Summary

Lavintensitets blastbølgemodell for preklinisk vurdering av lukket hode mild traumatisk hjerneskade hos gnagere

Published: November 06, 2020
doi:

Summary

Vi presenterer her en protokoll av en eksplosjonsbølgemodell for gnagere for å undersøke nevrobiologiske og patofysiologiske effekter av mild til moderat traumatisk hjerneskade. Vi etablerte et gassdrevet, benk-topp oppsett utstyrt med trykksensorer som muliggjør pålitelig og reproduserbar generasjon av eksplosjonsindusert mild til moderat traumatisk hjerneskade.

Abstract

Traumatisk hjerneskade (TBI) er et stort folkehelseproblem. Mild TBI er den mest utbredte formen for nevrotrauma og står for et stort antall medisinske besøk i USA. Det finnes for øyeblikket ingen FDA-godkjente behandlinger tilgjengelig for TBI. Den økte forekomsten av militærrelatert, eksplosjonsindusert TBI fremhever ytterligere det presserende behovet for effektive TBI-behandlinger. Derfor vil nye prekliniske TBI-dyremodeller som rekapitulerer aspekter ved menneskelig eksplosjonsrelatert TBI i stor grad fremme forskningsinnsatsen i de nevrobiologiske og patofysiologiske prosessene som ligger til grunn for mild til moderat TBI, samt utviklingen av nye terapeutiske strategier for TBI.

Her presenterer vi en pålitelig, reproduserbar modell for undersøkelse av molekylære, cellulære og atferdsmessige effekter av mild til moderat eksplosjonsindusert TBI. Vi beskriver en trinnvis protokoll for lukket hode, eksplosjonsindusert mild TBI hos gnagere ved hjelp av et benk-toppoppsett som består av et gassdrevet støtrør utstyrt med piezoelektriske trykksensorer for å sikre konsistente testforhold. Fordelene med oppsettet som vi har etablert er dens relative rimelige, enkle installasjon, brukervennlighet og høy gjennomstrømningskapasitet. Ytterligere fordeler med denne ikke-invasive TBI-modellen inkluderer skalerbarheten til eksplosjonstoppovertrykket og genereringen av kontrollerte reproduserbare resultater. Reproduserbarheten og relevansen av denne TBI-modellen har blitt evaluert i en rekke nedstrømsapplikasjoner, inkludert nevrobiologiske, nevropatologiske, nevrofysiologiske og atferdsmessige analyser, som støtter bruken av denne modellen for karakterisering av prosesser som ligger til grunn for etiologien til mild til moderat TBI.

Introduction

Traumatisk hjerneskade (TBI) står for mer enn to millioner sykehusbesøk hvert år bare i USA. Mild TBI som vanligvis skyldes bilulykker, sportsbegivenheter eller fall representerer omtrent 80% av alle TBI-tilfeller1. Mild TBI regnes som den “stille sykdommen” da pasienter ofte ikke opplever noen overt symptomer i dagene og månedene etter den første fornærmelsen, men kan utvikle alvorlige TBI-relaterte komplikasjoner senere i livet2. Dessuten er eksplosjonsindusert mild TBI utbredt blant militære tjenestemedlemmer, og har vært assosiert med kronisk CNS-dysfunksjon3,4,5,6. På grunn av den økende forekomsten av eksplosjonsrelatert mild TBI7,8, har preklinisk modellering av nevrobiologiske og patofysiologiske prosesser forbundet med mild TBI dermed blitt et fokus i utviklingen av nye terapeutiske intervensjoner for TBI.

Historisk har TBI-forskning primært fokusert på alvorlige former for nevrotrauma, til tross for det relativt lavere antallet alvorlige humane TBI-tilfeller. Prekliniske gnagermodeller for alvorlig menneskelig TBI er utviklet, inkludert den kontrollerte kortikale effekten (CCI) 9,10 og væskeperkusjonsskade (FPI) 11-modeller, som begge er godt etablert for å produsere pålitelige patofysiologiske effekter12,13. Disse modellene har lagt grunnlaget for det som i dag er kjent om nevroinflammasjon, nevrodegenerasjon og nevronreparasjon i TBI. Selv om betydelig kunnskap om patofysiologien til TBI er utviklet, er det for tiden ingen effektive, FDA-godkjente behandlinger tilgjengelig for TBI.

