Summary

Kolorektal Kanser Hücrelerinin Üç Boyutlu Küresel Kültürlerinde Probiyotiklerin Hücresiz Süpernatantı Kullanılarak Hücre Ölümünün Değerlendirilmesi

Published: June 13, 2020
doi:

Summary

Burada Lactobacillus hücresiz süpernatantın (LCFS) kanser önleyici etkilerini anlamak için yöntemler sunulmaktadır. Kolorektal kanser hücre hatları 3D kültürlerde LCFS ile tedavi edildiğinde hücre ölümlerini göstermektedir. Sferoid üretme süreci iskeleye bağlı olarak optimize edilebilir ve sunulan analiz yöntemleri ilgili sinyal yollarını değerlendirmek için yararlıdır.

Abstract

Bu makale, probiyotikkültürü olarak kabul edilen Lactobacillus fermentum hücre kültüründen süpernatantlar kullanarak çok hücreli kanser hücrelerinin üç boyutlu (3D) sferoidlerinde kanser hücresi ölümlerini değerlendirmek için bir protokol açıklanmaktadır. Lactobacillus hücresiz süpernatant (LCFS) test etmek için 3D kültürlerin kullanımı, özellikle L. fermentum bağırsak içinde kanser önleyici etkiler üretebileceğinden, 2D monolayerlerde test etmekten daha iyi bir seçenektir. L. fermentum supernatant’ın 3D kültür koşullarında çeşitli kolorektal kanser (CRC) hücrelerine karşı artan anti-proliferatif etkilere sahip olduğu belirlendi. İlginçtir ki, bu etkiler L. fermentum’un kanser hücre ölümünü teşvik etmedeki önemli yeteneğini gösteren kültür modeliyle güçlü bir şekilde ilişkiliydi. Aşağıda sunulan protokol kullanılarak çeşitli CRC’lerden (kolorektal kanser hücreleri) stabil sferoidler üretilmiştir. 3D küresel oluşturmanın bu protokolü zaman tasarrufu sağlar ve uygun maliyetlidir. Bu sistem, LCFS’nin birden fazla CRC sferoid türündeki kanser önleyici etkilerini kolayca araştırmak için geliştirilmiştir. Beklendiği gibi, deney sırasında LCFS ile tedavi edilen CRC sferoidleri hücre ölümünü güçlü bir şekilde indükledi ve qRT-PCR, batı şişkinliği ve FACS analizi ile analiz edildiği gibi spesifik apoptoz moleküler belirteçlerini ifade etti. Bu nedenle, bu yöntem hücre canlılığını keşfetmek ve anti-kanser ilaçlarının etkinliğini değerlendirmek için değerlidir.

Introduction

Probiyotikler, bağışıklık homeostazını geliştiren ve enerji metabolizmasını barındıran bağırsaktaki en avantajlı mikroorganizmalardır1. Lactobacillus ve Bifidobacterium probiyotikleri bağırsakta bulunan türünün en gelişmişidir2,3. Önceki araştırmalar Lactobacillus’un kolorektal kanser de dahil olmak üzere çeşitli kanserler üzerinde inhibitör ve antiproliferatif etkileri olduğunu göstermiştir4. Ayrıca, probiyotikler enflamatuar bağırsak hastalıklarını, Crohn hastalığını ve ülseratif koliti önler5,6. Bununla birlikte, probiyotiklerle yapılan çalışmaların çoğu katı yüzeylerde yetişen iki boyutlu (2D) monolayerlerde gerçekleştirildi.

