Summary

تصنيع مصفوفة نانوية حيوية مع الأنابيب النانوية الأساسية يانوس وليفينيكتين للتصاق الخلايا الجذعية

Published: May 10, 2020
doi:

Summary

الهدف من هذا البروتوكول هو إظهار تجميع نانوماتريكس حيوي (NM) مع الأنابيب النانوية الأساسية يانوس (JBNTs) و Fibronectin (FN). عندما تشارك في الاستزراع مع الخلايا الجذعية المسكية البشرية (hMSCs)، تظهر NMs نشاطًا حيويًا ممتازًا في تشجيع الالتصاق hMSCs.

Abstract

تم تطوير NM حيويًا ليكون بمثابة سقالة بيولوجية هندسية للأنسجة ، والتي يمكن أن تعزز مرسى الخلايا الجذعية. يتم تشكيل NM الحيوية من JBNTs و FN من خلال التجميع الذاتي في محلول مائي. JBNTs قياس 200-300 μm في الطول مع قنوات جوفية الهيدربويك الداخلية والأسطح المائية الخارجية. يتم توجيه الاتهام بشكل إيجابي JBNTs والـ FNs مشحونة بشكل سلبي. لذلك، عندما حقن في حل مائي محايد، يتم ربطها معا عن طريق الترابط غير التكافؤ لتشكيل حزم NM. يتم الانتهاء من عملية التجميع الذاتي في غضون ثوان قليلة دون أي مبادرات كيميائية، مصدر الحرارة، أو الأشعة فوق البنفسجية. عندما يكون درجة النيّة المحلّل NM أقل من النقطة الأيزوكريتية لـ FNs (PI 5.5-6.0)، فإن حزم NM ستُطلق ذاتياً بسبب وجود FN مشحونة بشكل إيجابي.

ومن المعروف NM لتقليد مصفوفة خارج الخلية (ECM) شكلرفولوجي وبالتالي، يمكن استخدامها كسقالة عن طريق الحقن، والذي يوفر منصة ممتازة لتعزيز التصاق hMSC. ويشير تحليل كثافة الخلايا وتجارب التصوير المفلورة إلى أن نظم NMs زادت بشكل كبير من مرسى hMSCs مقارنة بالتحكم السلبي.

Introduction

وقد أظهرت الخلايا الجذعية mesenchymal الإنسان (hMSCs) إمكانية تجديد الذات والتمايز الذاتي على طول الأنساب mesenchymal المختلفة، مما يساعد في تجديد وصيانة الأنسجة1. وبناء على إمكانية التمايز، تعتبر hMSCs كمرشحين لإصابات الأنسجة المسكية وعلاج اضطراب الدم2. وقد أظهرت hMSCs القدرة على تعزيز التئام الجروح عن طريق زيادة إصلاح الأنسجة، الأوعية الدموية، والحد من الالتهاب3. ومع ذلك ، من دون مساعدة المواد الكيميائية الحيوية أو الحيوية ، فإن كفاءة hMSCs للوصول إلى الأنسجة المستهدفة والوظيفة في الموقع المطلوب منخفضة4. على الرغم من أن مختلف السقالات هندسيا قد استخدمت لجذب hMSCs للتمسك بالآفات، بعض المواقع مثل كسر لوحة النمو، في منتصف العظام الطويلة، لا يمكن الوصول إليها بسهولة من قبل السقالات التقليدية سابقة التصنيع، والتي قد لا تناسب تماما في موقع مصاب بشكل غير منتظم.

وقد طورنا هنا مادة نانوية ذات طبيعة حيوية يمكن أن تتجمع ذاتيا في الموقع وتحقن في منطقة يصعب الوصول إليها. وتتألف حقن الحيوي سقالة NM من نانوتيوب قاعدة جانوس (JBNTs) و Fibronectin (FN). JBNTs، والمعروف أيضا باسم الأنابيب النانوية روزيت (RNTs)، مستمدة من أزواج قاعدة الحمض النووي، وتحديدا الثيمين والأدينين، هنا7. كما رأينا في الشكل 1، تتشكل الأنابيب النانوية عند ستة جزيئات من أزواج قاعدة الحمض النووي المشتقة ذاتية التجميع عبر روابط الهيدروجين لتشكيل طائرة6. ثم يتم تكديس ستة جزيئات على بعضها البعض في طائرة عبر تفاعل قوي بين pi-stacking7، والذي يمكن أن يصل طوله إلى 200-300 ميكرومتر. تم تصميم JBNTs لتقليد ألياف الكولاجين بشكل مورفولوجي بحيث تتفاعل FN معها.