Mer nylig har fokuset på TBI-forskning blitt utvidet til å omfatte et bredere spekter av TBI-relaterte patologier med det endelige målet om å utvikle effektive terapeutiske intervensjoner. Likevel er det etablert få prekliniske modeller for mild TBI som har vist målbare effekter, og bare et lite antall studier har undersøkt det milde TBI-spekteret2,14,15. Ettersom mild TBI står for det store flertallet av alle TBI-tilfeller, er det presserende nødvendig med pålitelige modeller for mild TBI for å lette forskningen på den menneskelige tilstandens etiologi og nevropatofysiologi for å utvikle nye terapeutiske strategier.

I forbindelse med biomedisinske ingeniører og luftfartsfysikere har vi etablert en skalerbar, lukket eksplosjonsbølgemodell for mild til moderat TBI. Denne prekliniske gnagermodellen er spesielt utviklet for å undersøke effekten av kraftdynamikk, inkludert eksplosjonsbølger og akselerasjon / retardasjonsbevegelse, som er forbundet med menneskelig mild TBI oppnådd i militær kamp, sportsbegivenheter, bilulykker og fall. Ettersom eksplosjonsbølger korrelerer med kraftdynamikken som forårsaker mild TBI hos mennesker, ble denne modellen designet for å produsere en konsistent Friedlander-bølgeform med en impuls, som måles som pund per kvadrattomme (psi)*millisekunder (ms). Impulsnivået skaleres til å falle under definerte lungedødelighetskurver for mus og rotter for å gjennomføre prekliniske undersøkelser16,17,18. I tillegg tillater denne modellen undersøkelse av kupp- og kontrekoupskade på grunn av raske rotasjonskrefter i dyrets hode. Denne typen skader er iboende for flere typer kliniske TBI-presentasjoner, inkludert de som observeres i både militære og sivile befolkninger. Derfor passer denne allsidige modellen til et behov som omfatter flere kliniske presentasjoner av TBI.

Den prekliniske modellen som presenteres her produserer pålitelige og reproduserbare patofysiologiske endringer forbundet med klinisk mild TBI som vist ved en rekke tidligere studier17,19,20,21,22,23. Studier med denne modellen viste at rotter utsatt for en lavintensitets eksplosjonsbølge viste nevroinflammasjon, axonal skade, mikrovaskulær skade, biokjemiske endringer relatert til nevronskade og underskudd i kortsiktig plastisitet og synaptisk eksitabilitet19. Denne milde TBI-modellen induserte imidlertid ingen makroskopiske nevropatologiske endringer, inkludert vevsskade, blødning, hematom og kontusjon19 som ofte har blitt observert i studier som bruker moderate til alvorlige invasive TBI-modeller10,24. Tidligere forskning19,21,22,23 har vist at denne prekliniske modellen kan brukes til å karakterisere nevrobiologiske og patofysiologiske prosesser som ligger til grunn for etiologien til mild og moderat TBI17,19,20,21,22,23. Denne modellen tillater også testing av nye terapeutiske forbindelser og strategier, samt identifisering av nye, egnede mål for utvikling av effektive TBI-intervensjoner19,21,22,23.

Denne modellen ble utviklet for å undersøke effekter indusert av eksplosjonsbølger samt raske rotasjonskrefter på molekylære, cellulære og atferdsmessige utfall hos gnagere. Tilsvarende eksplosjonsbølgemodellen som presenteres her, er det utviklet en rekke prekliniske modeller som forsøker å rekapitulere mild til moderat TBI ved hjelp av gassdrevne overtrykksbølger2,14,17,25,26,27,28. Noen av begrensningene til andre modeller inkluderer: dyret er festet til en netting-gurney og hodet er immobilisert ved støt; de perifere organene er utsatt for bølgen i tillegg til hjernen, noe som skaper forvirrende variabler av polytrauma; og modellene er store og stasjonære, noe som begrenser endring og tilpasning av kritiske parametere til bedre modellforhold som minner om menneskelig TBI.