Yapay kültür sistemleri, kanser hücreleri için doğal olmayan çevresel özelliklerden yoksundur. Bu sınırlamanın üstesinden gelmek için üç boyutlu (3D) kültür sistemleri geliştirilmiştir7,8. 3D kanser hücreleri hücre canlılığı, çoğalma, morfoloji, hücre-hücre iletişimi, ilaç duyarlılığı ve in vivo alaka düzeyi9,10gibi temel biyolojik mekanizmalar açısından iyileşmeler göstermektedir. Ayrıca, sferoidler çok hücreli kolorektal kanser türlerinden yapılır ve hücre-hücre etkileşimlerine ve hücre dışı matrise (ECM)bağlıdır 11. Önceki çalışmamız, Lactobacillus fermentum kullanılarak üretilen probiyotik hücresiz süpernatantın (CFS) kolorektal kanser (CRC) hücrelerinin 3D kültürleri üzerinde kanser önleyici etkiler gösterdiğini bildirmiştir12. CFS’nin probiyotik etkilerini 3D sferoidler üzerinde test etmek için uygun bir alternatif strateji olduğunu önerdik12.

Burada, probiyotik hücresiz süpernatantın (CFS) çeşitli 3D kolorektal kanser taklit sistemleri üzerindeki terapötik etkilerinin analizi için çok hücreli 3D kolorektal kanser türlerini barındırabilecek bir yaklaşım sunuyoruz. Bu yöntem, ilgili probiyotik ve anti-kanser etkilerinin in vitro analizi için bir araç sağlar.

Protocol

1. Bakteriyel hücre kültürleri ve Lactobacillus hücresiz süpernatant hazırlanması (LCFS) NOT: Adım 1.2 – 1.9 anaerobik bir odada gerçekleştirilir. L-sistein içeren bir MRS agar tabağı ve et suyu hazırlayın ve otoklavlayarak sterilize edin. 37 °C’de tutulan H2 anaerobik haznedeki MRS agar plakasını 20 ppm oksijenle önceden kuluçkaya yatırın. Lactobacillus bakteri stoğunu çözün ve agar plakasını bakteri kül…

Representative Results

Çeşitli kolorektal kanser hücre hatlarından sferoid elde etme protokolünü açıklıyoruz. Sferoid üretmek için metilselüloz ile takviye gerekiyordu. Ayrıca LCFS hazırlama yöntemini sunuyoruz ve probiyotikler ile kolorektal kanser arasındaki korelasyonu incelemek için bir model sunuyoruz. Küresel formasyon ve LCFS hazırlama protokolleri Şekil 1A,B’deşematik olarak gösterilmiştir. Şekil 2A’dagösterildiği gibi, %0,6’luk metil…

Discussion

Komşu hücreler ve hücre dışı matris (ECM) de dahil olmak üzere doku mikroçevrasyonu doku üretimi için temeldir ve hücre büyümesi ve doku gelişiminin kontrolünde çok önemlidir13. Bununla birlikte, 2D kültürlerin hücresel etkileşimlerin bozulması, hücre morfolojisindeki değişiklikler, hücre dışı ortamlar ve bölüm14yaklaşımı gibi çeşitli dezavantajları vardır. 3D hücre kültürü sistemleri in vivo etkileri daha iyi üretmek için titizli…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu araştırma, Kore Standartlar ve Bilim Araştırma Enstitüsü tarafından finanse edilen “Kimya ve Radyasyon için ölçüm standartlarının oluşturulması”, KRISS-2020-GP2020-0003 hibe numarası ve “Biyomalzemeler ve Tıbbi Yakınsama için Ölçüm Standartlarının ve Teknolojisinin Geliştirilmesi”, KRISS-2020-GP2020-0004 programlarının hibe numarası ile desteklenmiştir. Bu araştırma bilim ve Bİt Bakanlığı (MSIT), Kore Ulusal Araştırma Vakfı (NRF-2019M3A9F3065868), Sağlık ve Refah Bakanlığı (MOHW), Kore Sağlık Endüstrisi Geliştirme Enstitüsü (KHIDI, HI20C0558), Ticaret, Sanayi ve Enerji Bakanlığı (MOTIE) ve Kore Sanayi Teknolojisi Değerlendirme Enstitüsü (KEIT, 20009350) tarafından da desteklendi. ORCID Kimliği (Hee Min Yoo: 0000-0002-5951-2137; Dukjin Kang: 0000-0002-5924-9674; Seil Kim: 0000-0003-3465-7118; Joo-Eun Lee: 0000-0002-2495-1439; Jina Lee: 0000-0002-3661-3701). Deneylere yardım için Chang Woo Park’a teşekkür ederiz.