FN هو ارتفاع الوزن الجزيئية جليكوبروتين لاصقة، والتي يمكن العثور عليها في مصفوفة خارج الخلية (ECM)9. هذه يمكن أن تتوسط في تعلق الخلايا الجذعية على مكونات أخرى من ECM، ولا سيما الكولاجين10. قمنا بتصميم JBNTs لتقليد ألياف الكولاجين بشكل مورفولوجي حتى تتمكن FN من التفاعل معها لتشكيل NM في بضع ثوان عبر الترابط غير التكافؤ. لذلك، NM هو سقالة بيو واعدة ليتم حقنها في موقع كسر العظام التي لا يمكن الوصول إليها من قبل السقالات ملفقة تقليديا. هنا, NM عن طريق الحقن يقدم قدرة ممتازة لتعزيز المرسى hMSC في المختبر, عرض إمكاناتها لتكون بمثابة سقالة لتجديد الأنسجة.

Protocol

1. توليفة من JBNTs ملاحظة: تم إعداد monomer JBNT كما تم نشرهاسابقاً 11. تركيب المركب A1 إعداد حل يحتوي على 8.50 غرام من حمض 2-cyanoacetic و 9.80 غرام من الإيثيلكاراماتي في 25 مل من التولوين و 2.5 مل من N, N-dimethylformamide. إضافة 4.90 مل من الفوسفور كلوريد قطرة. ثم سخني الخليط إلى 70 درجة مئ?…

Representative Results

اكتشفت دراساتنا أن تشكيل NM من JBNTs و FN سريع ، وهو ما حدث في 10 ثوان. كما هو مبين في الشكل 2، تم الحصول على floccule الأبيض عندما تم خلط حل JBNT مع حل FN و pipetted عدة مرات. عملية تشكيل NM هو محاكاة حيوية تماما. لا توجد حاجة إلى محفزات خارجية. عملية تصنيع أسهل بكثير من بعض المواد الحيوية الناشئ?…

Discussion

في هذه الدراسة ، طورنا NM حيويًا ذاتي التجميع ، والذي تم تشكيله مع JBNTs و FN المستوحى من الحمض النووي. عند إعداد حل JBNT، ينبغي أن يذوب مسحوق التحلل JBNT في الماء بدلا من برنامج تلفزيوني لأن PBS سوف يسبب التكتل من JBNTs، الذي يمنع تجميعها. وعلاوة على ذلك، وينبغي أيضا أن يتم تجميعها في المياه NM إذا كنا نر?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

ويدعم هذا العمل ماليا من قبل المعاهد القومية للصحة (المنح 1R01AR072027-01، 1R03AR069383-01)، NSF جائزة الوظيفي (1653702) وجامعة كونيتيكت.

Materials

1,2-dichloroethane Alfa Aesar 39121
2-cyanoacetic acid Sigma-Aldrich C88505
4-Dimethylaminopyridine TCI America D1450
8 wells Chambered Coverglass Thermo Fisher 155409
96-well plate Corning 353072
absolute ethanol Thermo Fisher BP2818500
acetone Sigma-Aldrich 179124
acetonitrile Sigma-Aldrich 34851
allylamine Sigma-Aldrich 145831
Basic Plasma Cleaner Harrick Plasma PDC32G
citric acid Sigma-Aldrich 251275
concentrated hydrochloric acid Sigma-Aldrich H1758
Deionized water Thermo Fisher 15230147
dichloromethane Sigma-Aldrich 270997
diethyl ether Sigma-Aldrich 296082
Di-tert-butyl dicarbonate Sigma-Aldrich 361941
ethyl acetate Sigma-Aldrich 319902
ethylcarbamate Sigma-Aldrich U2500
Fibronectin Thermo Fisher PHE0023
Fixative Solution (4 % formaldehyde prepared in PBS) Thermo Fisher R37814
guanidinium hydrochloride Alfa Aesar A13543
hexanes Sigma-Aldrich 227064
Human mesenchymal stem cells Lonza PT-2501
methanol Sigma-Aldrich 34860
methyl iodide Sigma-Aldrich 289566
N,N-Diisopropylethylamine Alfa Aesar A17114
N,N-dimethylformamide Sigma-Aldrich 227056
N-Methylmorpholine N-oxide Alfa Aesar A19802
Osmium tetraoxide Alfa Aesar 45385
Penicillin-Streptomycin Thermo Fisher 15140163
Phosphate Buffer Solution Thermo Fisher 20012050
phosphoryl chloride Sigma-Aldrich 201170
potassium carbonate Sigma-Aldrich 347825
reverse phase column Thermo Fisher 25305-154630
Rhodamine Phalloidin Thermo Fisher R415
silica gel TCI America S0821
sodium bicarbonate Sigma-Aldrich S6014
sodium ethoxide Alfa Aesar L13083
sodium periodide Sigma-Aldrich 71859
sodium sulfate Sigma-Aldrich 239313
sodium sulfite Sigma-Aldrich S0505
sodium triacetoxyborohydride Alfa Aesar B22060
spectrophotometer(NanoDrop One/Oneᶜ UV-Vis) Thermo Fisher ND-ONE-W
Stem Cell Growth Medium BulletKit Lonza PT-3001
tetrahydrofuran Sigma-Aldrich 401757
thioanisole Sigma-Aldrich T28002
toluene Sigma-Aldrich 179418
triethylamine Alfa Aesar A12646
trifluoroacetic acid Alfa Aesar A12198
Triton X-100 Thermo Fisher HFH10
Trypsin-EDTA solution Thermo Fisher 25200056