Fordelene med dette benkdrevne, gassdrevne støtrøroppsettet er det relativt rimelige for anskaffelses- og driftskostnader, samt enkel installasjon og bruk. Videre gir oppsettet mulighet for høy gjennomstrømningsdrift og generering av kontrollerte reproduserbare eksplosjonsbølger og in vivo-resultater hos både mus og rotter. For å kontrollere for konsistente testforhold (dvs. konstant eksplosjonsbølge og overtrykk) er oppsettet utstyrt med trykksensorer. Fordelene med denne modellen for TBI inkluderer skalerbarhet av skade alvorlighetsgraden og at mild TBI er indusert ved hjelp av en ikke-invasiv, lukket-hodet prosedyre. Topp overtrykk og påfølgende hjerneskadeøkning med tykkere polyestermembraner på en konsistent skalerbar måte17. Evnen til å skalere TBI alvorlighetsgrad gjennom membrantykkelse er et nyttig verktøy for å bestemme nivået, hvor spesifikke utfallstiltak (f.eks. nevroinflammasjon) blir tydelige. Ved å gi beskyttende skjerming for de perifere organene, kan du også fokusere på milde TBI-mekanismer ved å unngå eller redusere forvirrende variabler av systemisk skade, for eksempel lunge- eller thoraxskade. Videre tillater dette oppsettet å velge retningen, hvorpå eksplosjonsbølgen treffer / trenger inn i hodet (dvs. head-on, side, topp eller under) og derfor kan forskjellige typer TBI-induserende fornærmelser undersøkes. Standardprosedyren for å indusere mild til moderat TBI beskrevet her bruker sideeksponering for å evaluere effekten av eksplosjonsbølgeskade i kombinasjon med kupp- og kontrekoupskade på grunn av raske rotasjonskrefter. Videre, for å undersøke utelukkende eksplosjonsindusert skade, kan ovenfra og ned eksplosjonsbølgeeksponering brukes i denne modellen.

Protocol

Protokollen følger retningslinjene for dyrepleie ved University of Cincinnati og West Virginia University. Alle prosedyrer som involverer dyr ble godkjent av Institutional Animal Care and Use Committees (IACUC), og ble utført i henhold til prinsippene i Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. 1. Installasjon av eksplosjons-TBI-oppsettet Skaff deg alle arbeidsdelene som kreves for oppsettet, inkludert: støtrør bestående av ståldrevet og driverseksjon,…

Representative Results

Skalerbarheten til eksplosjonsbølgeoppsettet ble testet med tre forskjellige membrantykkelser, 25,4, 50,8 og 76,2 μm. Topptrykknivåer ble vurdert ved hodeplasseringsområdet og utgangen av støtrørapparatet ved hjelp av piezoelektriske trykksensorer (se figur 1 og figur 2). Topptrykket øker i samsvar med membrantykkelsen på begge sensorplasseringene (figur 3A,B), noe som viser at topptrykket er skalerbart i na…

Discussion

Vi presenterer her en preklinisk mild TBI-modell som er kostnadseffektiv, enkel å sette opp og utføre, og gir mulighet for høy gjennomstrømning, pålitelig og reproduserbare eksperimentelle resultater. Denne modellen gir beskyttende skjerming til perifere organer for å muliggjøre fokusert undersøkelse av milde TBI-mekanismer samtidig som de forvirrende variablene av systemisk skade begrenses. Derimot er andre eksplosjonsmodeller kjent for å forårsake skade på perifere organer2,39,40.<sup…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker R. Gettens, N. St. Johns, P. Bennet og J. Robson for deres bidrag til utviklingen av TBI-modellen. NARSAD Young Investigator Grants fra Brain &Behavior Research Foundation (F.P. og M.J.R.), et forskningsstipend fra Darrell K. Royal Research Fund for Alzheimers Disease (F.P.) og en PhRMA Foundation Award (M.J.R.) støttet denne forskningen. Dette arbeidet ble støttet gjennom pre-doktorgradsstipend fra American Foundation for Pharmaceutical Education (A.F.L og B.P.L.).