Materials


10% Mini-PROTEAN TGX Precast Protein Gels, 15-well, 15 µl
Biorad 4561036 Pkg of 10
Applied Biosystems MicroAmp Optical Adhesive Film Thermo Fisher Scientific 4311971 100 covers
10x transfer buffer Intron IBS-BT031A 1 L
10X Tris-Glycine (W/SDS) Intron IBS-BT014 1 L
Axygen 2.0 mL MaxyClear Snaplock Microcentrifuge Tube, Polypropylene, Clear, Nonsterile, 500 Tubes/Pack, 10 Packs/Case Corning SCT-200-C 500 Tubes/Pack, 10 Packs/Case
BD Difco Bacto Agar BD 214010 500 g
BD Difco Lactobacilli MRS Broth BD DF0881-17-5 500 g
CellTiter-Glo 3D Cell viability assay Promega G9681 100μl/assay in 96-well plates
Complete Protease Inhibitor Cocktail Sigma-Aldrich 11697498001 vial of 20 tablets
Corning Phosphate-Buffered Saline, 1X without calcium and magnesium, PH 7.4 ± 0.1 Corning 21-040-CV 500 mL
EMD Millipore Immobilon-P PVDF Transfer Membranes fisher Scientific IPVH00010 26.5cm x 3.75m roll; Pore Size: 0.45um
Falcon 5 mL Round Bottom Polystyrene Test Tube, with Cell Strainer Snap Cap Corning 352235 25/Pack, 500/Case
Fetal Bovine Serum, certified, US origin Thermo Fisher Scientific 16000044 500 mL
iScript cDNA Synthesis Kit, 25 x 20 µl rxns #1708890 Biorad 1708890 25 x 20 µL rxns
iTaq Universal SYBR Green Supermix Biorad 1725121 5 x 1 mL
Lactobacillus fermentum Korean Collection for Type Cultures KCTC 3112
L-Cysteine hydrochloride monohydrate Sigma-Aldrich C6852-25G 25 g
Methyl Cellulose (3500-5600mPa·s, 2% in Water at 20°C) TCI M0185 500 g
MicroAmp Fast Optical 96-Well Reaction Plate with Barcode, 0.1 mL Applied Biosystems 4346906 20 plates
Millex-GS Syringe Filter Unit, 0.22 µm, mixed cellulose esters, 33 mm, ethylene oxide sterilized Millipore SLGS033SB 250
PE Annexin V Apoptosis Detection Kit with 7-AAD Biolegend 640934 100 tests
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) Thermo Fisher Scientific 15140122 100 mL
Propidium Iodide Introgen P1304MP 100 mg
RIPA Lysis and Extraction Buffer Thermo Fisher Scientific 89901 250 mL
RNeasy Mini Kit (250) Qiagen 74106 250
RPMI-1640 Gibco 11875-119 500 mL
Trypsin-EDTA (0.25%), phenol red Thermo Fisher Scientific 25200056 100 mL
Name of Materials/Equipment/Software Company Catalog Number Comments/Description
anti – p-IκBα (B-9) Santa cruze sc-8404 200 µg/mL
anti-BclxL (H-5) Santa cruze sc-8392 200 µg/mL
anti-PARP 1 (C2-10) Santa cruze sc-53643 50 µl ascites
anti-β-actin (C4) Santa cruze sc-47778 200 µg/mL
BD FACSVerse BD Biosciences San Diego, CA, USA
Synergy HTX Multi-Mode Microplate Reader BioT S1LFA
CO2 incubator Thermo fisher HERAcell 150i
Conical tube 15 ml SPL 50015
Conical tube 50 ml SPL 50050
Corning Costar Ultra-Low Attachment Multiple Well Plate Sigma-Aldrich CLS7007
Corning Costar Ultra-Low Attachment Multiple Well Plate Sigma-Aldrich CLS3471
Costar 50 mL Reagent Reservoirs, 5/Bag, Sterile Costar 4870
Countess Cell Counting Chamber Slides Thermofisher C10228
Countess II FL Automated Cell Counter invitrogen AMQAF1000
EnSpire Multimode Reader Perkin Elmer Enspire 2300
Eppendorf Research Plus Multi Channel Pipette, 8-channel Eppendorf 3122000051
FlowJo software TreeStar Ashland, OR, USA
Goat Anti-Mouse IgG (H+L) Jackson immunoresearch 115-035-062 1.5 mL
Goat Anti-Rabbit IgG (H+L) Jackson immunoresearch 111-035-144 2.0 mL
GraphPad Prism 5 GraphPad Software Inc., San Diego, CA, USA
ImageJ NIH
ImageQuant LAS 4000 mini Fujifilm Tokyo, Japan
Incubated shaker Lab companion SIF-6000R
Multi Gauge Ver. 3.0, Fujifilm Tokyo, Japan
Optical density (OD)LAMBDA UV/Vis Spectrophotometers Perkin Elmer Waltham, MA, USA
Phase-contrast microscope Olympus Tokyo, Japan
SPL microcentrifuge tube 1.5mL SPL 60015
SPL Multi Channel Reservoirs, 12-Chs, PS, Sterile SPL 21012
StepOnePlus Real-Time PCR system Thermo Fisher Scientific Waltham, MA, USA
Vibra-Cell Ultrasonic Liquid Processors SONICS-vibra cell VC 505 500 Watt ultrasonic processor
Vinyl Anaerobic Chamber COY LAB PRODUCTS