Referências

  1. Yao, W., et al. Improved mobilization of exogenous mesenchymal stem cells to bone for fracture healing and sex difference. Stem Cells. 34 (10), 2587-2600 (2016).
  2. Salasznyk, R. M., Williams, W. A., Boskey, A., Batorsky, A., Plopper, G. E. Adhesion to vitronectin and collagen I promotes osteogenic differentiation of human mesenchymal stem cells. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 1 (2004), 24-34 (2004).
  3. Hadjiargyrou, M., O’Keefe, R. J. The convergence of fracture repair and stem cells: interplay of genes, aging, environmental factors and disease. Journal of Bone and Mineral Research. 29 (11), 2307-2322 (2014).
  4. De Becker, A., Riet, I. V. Homing and migration of mesenchymal stromal cells: How to improve the efficacy of cell therapy. World Journal of Stem Cells. 8 (3), 73-87 (2016).
  5. Chen, Y., Song, S., Yan, Z., Fenniri, H., Webster, T. J. Self-assembled rosette nanotubes encapsulate and slowly release dexamethasone. International Journal of Nanomedicine. 6, 1035-1044 (2011).
  6. Song, S., Chen, Y., Yan, Z., Fenniri, H., Webster, T. J. Self-assembled rosette nanotubes for incorporating hydrophobic drugs in physiological environments. International Journal of Nanomedicine. 6, 101-107 (2011).
  7. Fenniri, H., et al. Helical Rosette Nanotubes: Design, Self-Assembly, and Characterization. Journal of the American Chemical Society. 123 (16), 3854-3855 (2001).
  8. Chen, Y., et al. Self-assembled rosette nanotube/hydrogel composites for cartilage tissue engineering. Tissue Engineering Part C Methods. 16 (6), 1233-1243 (2010).
  9. Van den Bogaerdt, A. J., et al. Collagen cross-linking by adipose-derived mesenchymal stromal cells and scar-derived mesenchymal cells: Are mesenchymal stromal cells involved in scar formation. Wound Repair and Regeneration. 17 (4), 548-558 (2009).
  10. Erickson, H. P., Carrell, N., McDonagh, J. Fibronectin molecule visualized in electron microscopy: a long, thin, flexible strand. Journal of Cell Biology. 91 (3), 673-678 (1981).
  11. Chen, Q., Yu, H. C., Chen, Y. P. . U. S. Patent. , (2017).
  12. Zhou, L., et al. Self-assembled biomimetic Nano-Matrix for stem cell Anchorage. Journal of Biomedical Materials and Research. 108, 984-991 (2020).
  13. Jones, M., Leroux, J. Polymeric micelles – a new generation of colloidal drug carriers. European Journal of Pharmaceutics and Biopharmaceutics. 48 (2), 101-111 (1999).
  14. Singh, P., Schwarzbauer, J. E. Fibronectin and stem cell differentiation – lessons from chondrogenesis. Journal of Cell Science. 125, 3703-3712 (2012).
  15. Martino, M. M., et al. Controlling integrin specificity and stem cell differentiation in 2D and 3D environments through regulation of fibronectin domain stability. Biomaterials. 30 (6), 1089-1097 (2009).
  16. Somaiah, C., et al. Collagen promotes higher adhesion, survival and proliferation of mesenchymal stem cells. PLoS One. 10 (12), 0145068 (2015).
  17. Ogura, N., et al. Differentiation of the human mesenchymal stem cells derived from bone marrow and enhancement of cell attachment by fibronectin. Journal of Oral Science. 46 (4), 207-213 (2004).
  18. Do, A. V., Khorsand, B., Geary, S. M., Salem, A. K. 3D Printing of scaffolds for tissue regeneration applications. Advanced Healthcare Materials. 4 (12), 1742-1762 (2015).
  19. Shi, W., et al. Structurally and functionally optimized silk-fibroin-gelatin scaffold using 3D printing to repair cartilage injury in vitro and in vivo. Advanced Material. 29, 1701089 (2017).
  20. Journeay, W. S., Suri, S. S., Moralez, J. G., Fenniri, H., Singh, B. Low inflammatory activation by self-assembling Rosette nanotubes in human Calu-3 pulmonary epithelial cells. Small. 4 (6), 817-823 (2008).
  21. Journeay, W. S., Suri, S. S., Moralez, J. G., Fenniri, H., Singh, B. Rosette nanotubes show low acute pulmonary toxicity in vivo. International Journal of Nanomedicine. 3 (3), 373-383 (2008).
check_url/pt/61317?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Zhou, L., Yau, A., Zhang, W., Chen, Y. Fabrication of a Biomimetic Nano-Matrix with Janus Base Nanotubes and Fibronectin for Stem Cell Adhesion. J. Vis. Exp. (159), e61317, doi:10.3791/61317 (2020).

View Video