Summary

Generasjon oligodendrocytes og oligodendrocyte-conditioned medium for co-kultur eksperimenter

Published: February 09, 2020
doi:

Summary

Her viser vi en effektiv metode for rensing av oligodendrocytes og produksjon av oligodendrocyte-betinget medium som kan brukes til co-kultur eksperimenter.

Abstract

I sentralnervesystemet er oligodendrocytes kjent for sin rolle i aksonmyelinasjon, som akselererer forplantningen av handlingspotensialer gjennom saltatorisk ledning. Videre tyder et økende antall rapporter på at oligodendrocytes samhandler med nevroner utover myelinisering, spesielt gjennom sekresjon av løselige faktorer. Her presenterer vi en detaljert protokoll som tillater rensing av oligodendroglial avstamningceller fra glialcellekulturer som også inneholder astrocytter og mikroglialceller. Metoden er avhengig av at natten rister ved 37 °C, noe som gjør det mulig å selektiv løsrivelse av de overliggende oligodendroglialcellene og mikroglialceller, og eliminering av mikroglia ved differensial ved hedhesjon. Vi beskriver deretter kulturen til oligodendrocytes og produksjon av oligodendrocyte-betinget medium (OCM). Vi gir også kinetikken til OCM-behandling eller oligodendrocytes tillegg til renset hippocampal nevroner i co-kultur eksperimenter, studere oligodendrocyte-neuron interaksjoner.

Introduction

Oligodendrocytes (OLs) er glial celler i sentralnervesystemet (CNS) som genererer myelin innpakning rundt aksoner. OLs stammer fra oligodendrocyte forløperceller (OPCs) som sprer seg innenfor ventrikulære soner av embryonale CNS og deretter migrere og differensiere til fullt modne OLs (dvs. myelindannende celler)1. OPCs er rikelig under tidlig utvikling, men også vedvarer i den voksne hjernen hvor de representerer den store proliferative cellepopulasjonen2. En enkelt OL omslutter flere aksoner i ikke-spennende seksjoner (dvs. internoder), og kanten av hver myelinsløyfe festes til aksonen som danner paranodaldomenet som er avgjørende for de isolerende egenskapene til myelin1,3. Mellom paranodene er små umyelinerte hull kalt noder av Ranvier. Disse nodene er rike på spenningsinngjerdede natriumkanaler (Nav), slik at regenerering og rask forplantning av handlingspotensialer gjennom saltatorisk ledning4. Denne tette interaksjonen muliggjør også axonal energistøtte gjennom nevronal opptak av laktat fra OLs5,6.

Modningen av oligodendroglial avstamning celler og myelinisering sprosessen er tett regulert av deres interaksjoner med nevroner7. Faktisk, OLs og OPCs, også kalt NG2 celler, uttrykke en rekke reseptorer for nevrotransmittere, og kan motta innspill fra spennende og hemmende nevroner, slik at de kan føle nevronal aktivitet som kan utløse deres spredning og / eller differensiering i myeliniserende celler2. I sin tur utskiller OPCer / OLs mikrovesikler og proteiner inn i det ekstracellulære rommet som alene eller synergististisk medierer nevromodulative og nevrobeskyttende funksjoner8,9,10,11,12. Imidlertid er de molekylære mekanismene som kontrollerer flere moduser for interaksjoner mellom oligodendroglial avstamningceller og nevroner ennå ikke fullstendig dechiffrert.

Videre, i flere CNS patologiske forhold, påvirkes OLs først og fremst, og forstyrrer dermed deres interaksjon med nevroner. For eksempel, i multippel sklerose (MS), er nevrologisk dysfunksjon forårsaket av fokal demyelinasjon i CNS, sekundært til OLs tap som kan føre til aksonal skade og relatert uførhet akkumulering. Remyelinasjon kan finne sted, om enn utilstrekkelig i de fleste tilfeller13. Fremgang i det siste tiåret, på grunn av utviklingen av immunterapier, har redusert tilbakefallsraten, men fremme remyelinasjon forblir til dags dato et udekket behov. Som sådan er en bedre forståelse av OLs rolle, funksjoner og påvirkninger av særlig interesse for utvikling av nye terapier for et bredt spekter av CNS-forhold.

