Summary

Utvärdera celldöd med hjälp av cellfri supernatant av probiotika i tredimensionella sfäroidkulturer av kolorektalcancerceller

Published: June 13, 2020
doi:

Summary

Här presenteras metoder för att förstå anti-cancer effekter av Lactobacillus cell-free supernatant (LCFS). Kolorektal cancer cellinjer visar celldöd när behandlas med LCFS i 3D kulturer. Processen att generera sfäroider kan optimeras beroende på byggnadsställningen och de analysmetoder som presenteras är användbara för att utvärdera de involverade signalvägarna.

Abstract

Detta manuskript beskriver ett protokoll för att utvärdera cancercellsdödsfall i tredimensionella (3D) sfäroider av multicellulära typer av cancerceller med hjälp av supernatanter från Lactobacillus fermentumcellkultur , som betraktas som probiotikakulturer. Användningen av 3D-kulturer för att testa Lactobacillus cellfria supernatant (LCFS) är ett bättre alternativ än att testa i 2D-monoskikt, särskilt som L. fermentum kan producera anti-cancereffekter i tarmen. L. fermentum supernatant identifierades att ha ökade anti-proliferative effekter mot flera kolorektal cancer (CRC) celler i 3D kultur villkor. Intressant nog var dessa effekter starkt relaterade till kulturmodellen, vilket visar den anmärkningsvärda förmågan hos L. fermentum att inducera cancercelldöd. Stabila sfäroider genererades från olika CRCs (kolorektal cancerceller) med hjälp av protokollet som presenteras nedan. Detta protokoll för att generera 3D-sfäroid är tidsbesparande och kostnadseffektivt. Detta system utvecklades för att enkelt undersöka anti-cancer effekter av LCFS i flera typer av CRC sfäroider. Som förväntat inducerade CRC sfäroider med LCFS starkt celldöd under experimentet och uttryckte specifika apoptos molekylära markörer som analyseras av qRT-PCR, western blotting och FACS analys. Därför är denna metod värdefull för att utforska cellens livskraft och utvärdera effekten av anti-cancerläkemedel.

Introduction

Probiotika är de mest fördelaktiga mikroorganismerna i tarmen som förbättrar immunhomeostas och värdenergimetabolism1. Probiotika från Lactobacillus och Bifidobacterium är de mest avancerade i sitt slag som finns i tarmarna2,3. Tidigare undersökningar har visat att Lactobacillus har hämmande och antiproliferativa effekter på flera cancerformer, inklusive kolorektal cancer4. Dessutom förhindrar probiotika inflammatoriska tarmsjukdomar, Crohns sjukdom och ulcerös kolit5,6. De flesta studier med probiotika utfördes dock i tvådimensionella (2D) monoskikt som odlas på fasta ytor.

Artificiella odlingssystem saknar miljöegenskaper, vilket inte är naturligt för cancerceller. För att övervinna denna begränsning har tredimensionella (3D) odlingssystem utvecklats7,8. Cancerceller i 3D visar förbättringar när det gäller grundläggande biologiska mekanismer, såsom cell livskraft, spridning, morfologi, cellcellskommunikation, läkemedelskänslighet och in vivo relevans9,10. Dessutom är sfäroider gjorda av multicellulära typer av kolorektal cancer och är beroende av cellcellsinteraktioner och den extracellulära matrisen (ECM)11. Vår tidigare studie har rapporterat att probiotiska cellfria supernatant (CFS) som produceras med Lactobacillus fermentum visade anti-cancer effekter på 3D kulturer av kolorektal cancer (CRC) celler12. Vi föreslog att CFS är en lämplig alternativ strategi för att testa probiotiska effekter på 3D-sfäroider12.

Här presenterar vi ett tillvägagångssätt som kan rymma multicellulära typer av 3D-kolorektal cancer för analys av terapeutiska effekter av probiotiskt cellfritt supernatant (CFS) på flera 3D-kolorektal cancer mimicry system. Denna metod ger ett sätt att analysera relaterade probiotiska och anti-cancer effekter in vitro.

