Summary

En murinmodell av fosterexponering för moderns inflammation för att studera effekterna av akut chorioamnionitis på nyfödda tarmutveckling

Published: June 24, 2020
doi:

Summary

Vi utvecklade en modell av chorioamnionitis för att simulera fetala exponering för moderns inflammation (FEMI) utan komplikationer av levande organismer för att undersöka effekterna av FEMI på utvecklingen av avkommans tarmkanalen. Detta möjliggör studier av mekanistiska orsaker till utveckling av tarmskada efter chorioamnionitis.

Abstract

Chorioamnionitis är en vanlig fällning av prematur födsel och är associerad med många av sjukligheterna av prematurity, inklusive necrotizing enterocolitis (NEC). En mekanistisk koppling mellan dessa två villkor återstår dock att upptäcka. Vi har antagit en murin modell av chorioamnionitis omfattar lipopolysackarid (LPS)-inducerad fetala exponering för moderns inflammation (FEMI). Denna modell av FEMI inducerar en steril moderns, placenta och fetala inflammatoriska kaskad, som också finns i många fall av klinisk chorioamnionitis. Även om modeller finns som använder levande bakterier och mer exakt efterliknar patofysiologin hos en stigande infektion som resulterar i chorioamnionitis, kan dessa metoder orsaka indirekta effekter på utvecklingen av det omogna tarmkanalen och det tillhörande utvecklande mikrobiomet. Med hjälp av detta protokoll har vi visat att LPS-inducerad FEMI resulterar i en dosberoende ökning av graviditetsförlust och prematur födsel, samt störningar av normal tarmutveckling hos avkommor. Vidare har vi visat att FEMI avsevärt ökar tarmskada och serumcytokiner hos avkommor, samtidigt som bägare och Paneth-celler minskar, som båda ger en första rad av medfödd immunitet mot tarminflammation. Även om en liknande modell av LPS-inducerad FEMI har använts för att modellera associeringen mellan chorioamnionitis och efterföljande avvikelser i centrala nervsystemet, till vår kunskap, är detta protokoll den första att försöka klargöra en mekanistisk länk mellan chorioamnionitis och senare störningar i tarmutveckling som en potentiell länk mellan chorioamnionitis och NEC.

Introduction

De chorionic membranen spelar en integrerad roll i däggdjur graviditet. De inkluderar chorion och amnion, som tjänar flera funktioner. De omger och skyddar fostret, underlättar parakrina signalering mellan moderns och fostretsfack 1, och skapar lokala återkopplingsöglor i de korrioniska membranen, som kan vara involverade i att initiera förlossning1. Nuvarande förståelse av membranen indikerar att amnion ger strukturell barriärfunktion, och chorion ger en immunologisk buffert främst för att skydda det utvecklande fostret från moderns immunsystem2. Inflammation i dessa membran är känd som chorioamnionitis. Historiskt gjordes diagnos av kliniska chorioamnionitis efter förekomsten av moderns feber plus en eller flera fetala eller moderns kliniska resultat3,4. Men även om denna definition är kliniskt användbar, dess brist på precision har gjort chorioamnionitis forskning utmanande. I ett försök att klargöra diagnosen definierade eunice Kennedy Shriver National Institute for Child Health and Human Development chorioamnionitis som intrauterin inflammation eller infektion, eller båda (trippel I)3. Detta klargörande är viktigt eftersom medan mikrobiell inducerad infektion är en viktig orsak till livmoder/fosterhinneinflammation, förekommer det mindre vanligt än steril livmoder/fosterhinnan inflammation5,6,7. Sammantaget är chorioamnionitis fortfarande ett betydande folkhälsoproblem, som det ses i 2\u20124% av termleveranserna och 25\u201230% av prematurleveranserna8,9.

Chorioamnionitis kan ha betydande effekter på fostret och hos. Det har dokumenterats väl i litteraturen att chorioamnionitis är associerad med ökad risk för många av sjukligheterna av mödraskap, inklusive bronchopulmonary dysplasi10,cerebral vit frågaskada 11,intraventricular blödning12,retinopati av prematuritet13, och både misstänkt och bekräftade tidigt insjukna neonatal sepsis14,15. Eftersom vi är intresserade av skade- och reparationsmekanismer i det omogna tarmkanalen är det viktigt att notera att chorioamnionitis också är förknippad med senare utveckling av nekrotiserande enterokolit (NEC)15,16. NEC är en förödande gastrointestinal sjukdom hos prematura spädbarn som resulterar i ett dysreglerat värdsvar på inflammation och efterföljande tarmnekros17. Varje år drabbar NEC över 4000 spädbarn i USA, och upp till en tredjedel av dessa spädbarn dör av sjukdomen18. Patogenesen vid NEC innebär sannolikt en kombination av tarmomognad, dysregulering av det omogna immunsystemet, tarminflammation och bakteriellflyttning 19, vilket kulminerar i en slutlig gemensam väg för tarmnekros. Viktigt är att uppkomsten av NEC ofta inträffar veckor efter födseln och potentiell exponering för chorioamnionitis, vilket gör den mekanistiska länken mellan chorioamnionitis och efterföljande utveckling av NEC oklart20. En potentiell mekanism genom vilken chorioamnionitis kan bidra till pathophysiology av NEC är genom uppreglering av moderns immunsystem, därefter producerar en stark fetala inflammatoriska svar som kan störa normala fetala utvecklingsmönster21,22,23.