Her beskriver vi metodene for OLs rensing og kultur. Dette muliggjør presis undersøkelse av iboende mekanismer som regulerer deres utvikling og biologi. I tillegg tillater slike svært berikede OLs kulturer produksjonen av oligodendrocyte-betinget medium (OCM), som kan legges til rensede nevronkulturer for å få innsikt i virkningen av OLs-utskillede faktorer på nevronal fysiologi og tilkobling. Videre beskriver vi hvordan man implementerer et in vitro co-kultursystem der rensede oligodendrocytes og nevroner kombineres sammen, slik at de kan håndtere mekanismene som regulerer (re)myelinasjon.

Protocol

Omsorg og bruk av rotter i dette eksperimentet er i samsvar med institusjonelle retningslinjer og retningslinjer (UPMC, INSERM og European Community Council Directive 86/609/EEC). Følgende protokoll er etablert for et standard kull på 12 valper. 1. Utarbeidelse av kolber (~ 5 min) MERK: Utfør følgende trinn dagen før disseksjon i lamimerstrømningshette under sterile forhold. Coat 150 cm2 kolber (T150) med filtercap (1 kolbe for 2 valper) v…

Representative Results

I denne protokollen renses OL-avstamningceller fra glialkulturer ved å riste av astrocytter og microglia. Renhet og fanofitypisk undersøkelse av OL-kulturer kan vurderes ved immunstaining med glialmarkører15. Analyse av uttrykket av forskjellige markører indikerte at OL-kulturer for det meste var pre-OLs med 90% ± 4% av O4+ celler, 85% ± 7% NG2+ celler, og 4,7% ± 2,1% av PLP+ celler, mens 7,2% ± 2,5% av cellene var GFAP…

Discussion

Her gir vi en detaljert protokoll for å oppnå svært berikede oligodendroglial avstamning cellekulturer fra blandede glial kulturer, tilpasset fra en tidligere publisert metode16,og den påfølgende produksjonen av OL-betinget medium. Denne risting teknikken er ikke dyrt, kan gjentas tre ganger og er optimal for å oppnå høy mengde rensede OLs, som celler dyrket i Bottenstein-Sato (BS) medium som inneholder PDGFα spredning. Glialceller er utarbeidet ved hjelp av cerebrale kortices av Wistar r…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne vil gjerne takke Rémi Ronzano for hans kloke råd i manuskriptredigering. Dette arbeidet ble finansiert av ICM, INSERM, ARSEP foundation tilskudd til NSF, og Bouvet-Labruyère pris.