Protocol

1. Bakteriella cellkulturer och beredning av Lactobacillus cellfri supernatant (LCFS) OBS: Steg 1.2 – 1.9 utförs i en anaerob kammare. Förbered en MRS agarplatta och buljong som innehåller L-cystein och sterilisera genom autoklavering. Förinkubera MRS-agarplattan i H2 anaerob kammare som hålls vid 37 °C med 20 ppm syre. Tina lactobacillus bakterielager och inokulera agarplattan med bakteriekulturen (Figur 1…

Representative Results

Vi beskriver protokollet att erhålla sfäroider från olika kolorektal cancer cellinjer. Tillskott med metylcellulosa krävdes för att generera sfäroider. Vi presenterar också en metod för LCFS beredning och presentera en modell för att studera korrelationen mellan probiotika och kolorektal cancer. Sfäroidbildning och LCFS-förberedelseprotokoll illustreras schematiskt i figur 1A,B. Som visas i figur 2Aomvandlar metylcellulosakoncentratio…

Discussion

Vävnadsmikromiljön, inklusive närliggande celler och den extracellulära matrisen (ECM), är grundläggande för vävnadsgenerering och avgörande för kontrollen av celltillväxt och vävnadsutveckling13. 2D-kulturer har dock flera nackdelar, såsom störningar i cellinteraktioner, liksom förändringar i cellmorfologi, extracellulära miljöer och tillvägagångssättet i division14. 3D-cellkultursystem har studerats noggrant för att bättre reproducera in vivo-effekt…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denna forskning stöddes av “Etablering av mätstandarder för kemi och strålning”, bidragsnummer KRISS-2020-GP2020-0003 och “Utveckling av mätstandarder och teknik för biomaterial och medicinsk konvergens”, bidragsnummer KRISS-2020-GP2020-0004-program, finansierade av Korea Research Institute of Standards and Science. Denna forskning stöddes också av ministeriet för vetenskap och IKT (MSIT), Koreas nationella forskningsstiftelse (NRF-2019M3A9F3065868), ministeriet för hälsa och välfärd (MOHW), Korea Health Industry Development Institute (KHIDI, HI20C0558), Handels-, industri- och energiministeriet (MOTIE) och Korea Evaluation Institute of Industrial Technology (KEIT, 20009350). ORCID ID (Hee Min Yoo: 0000-0002-5951-2137; Dukjin Kang: 0000-0002-5924-9674; Seil Kim: 0000-0003-3465-7118; Joo-Eun Lee: 0000-0002-2495-1439; Jina Lee: 0000-0002-3661-3701). Vi tackar Chang Woo Park för hjälp med experiment.