Referências

  1. Bron, P. A., Van Baarlen, P., Kleerebezem, M. Emerging molecular insights into the interaction between probiotics and the host intestinal mucosa. Nature Reviews Microbiology. 10 (1), 66-78 (2012).
  2. Ruiz, L., Delgado, S., Ruas-Madiedo, P., Sánchez, B., Margolles, A. Bifidobacteria and their molecular communication with the immune system. Frontiers in Microbiology. 8, 1-9 (2017).
  3. Sanders, M. E., Merenstein, D. J., Reid, G., Gibson, G. R., Rastall, R. A. Probiotics and prebiotics in intestinal health and disease: from biology to the clinic. Nature Reviews Gastroenterology and Hepatology. 16 (10), 605-616 (2019).
  4. Pandey, K. R., Naik, S. R., Vakil, B. V. Probiotics, prebiotics and synbiotics- a review. Journal of Food Science and Technology. 52 (12), 7577-7587 (2015).
  5. Harish, K., Varghese, T. Probiotics in humans-evidence based review. Calicut Medical Journal. 4 (4), 3 (2006).
  6. Routy, B., et al. The gut microbiota influences anticancer immunosurveillance and general health. Nature Reviews Clinical Oncology. 15 (6), 382-396 (2018).
  7. Pampaloni, F., Reynaud, E. G., Stelzer, E. H. K. Most of the cell-based data-harvesting efforts that drive the integration of cell biology. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 8 (10), 839-845 (2007).
  8. Shamir, E. R., Ewald, A. J. Three-dimensional organotypic culture: Experimental models of mammalian biology and disease. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 15 (10), 647-664 (2014).
  9. Jong, B. K. Three-dimensional tissue culture models in cancer biology. Seminars in Cancer Biology. 15 (5), 365-377 (2005).
  10. Zanoni, M., et al. 3D tumor spheroid models for in vitro therapeutic screening: a systematic approach to enhance the biological relevance of data obtained. Scientific Reports. 6, 19103 (2016).
  11. Anton, D., Burckel, H., Josset, E., Noel, G. Three-dimensional cell culture: A breakthrough in vivo. International Journal of Molecular Sciences. 16 (3), 5517-5527 (2015).
  12. Lee, J. E., et al. Characterization of the Anti-Cancer Activity of the Probiotic Bacterium Lactobacillus fermentum Using 2D vs. 3D Culture in Colorectal Cancer Cells. Biomolecules. 9 (10), 557 (2019).
  13. Koledova, Z. 3D cell culture: An introduction. Methods in Molecular Biology. 1612, (2017).
  14. Kapałczyńska, M., et al. 2D and 3D cell cultures – a comparison of different types of cancer cell cultures. Archives of Medical Science. 14 (4), 910-919 (2018).
  15. Langhans, S. A. Three-dimensional in vitro cell culture models in drug discovery and drug repositioning. Frontiers in Pharmacology. 9, 1-14 (2018).