Materials

3/8 SAE High Pressure Hydraulic Hose Eaton Aeroquip R2-6-6-36M Available from Grainger
3/8'' Quick Connect Female Plugs Karcher KAR 86410440
3/8'' Quick Connect Male Plugs Karcher KAR 86410440
ANY-maze video tracking software Stoelting Co. ANY-maze software
Clear Mylar membrane ePlastics.com POLYCLR0.003 http://www.eplastics.com/Plastic/Clear_Polyester_Film/POLYCLR0-003; Clear Mylar membrane is sold in various thicknesses. All are sold by vendor listed above.
Compound Slide Table (X2) Grizzly Industrial G5757
Deadman Gas Control Ball Valve Coneraco Inc. 71-502-01 "Apollo", Available from Grainger
Driver and driven section (murine) own design/production n/a For further information please contact the authors
Driver and driven section (rat) own design/production n/a For further information please contact the authors
Ear Muffs 3M 37274 Available from Grainger
Gas Regulator – Hi Flow 3500-600-580 Harris 3003539
Helium Gas AirGas HE 300 Tanks are available in various sizes
Inhalation Anesthesia System VetEquip 901806
Input Module National Instruments NI 9223
Isoflurane Baxter NDC 10019-360-40 Ordered by veterinarian
Laboratory Timer/Stopwatch Fisher Scientific 50-550-352
Labview version 12.0 National Instruments Data Acquistion Software
Magnetic Dial Indicator/Micrometer Grizzly Industrial G9849
MATLAB MathWorks Software for pressure recording analysis
Oxygen Regulator Medline HCS8725M
PC for Data Processing Dell
Polyvinylchloride Tubing – 25.4 mm FORMUFIT P001FGP-WH-40×3
Pressure sensors PCB Piezotronics 102A05
Receiver USB Chassis National Instruments DAQ-9171
Sensor Signal Conditioner PCB Piezotronics 482C series
Stainless NSF-Rated Mounting Table Gridmann GR06-WT2448
T Handle Allen Wrench – 3/16'' S&K 73310