Materials

5-fluorodeoxyuridine Sigma F0503
B27 supplement ThermoFisher 17504044
D-(+)-Glucose solution Sigma G8769
DNase (Deoxyribonuclease I) Worthington LS002139
Dulbecco's Modified Eagle Medium ThermoFisher 31966021
Ethanol 100% Sigma 32221-M
Ethanol 70% VWR Chemicals 83801.360
Fetal Calf Serum ThermoFisher 10082147
L-cysteine Sigma C7352
Neurobasal ThermoFisher 21103049
Papain Worthington LS003126
Penicillin-Streptomycin ThermoFisher 15140122
Phosphate Buffered Saline without calcium and magnesium ThermoFisher A1285601
Polyethylenimine(PEI) Sigma P3143
Tetraborate decahydrate Sigma B9876
Trypsin Sigma Sigma
Uridine Sigma U3750
Bottenstein-Sato (BS) media
apo-Transferrin human Sigma T1147
BSA (Bovine Serum Albumin) Sigma A4161
Dulbecco's Modified Eagle Medium ThermoFisher 31966021
Insulin Sigma I5500
PDGF Peprotech AF-100-13A
Penicillin-Streptomycin ThermoFisher 15140122
Progesterone Sigma P8783
Putrescine dihydrochloride Sigma P5780
Sodium selenite Sigma S5261
T3 (3,3',5-Triiodo-L-thyronine sodium salt) Sigma T6397
T4 (L-Thyroxine) Sigma T1775
Co-culture media
apo-Transferrin human Sigma T1147
B27 supplement ThermoFisher 17504044
Biotin Sigma B4639
BSA (Bovine Serum Albumin) Sigma A4161
Ceruloplasmin Sigma 239799
Dulbecco's Modified Eagle Medium ThermoFisher 31966021
Hydrocortisone Sigma H4001
Insulin Sigma I5500
N-Acetyl-L-cysteine Sigma A8199
Neurobasal ThermoFisher 21103049
Penicillin-Streptomycin ThermoFisher 15140122
Progesterone Sigma P8783
Putrescin Sigma P5780
Recombinant Human CNTF Sigma 450-13
Sodium selenite Sigma S5261
T3 (3,3',5-Triiodo-L-thyronine sodium salt) Sigma T6397
Vitamin B12 Sigma V6629
Tools
0.22 µm filter Sartorius 514-7010
1 mL syringe Terumo 1611127
100 mm Petri dish Dutscher 193100
15 mL tube Corning Life Science 734-1867
50 mL tube Corning Life Science 734-1869
60 mm Petri dish Dutscher 067003
70 µm filter Miltenyi Biotec 130-095-823
Binocular microscope Olympus SZX7
Curved forceps Fine Science Tools 11152-10
Fine forceps Fine Science Tools 91150-20
Large surgical scissors Fine Science Tools 14008-14
Scalpel Swann-morton 233-5528
Shaker Infors HT
Small surgical scissors Fine Science Tools 91460-11
Small surgical spoon Bar Naor Ltd BN2706
T150 cm2 flask with filter cap Dutscher 190151
Animal
P2 Wistar rat Janvier RjHAn:WI

