothelium in the pharyngeal arches 3, 4 and 6 is derived from the second heart field. Biologia do Desenvolvimento. 421 (2), 108-117 (2017).
  4. Jerome, L. A., Papaioannou, V. E. DiGeorge syndrome phenotype in mice mutant for the T-box gene, Tbx1. Nature Genetics. 27 (3), 286-291 (2001).
  5. Lindsay, E. A., et al. Tbx1 haploinsufficieny in the DiGeorge syndrome region causes aortic arch defects in mice. Nature. 410 (6824), 97-101 (2001).
  6. Weninger, W., et al. Visualising the Cardiovascular System of Embryos of Biomedical Model Organisms with High Resolution Episcopic Microscopy (HREM). Journal of Cardiovascular Development and Disease. 5 (4), 58 (2018).
  7. Phillips, H. M., et al. Pax9 is required for cardiovascular development and interacts with Tbx1 in the pharyngeal endoderm to control 4th pharyngeal arch artery morphogenesis. Development. 146 (18), (2019).
  8. Vlaeminck-Guillem, V., et al. The Ets family member Erg gene is expressed in mesodermal tissues and neural crests at fundamental steps during mouse embryogenesis. Mechanisms of Development. 91 (1-2), 331-335 (2000).
  9. Ertürk, A., et al. Three-dimensional imaging of the unsectioned adult spinal cord to assess axon regeneration and glial responses after injury. Nature Medicine. 18 (1), 166-217 (2012).
  10. Azaripour, A., et al. A survey of clearing techniques for 3D imaging of tissues with special reference to connective tissue. Progress in Histochemistry and Cytochemistry. 51 (2), 9-23 (2016).
  11. Richardson, D. S., Lichtman, J. W. Clarifying Tissue Clearing. Cell. 162 (2), 246-257 (2015).
  12. Becker, K., Jährling, N., Saghafi, S., Weiler, R., Dodt, H. U. Chemical Clearing and Dehydration of GFP Expressing Mouse Brains. PLoS One. 7 (3), e33916 (2012).
  13. Ertürk, A., et al. Three-dimensional imaging of solvent-cleared organs using 3DISCO. Nature Protocols. 7 (11), 1983-1995 (2012).
  14. Kuwajima, T., et al. ClearT: a detergent- and solvent-free clearing method for neuronal and non-neuronal tissue. Development. 140 (6), 1364-1368 (2013).
check_url/pt/60797?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Ramirez, A., Astrof, S. Visualization and Analysis of Pharyngeal Arch Arteries using Whole-mount Immunohistochemistry and 3D Reconstruction. J. Vis. Exp. (157), e60797, doi:10.3791/60797 (2020).

View Video