Referências

  1. Bazarian, J. J., et al. Mild traumatic brain injury in the United States, 1998–2000. Brain Injury. 19 (2), 85-91 (2005).
  2. Meabon, J. S., et al. Repetitive blast exposure in mice and combat veterans causes persistent cerebellar dysfunction. Science Translational Medicine. 8 (321), (2016).
  3. Mac Donald, C. L., et al. Detection of blast-related traumatic brain injury in U.S. military personnel. New England Journal of Medicine. 364 (22), 2091-2100 (2011).
  4. Fischer, B. L., et al. Neural activation during response inhibition differentiates blast from mechanical causes of mild to moderate traumatic brain injury. Journal of Neurotrauma. 31 (2), 169-179 (2014).
  5. Peskind, E. R., et al. Cerebrocerebellar hypometabolism associated with repetitive blast exposure mild traumatic brain injury in 12 Iraq war Veterans with persistent post-concussive symptoms. Neuroimage. 54, 76-82 (2011).
  6. Jorge, R. E., et al. White matter abnormalities in veterans with mild traumatic brain injury. American Journal of Psychiatry. 169 (12), 1284-1291 (2012).
  7. Hoge, C. W., et al. Mild traumatic brain injury in U.S. Soldiers returning from Iraq. New England Journal of Medicine. 358 (5), 453-463 (2008).
  8. Eskridge, S. L., et al. Injuries from combat explosions in Iraq: injury type, location, and severity. Injury. 43 (10), 1678-1682 (2012).
  9. Lighthall, J. W. Controlled cortical impact: a new experimental brain injury model. Journal of Neurotrauma. 5 (1), 1-15 (1988).
  10. Dixon, C. E., Clifton, G. L., Lighthall, J. W., Yaghmai, A. A., Hayes, R. L. A controlled cortical impact model of traumatic brain injury in the rat. Journal of Neuroscience Methods. 39 (3), 253-262 (1991).
  11. McIntosh, T. K., et al. Traumatic brain injury in the rat: characterization of a lateral fluid-percussion model. Neurociência. 28 (1), 233-244 (1989).
  12. Thompson, H. J., et al. Lateral fluid percussion brain injury: a 15-year review and evaluation. Journal of Neurotrauma. 22 (1), 42-75 (2005).
  13. Osier, N., Dixon, C. E. Mini Review of Controlled Cortical Impact: A Well-Suited Device for Concussion Research. Brain Sciences. 7 (7), (2017).
  14. Goldstein, L. E., et al. Chronic traumatic encephalopathy in blast-exposed military veterans and a blast neurotrauma mouse model. Science Translational Medicine. 4 (134), (2012).
  15. Rodriguez-Grande, B., et al. Gliovascular changes precede white matter damage and long-term disorders in juvenile mild closed head injury. Glia. 66 (8), 1663-1677 (2018).
  16. Bowen, I. G., Fletcher, E. R., Richmond, D. R., Hirsch, F. G., White, C. S. Biophysical mechanisms and scaling procedures applicable in assessing responses of the thorax energized by air-blast overpressures or by nonpenetrating missiles. Annals of the New York Academy of Sciences. 152 (1), 122-146 (1968).
  17. Turner, R. C., et al. Modeling clinically relevant blast parameters based on scaling principles produces functional & histological deficits in rats. Experimental Neurology. , 520-529 (2013).
  18. Lucke-Wold, B. P., et al. Elucidating the role of compression waves and impact duration for generating mild traumatic brain injury in rats. Brain Injury. 31 (1), 98-105 (2017).
  19. Hernandez, A., et al. Exposure to mild blast forces induces neuropathological effects, neurophysiological deficits and biochemical changes. Molecular Brain. 11 (1), 64 (2018).
  20. Bittar, A., et al. Neurotoxic tau oligomers after single versus repetitive mild traumatic brain injury. Brain Communications. 1 (1), (2019).
  21. Logsdon, A. F., et al. Salubrinal reduces oxidative stress, neuroinflammation and impulsive-like behavior in a rodent model of traumatic brain injury. Brain Research. 1643, 140-151 (2016).
  22. Lucke-Wold, B. P., et al. Bryostatin-1 Restores Blood Brain Barrier Integrity following Blast-Induced Traumatic Brain Injury. Molecular Neurobiology. 52 (3), 1119-1134 (2015).
  23. Logsdon, A. F., et al. Altering endoplasmic reticulum stress in a model of blast-induced traumatic brain injury controls cellular fate and ameliorates neuropsychiatric symptoms. Frontiers in Cellular Neuroscience. 8, 421 (2014).
  24. Dixon, C. E., et al. A fluid percussion model of experimental brain injury in the rat. Journal of Neurosurgery. 67 (1), 110-119 (1987).
  25. Long, J. B., et al. Blast overpressure in rats: recreating a battlefield injury in the laboratory. Journal of Neurotrauma. 26 (6), 827-840 (2009).