Referências

  1. Zalc, B. The acquisition of myelin: a success story. Novartis Foundation Symposium. 276, 15-21 (2006).
  2. Habermacher, C., Angulo, M. C., Benamer, N. Glutamate versus GABA in neuron-oligodendroglia communication. Glia. 67 (11), 2092-2106 (2019).
  3. Sherman, D. L., Brophy, P. J. Mechanisms of axon ensheathment and myelin growth. Nature Reviews. Neuroscience. 6 (9), 683-690 (2005).
  4. Freeman, S. A., Desmazières, A., Fricker, D., Lubetzki, C., Sol-Foulon, N. Mechanisms of sodium channel clustering and its influence on axonal impulse conduction. Cellular and molecular life sciences: CMLS. 73 (4), 723-735 (2016).
  5. Lee, Y., et al. Oligodendroglia metabolically support axons and contribute to neurodegeneration. Nature. 487 (7408), 443-448 (2012).
  6. Nave, K. A. Myelination and the trophic support of long axons. Nature Reviews. Neuroscience. 11 (4), 275-283 (2010).
  7. Monje, M. Myelin Plasticity and Nervous System Function. Annual Review of Neuroscience. 41, 61-76 (2018).
  8. Birey, F., et al. Genetic and Stress-Induced Loss of NG2 Glia Triggers Emergence of Depressive-like Behaviors through Reduced Secretion of FGF2. Neuron. 88 (5), 941-956 (2015).
  9. Frühbeis, C., et al. Neurotransmitter-triggered transfer of exosomes mediates oligodendrocyte-neuron communication. PLoS Biology. 11 (7), e1001604 (2013).
  10. Jang, M., Gould, E., Xu, J., Kim, E. J., Kim, J. H. Oligodendrocytes regulate presynaptic properties and neurotransmission through BDNF signaling in the mouse brainstem. eLife. 8, (2019).
  11. Sakry, D., et al. Oligodendrocyte precursor cells modulate the neuronal network by activity-dependent ectodomain cleavage of glial NG2. PLoS Biology. 12 (11), e1001993 (2014).
  12. Sakry, D., Yigit, H., Dimou, L., Trotter, J. Oligodendrocyte precursor cells synthesize neuromodulatory factors. PloS One. 10 (5), e0127222 (2015).
  13. Stadelmann, C., Timmler, S., Barrantes-Freer, A., Simons, M. Myelin in the Central Nervous System: Structure, Function, and Pathology. Physiological Reviews. 99 (3), 1381-1431 (2019).
  14. Freeman, S. A., et al. Acceleration of conduction velocity linked to clustering of nodal components precedes myelination. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (3), E321-E328 (2015).
  15. Baumann, N., Pham-Dinh, D. Biology of oligodendrocyte and myelin in the mammalian central nervous system. Physiological Reviews. 81 (2), 871-927 (2001).
  16. McCarthy, K. D., de Vellis, J. Preparation of separate astroglial and oligodendroglial cell cultures from rat cerebral tissue. The Journal of Cell Biology. 85 (3), 890-902 (1980).
  17. Dean, J. M., et al. Strain-specific differences in perinatal rodent oligodendrocyte lineage progression and its correlation with human. Developmental Neuroscience. 33 (3-4), 251-260 (2011).
  18. Domingues, H. S., Portugal, C. C., Socodato, R., Relvas, J. B., Astrocyte, Oligodendrocyte, Astrocyte, and Microglia Crosstalk in Myelin Development, Damage, and Repair. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 4, 71 (2016).
  19. Klinghoffer, R. A., Hamilton, T. G., Hoch, R., Soriano, P. An allelic series at the PDGFalphaR locus indicates unequal contributions of distinct signaling pathways during development. Developmental Cell. 2 (1), 103-113 (2002).
  20. Spassky, N., et al. The early steps of oligodendrogenesis: insights from the study of the plp lineage in the brain of chicks and rodents. Developmental Neuroscience. 23 (4-5), 318-326 (2001).
  21. Moyon, S., et al. Demyelination Causes Adult CNS Progenitors to Revert to an Immature State and Express Immune Cues That Support Their Migration. Journal of Neuroscience. 35 (1), 4-20 (2015).
  22. Gardner, A., Jukkola, P., Gu, C. Myelination of rodent hippocampal neurons in culture. Nature Protocols. 7 (10), 1774-1782 (2012).
  23. Thetiot, M., et al. An alternative mechanism of early nodal clustering and myelination onset in GABAergic neurons of the central nervous system. bioRxiv. , 763573 (2019).
  24. Dubessy, A. L., et al. Role of a Contactin multi-molecular complex secreted by oligodendrocytes in nodal protein clustering in the CNS. Glia. 67 (12), 2248-2263 (2019).
  25. Barateiro, A., Fernandes, A. Temporal oligodendrocyte lineage progression: in vitro models of proliferation, differentiation and myelination. Biochimica Et Biophysica Acta. 1843 (9), 1917-1929 (2014).
  26. Thetiot, M., Ronzano, R., Aigrot, M. S., Lubetzki, C., Desmazières, A. Preparation and Immunostaining of Myelinating Organotypic Cerebellar Slice Cultures. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (145), (2019).
  27. Mannioui, A., Zalc, B. Conditional Demyelination and Remyelination in a Transgenic Xenopus laevis. Methods in Molecular Biology (Clifton, N.J.). 1936, 239-248 (2019).

Play Video

Citar este artigo
Mazuir, E., Dubessy, A., Wallon, L., Aigrot, M., Lubetzki, C., Sol-Foulon, N. Generation of Oligodendrocytes and Oligodendrocyte-Conditioned Medium for Co-Culture Experiments. J. Vis. Exp. (156), e60912, doi:10.3791/60912 (2020).

View Video