Materials


10% Mini-PROTEAN TGX Precast Protein Gels, 15-well, 15 µl
Biorad 4561036 Pkg of 10
Applied Biosystems MicroAmp Optical Adhesive Film Thermo Fisher Scientific 4311971 100 covers
10x transfer buffer Intron IBS-BT031A 1 L
10X Tris-Glycine (W/SDS) Intron IBS-BT014 1 L
Axygen 2.0 mL MaxyClear Snaplock Microcentrifuge Tube, Polypropylene, Clear, Nonsterile, 500 Tubes/Pack, 10 Packs/Case Corning SCT-200-C 500 Tubes/Pack, 10 Packs/Case
BD Difco Bacto Agar BD 214010 500 g
BD Difco Lactobacilli MRS Broth BD DF0881-17-5 500 g
CellTiter-Glo 3D Cell viability assay Promega G9681 100μl/assay in 96-well plates
Complete Protease Inhibitor Cocktail Sigma-Aldrich 11697498001 vial of 20 tablets
Corning Phosphate-Buffered Saline, 1X without calcium and magnesium, PH 7.4 ± 0.1 Corning 21-040-CV 500 mL
EMD Millipore Immobilon-P PVDF Transfer Membranes fisher Scientific IPVH00010 26.5cm x 3.75m roll; Pore Size: 0.45um
Falcon 5 mL Round Bottom Polystyrene Test Tube, with Cell Strainer Snap Cap Corning 352235 25/Pack, 500/Case
Fetal Bovine Serum, certified, US origin Thermo Fisher Scientific 16000044 500 mL
iScript cDNA Synthesis Kit, 25 x 20 µl rxns #1708890 Biorad 1708890 25 x 20 µL rxns
iTaq Universal SYBR Green Supermix Biorad 1725121 5 x 1 mL
Lactobacillus fermentum Korean Collection for Type Cultures KCTC 3112
L-Cysteine hydrochloride monohydrate Sigma-Aldrich C6852-25G 25 g
Methyl Cellulose (3500-5600mPa·s, 2% in Water at 20°C) TCI M0185 500 g
MicroAmp Fast Optical 96-Well Reaction Plate with Barcode, 0.1 mL Applied Biosystems 4346906 20 plates
Millex-GS Syringe Filter Unit, 0.22 µm, mixed cellulose esters, 33 mm, ethylene oxide sterilized Millipore SLGS033SB 250
PE Annexin V Apoptosis Detection Kit with 7-AAD Biolegend 640934 100 tests
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) Thermo Fisher Scientific 15140122 100 mL
Propidium Iodide Introgen P1304MP 100 mg
RIPA Lysis and Extraction Buffer Thermo Fisher Scientific 89901 250 mL
RNeasy Mini Kit (250) Qiagen 74106 250
RPMI-1640 Gibco 11875-119 500 mL
Trypsin-EDTA (0.25%), phenol red Thermo Fisher Scientific 25200056 100 mL
Name of Materials/Equipment/Software Company Catalog Number Comments/Description
anti – p-IκBα (B-9) Santa cruze sc-8404 200 µg/mL
anti-BclxL (H-5) Santa cruze sc-8392 200 µg/mL
anti-PARP 1 (C2-10) Santa cruze sc-53643 50 µl ascites
anti-β-actin (C4) Santa cruze sc-47778 200 µg/mL
BD FACSVerse BD Biosciences San Diego, CA, USA
Synergy HTX Multi-Mode Microplate Reader BioT S1LFA
CO2 incubator Thermo fisher HERAcell 150i
Conical tube 15 ml SPL 50015
Conical tube 50 ml SPL 50050
Corning Costar Ultra-Low Attachment Multiple Well Plate Sigma-Aldrich CLS7007
Corning Costar Ultra-Low Attachment Multiple Well Plate Sigma-Aldrich CLS3471
Costar 50 mL Reagent Reservoirs, 5/Bag, Sterile Costar 4870
Countess Cell Counting Chamber Slides Thermofisher C10228
Countess II FL Automated Cell Counter invitrogen AMQAF1000
EnSpire Multimode Reader Perkin Elmer Enspire 2300
Eppendorf Research Plus Multi Channel Pipette, 8-channel Eppendorf 3122000051
FlowJo software TreeStar Ashland, OR, USA
Goat Anti-Mouse IgG (H+L) Jackson immunoresearch 115-035-062 1.5 mL
Goat Anti-Rabbit IgG (H+L) Jackson immunoresearch 111-035-144 2.0 mL
GraphPad Prism 5 GraphPad Software Inc., San Diego, CA, USA
ImageJ NIH
ImageQuant LAS 4000 mini Fujifilm Tokyo, Japan
Incubated shaker Lab companion SIF-6000R
Multi Gauge Ver. 3.0, Fujifilm Tokyo, Japan
Optical density (OD)LAMBDA UV/Vis Spectrophotometers Perkin Elmer Waltham, MA, USA
Phase-contrast microscope Olympus Tokyo, Japan
SPL microcentrifuge tube 1.5mL SPL 60015
SPL Multi Channel Reservoirs, 12-Chs, PS, Sterile SPL 21012
StepOnePlus Real-Time PCR system Thermo Fisher Scientific Waltham, MA, USA
Vibra-Cell Ultrasonic Liquid Processors SONICS-vibra cell VC 505 500 Watt ultrasonic processor
Vinyl Anaerobic Chamber COY LAB PRODUCTS