  26. Budde, M. D., et al. Primary blast traumatic brain injury in the rat: relating diffusion tensor imaging and behavior. Frontiers in Neurology. 4, 154 (2013).
  27. Genovese, R. F., et al. Effects of mild TBI from repeated blast overpressure on the expression and extinction of conditioned fear in rats. Neurociência. 254, 120-129 (2013).
  28. Kuriakose, M., Rama Rao, K. V., Younger, D., Chandra, N. Temporal and Spatial Effects of Blast Overpressure on Blood-Brain Barrier Permeability in Traumatic Brain Injury. Scientific Reports. 8 (1), 8681 (2018).
  29. Cernak, I., et al. The pathobiology of blast injuries and blast-induced neurotrauma as identified using a new experimental model of injury in mice. Neurobiology of Disease. 41 (2), 538-551 (2011).
  30. Prima, V., Serebruany, V. L., Svetlov, A., Hayes, R. L., Svetlov, S. I. Impact of moderate blast exposures on thrombin biomarkers assessed by calibrated automated thrombography in rats. Journal of Neurotrauma. 30 (22), 1881-1887 (2013).
  31. Mishra, V., et al. Primary blast causes mild, moderate, severe and lethal TBI with increasing blast overpressures: Experimental rat injury model. Scientific Reports. 6, 26992 (2016).
  32. Tompkins, P., et al. Brain injury: neuro-inflammation, cognitive deficit, and magnetic resonance imaging in a model of blast induced traumatic brain injury. Journal of Neurotrauma. 30 (22), 1888-1897 (2013).
  33. Kuriakose, M., et al. Tailoring the Blast Exposure Conditions in the Shock Tube for Generating Pure, Primary Shock Waves: The End Plate Facilitates Elimination of Secondary Loading of the Specimen. Public Library of Science One. 11 (9), 0161597 (2016).
  34. Panzer, M. B., et al. A Multiscale Approach to Blast Neurotrauma Modeling: Part I – Development of Novel Test Devices for in vivo and in vitro Blast Injury Models. Frontiers in Neurology. 3, 46 (2012).
  35. Logsdon, A. F., et al. A mouse Model of Focal Vascular Injury Induces Astrocyte Reactivity, Tau Oligomers, and Aberrant Behavior. Archives of Neuroscience. 4 (2), (2017).
  36. Lee, M. C., Klassen, A. C., Heaney, L. M., Resch, J. A. Respiratory rate and pattern disturbances in acute brain stem infarction. Stroke. 7 (4), 382-385 (1976).
  37. Ikeda, K., et al. The respiratory control mechanisms in the brainstem and spinal cord: integrative views of the neuroanatomy and neurophysiology. Journal of Physiological Sciences. 67 (1), 45-62 (2017).
  38. Alilain, W. J., Horn, K. P., Hu, H., Dick, T. E., Silver, J. Functional regeneration of respiratory pathways after spinal cord injury. Nature. 475 (7355), 196-200 (2011).
  39. Logsdon, A. F., et al. Blast exposure elicits blood-brain barrier disruption and repair mediated by tight junction integrity and nitric oxide dependent processes. Scientific Reports. 8 (1), 11344 (2018).
  40. Logsdon, A. F., et al. Nitric oxide synthase mediates cerebellar dysfunction in mice exposed to repetitive blast-induced mild traumatic brain injury. Scientific Reports. 10 (1), 9420 (2020).
  41. Huber, B. R., et al. Blast exposure causes dynamic microglial/macrophage responses and microdomains of brain microvessel dysfunction. Neurociência. 319, 206-220 (2016).
  42. Gama Sosa, M. A., et al. Low-level blast exposure disrupts gliovascular and neurovascular connections and induces a chronic vascular pathology in rat brain. Acta Neuropathologica Communications. 7 (1), 6 (2019).
  43. Abutarboush, R., et al. Exposure to Blast Overpressure Impairs Cerebral Microvascular Responses and Alters Vascular and Astrocytic Structure. Journal of Neurotrauma. 36 (22), 3138-3157 (2019).
  44. Xiong, Y., Mahmood, A., Chopp, M. Animal models of traumatic brain injury. Nature Reviews: Neuroscience. 14 (2), 128-142 (2013).
  45. Petraglia, A. L., et al. Concussion in the absence of head impact: a case in a collegiate hammer thrower. Current Sports Medicine Reports. 14 (1), 11-15 (2015).
  46. Viano, D. C., Casson, I. R., Pellman, E. J. Concussion in professional football: biomechanics of the struck player–part 14. Neurosurgery. 61 (2), 313-327 (2007).
check_url/pt/61244?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Logsdon, A. F., Lucke-Wold, B. P., Turner, R. C., Collins, S. M., Reeder, E. L., Huber, J. D., Rosen, C. L., Robson, M. J., Plattner, F. Low-intensity Blast Wave Model for Preclinical Assessment of Closed-head Mild Traumatic Brain Injury in Rodents. J. Vis. Exp. (165), e61244, doi:10.3791/61244 (2020).

View Video