  16. Breslin, S., O’Driscoll, L. Three-dimensional cell culture: The missing link in drug discovery. Drug Discovery Today. 18 (5-6), 240-249 (2013).
  17. Mazzocchi, A. R., Rajan, S. A. P., Votanopoulos, K. I., Hall, A. R., Skardal, A. In vitro patient-derived 3D mesothelioma tumor organoids facilitate patient-centric therapeutic screening. Scientific Reports. 8, 2886 (2018).
  18. Lv, D., Hu, Z., Lu, L., Lu, H., Xu, X. Three-dimensional cell culture: A powerful tool in tumor research and drug discovery. Oncology Letters. 14 (6), 6999-7010 (2017).
  19. Thirumala, S., Gimble, J., Devireddy, R. Methylcellulose Based Thermally Reversible Hydrogel System for Tissue Engineering Applications. Cells. 2 (3), 460-475 (2013).
  20. Chandrashekran, A., et al. Methylcellulose as a scaffold in the culture of liver-organoids for the potential of treating acute liver failure. Cell and Gene Therapy Insights. 4 (11), 1087-1103 (2018).
  21. Lee, W., Park, J. 3D patterned stem cell differentiation using thermo-responsive methylcellulose hydrogel molds. Scientific Reports. 6, 1-11 (2016).
  22. Fan, H., Demirci, U., Chen, P. Emerging organoid models: Leaping forward in cancer research. Journal of Hematology and Oncology. 12 (1), 1-10 (2019).
  23. Drost, J., Clevers, H. Organoids in cancer research. Nature Reviews Cancer. 18 (7), 407-418 (2018).
  24. Liou, C. S., et al. A Metabolic Pathway for Activation of Dietary Glucosinolates by a Human Gut Symbiont. Cell. 180 (4), 717-728 (2020).
  25. Sherwin, E., Bordenstein, S. R., Quinn, J. L., Dinan, T. G., Cryan, J. F. Microbiota and the social brain. Science. 366 (6465), 2016 (2019).
  26. Honda, K., Littman, D. R. The microbiota in adaptive immune homeostasis and disease. Nature. 535 (7610), 75-84 (2016).
  27. Bárcena, C., et al. Healthspan and lifespan extension by fecal microbiota transplantation into progeroid mice. Nature Medicine. 25 (8), 1234-1242 (2019).
  28. Michalovich, D., et al. Obesity and disease severity magnify disturbed microbiome-immune interactions in asthma patients. Nature Communications. 10, 5711 (2019).
  29. Ansaldo, E., et al. Akkermansia muciniphila induces intestinal adaptive immune responses during homeostasis. Science. 364 (6446), 1179-1184 (2019).
check_url/pt/61285?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Lee, J., Lee, J., Kim, S., Kang, D., Yoo, H. M. Evaluating Cell Death Using Cell-Free Supernatant of Probiotics in Three-Dimensional Spheroid Cultures of Colorectal Cancer Cells. J. Vis. Exp. (160), e61285, doi:10.3791/61285 (2020).

View Video