Referências

  1. Bron, P. A., Van Baarlen, P., Kleerebezem, M. Emerging molecular insights into the interaction between probiotics and the host intestinal mucosa. Nature Reviews Microbiology. 10 (1), 66-78 (2012).
  2. Ruiz, L., Delgado, S., Ruas-Madiedo, P., Sánchez, B., Margolles, A. Bifidobacteria and their molecular communication with the immune system. Frontiers in Microbiology. 8, 1-9 (2017).
  3. Sanders, M. E., Merenstein, D. J., Reid, G., Gibson, G. R., Rastall, R. A. Probiotics and prebiotics in intestinal health and disease: from biology to the clinic. Nature Reviews Gastroenterology and Hepatology. 16 (10), 605-616 (2019).
  4. Pandey, K. R., Naik, S. R., Vakil, B. V. Probiotics, prebiotics and synbiotics- a review. Journal of Food Science and Technology. 52 (12), 7577-7587 (2015).
  5. Harish, K., Varghese, T. Probiotics in humans-evidence based review. Calicut Medical Journal. 4 (4), 3 (2006).
  6. Routy, B., et al. The gut microbiota influences anticancer immunosurveillance and general health. Nature Reviews Clinical Oncology. 15 (6), 382-396 (2018).
  7. Pampaloni, F., Reynaud, E. G., Stelzer, E. H. K. Most of the cell-based data-harvesting efforts that drive the integration of cell biology. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 8 (10), 839-845 (2007).
  8. Shamir, E. R., Ewald, A. J. Three-dimensional organotypic culture: Experimental models of mammalian biology and disease. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 15 (10), 647-664 (2014).
  9. Jong, B. K. Three-dimensional tissue culture models in cancer biology. Seminars in Cancer Biology. 15 (5), 365-377 (2005).
  10. Zanoni, M., et al. 3D tumor spheroid models for in vitro therapeutic screening: a systematic approach to enhance the biological relevance of data obtained. Scientific Reports. 6, 19103 (2016).
  11. Anton, D., Burckel, H., Josset, E., Noel, G. Three-dimensional cell culture: A breakthrough in vivo. International Journal of Molecular Sciences. 16 (3), 5517-5527 (2015).
  12. Lee, J. E., et al. Characterization of the Anti-Cancer Activity of the Probiotic Bacterium Lactobacillus fermentum Using 2D vs. 3D Culture in Colorectal Cancer Cells. Biomolecules. 9 (10), 557 (2019).
  13. Koledova, Z. 3D cell culture: An introduction. Methods in Molecular Biology. 1612, (2017).
  14. Kapałczyńska, M., et al. 2D and 3D cell cultures – a comparison of different types of cancer cell cultures. Archives of Medical Science. 14 (4), 910-919 (2018).
  15. Langhans, S. A. Three-dimensional in vitro cell culture models in drug discovery and drug repositioning. Frontiers in Pharmacology. 9, 1-14 (2018).
  16. Breslin, S., O’Driscoll, L. Three-dimensional cell culture: The missing link in drug discovery. Drug Discovery Today. 18 (5-6), 240-249 (2013).
  17. Mazzocchi, A. R., Rajan, S. A. P., Votanopoulos, K. I., Hall, A. R., Skardal, A. In vitro patient-derived 3D mesothelioma tumor organoids facilitate patient-centric therapeutic screening. Scientific Reports. 8, 2886 (2018).
  18. Lv, D., Hu, Z., Lu, L., Lu, H., Xu, X. Three-dimensional cell culture: A powerful tool in tumor research and drug discovery. Oncology Letters. 14 (6), 6999-7010 (2017).
  19. Thirumala, S., Gimble, J., Devireddy, R. Methylcellulose Based Thermally Reversible Hydrogel System for Tissue Engineering Applications. Cells. 2 (3), 460-475 (2013).
  20. Chandrashekran, A., et al. Methylcellulose as a scaffold in the culture of liver-organoids for the potential of treating acute liver failure. Cell and Gene Therapy Insights. 4 (11), 1087-1103 (2018).
  21. Lee, W., Park, J. 3D patterned stem cell differentiation using thermo-responsive methylcellulose hydrogel molds. Scientific Reports. 6, 1-11 (2016).
  22. Fan, H., Demirci, U., Chen, P. Emerging organoid models: Leaping forward in cancer research. Journal of Hematology and Oncology. 12 (1), 1-10 (2019).
  23. Drost, J., Clevers, H. Organoids in cancer research. Nature Reviews Cancer. 18 (7), 407-418 (2018).
  24. Liou, C. S., et al. A Metabolic Pathway for Activation of Dietary Glucosinolates by a Human Gut Symbiont. Cell. 180 (4), 717-728 (2020).
  25. Sherwin, E., Bordenstein, S. R., Quinn, J. L., Dinan, T. G., Cryan, J. F. Microbiota and the social brain. Science. 366 (6465), 2016 (2019).
  26. Honda, K., Littman, D. R. The microbiota in adaptive immune homeostasis and disease. Nature. 535 (7610), 75-84 (2016).
  27. Bárcena, C., et al. Healthspan and lifespan extension by fecal microbiota transplantation into progeroid mice. Nature Medicine. 25 (8), 1234-1242 (2019).
  28. Michalovich, D., et al. Obesity and disease severity magnify disturbed microbiome-immune interactions in asthma patients. Nature Communications. 10, 5711 (2019).
  29. Ansaldo, E., et al. Akkermansia muciniphila induces intestinal adaptive immune responses during homeostasis. Science. 364 (6446), 1179-1184 (2019).
check_url/pt/61285?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Lee, J., Lee, J., Kim, S., Kang, D., Yoo, H. M. Evaluating Cell Death Using Cell-Free Supernatant of Probiotics in Three-Dimensional Spheroid Cultures of Colorectal Cancer Cells. J. Vis. Exp. (160), e61285, doi:10.3791/61285 (2020).

View Video