Flera däggdjursmodeller av chorioamnionitis finns hos gnagare och får24,25,26,27,28,29,30,31,32. Det finns dock få data om utvecklingen av tarmkanalen efter den första nyfödda perioden efter chorioamnionitis-inducerad fetala exponering för moderns inflammation (FEMI). För att utforska förhållandet mellan FEMI och efterföljande utveckling av skada i det omogna tarmkanalen har vi anpassat lipopolysackarid (LPS)-inducerad FEMI-modell. Lipopolysackarider är en viktig komponent i den extracellulära ytan på gramnegativa bakterier och är ett potent stimulerande medel för det medfödda immunsystemet hos flera eukaryota arter, inklusive människor33. Moderns LPS injektion resulterar i en steril inflammatorisk kaskad utan förvirrande effekter av levande bakterier, och det är en väletablerad modell för induktion av prematur födsel34, liksom en modell av akut chorioamnionitis och fetala inflammatoriska svar syndrom (FIRS), som är den allvarligaste formen av chorioamnionitis24,35. Det har också visat sig inducera både cerebral vit och grå materia skada i en får modell36 och en murin modell37,38,39,40. Men till vår kunskap är vi de första att använda denna modell av chorioamnionitis och FEMI för att undersöka dess effekter på utvecklingen av mag-tarmkanalen tidigare födseln, liksom att undersöka en möjlig mekanistisk länk mellan chorioamnionitis och senare utveckling av NEC41,42.

Protocol

Alla djurförsök godkändes av University of Iowa Institutional Animal Care and Use Committee (Protocol #8041401). Alla djur inrymdes i ett association för bedömning och ackreditering av laboratoriedjurvård (AALAC) godkänt vivarium vid University of Iowa. Alla möss var vilda typ stam C57Bl/6J. 1. Etablering av FEMI hos dräktiga möss LPS-förberedelse Använd LPS som härrör från Escherichia coli O55:B5 (stamkoncentration 2 mg/ml). Späd LPS-stamk…

Representative Results

Exponering för FEMI på embryonal dag 15 leder till en dosberoende förlust av graviditet och en dosberoende frekvens av prematurt arbete (figur 1)42. För experimenten valde vi att använda en LPS-dos på 100 μg/kg för att minimera graviditetsförlust och prematuritet (50% förlust mellan både prematuritet och intrauterin fosteravgång) samtidigt som fostret utsattes för en betydande inflammatorisk förolämpning. Med hjälp av detta …

Discussion

Chorioamnionitis påverkar 2\u20124% av löptiden och 25\u201230% av prematur leveranser8,9. Effekten av chorioamnionitis kan dock förlänga lång efter födseln eftersom det har visat sig ha betydande effekter på fostret och nyfödda10,11,12,13,14,15,<su…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes delvis genom National Institutes of Health (DK097335 & T32AI007260) och University of Iowa Stead Family Department of Pediatrics.

Materials

10% neutral buffered formalin Sigma HT501128
Alcian blue stain Newcomer supply 1003A
C57Bl6/J mice Jackson Laboratories 664
Ethanol Decon labs 2701
HCl Sigma H1758
Hematoxylin stain Leica 381562
LPS Sigma L2880
NaHCO3 Sigma S6014
Nikon Eclipse Ni-U Microscope Nikon 2CE-MQVJ-1
Periodic Acid ACROS H5106 CAS# 10450-59-9
RNAlater Thermofisher Am7021
Schiff's reagent Sigma S5133
Secor Imager 2400 Meso Scale Discovery (MSD)
V-Plex Assay Meso Scale Discovery (MSD)
Xylene Sigma 534056

Referências

  1. Myatt, L., Sun, K. Role of fetal membranes in signaling of fetal maturation and parturition. International Journal of Developmental Biology. 54 (2-3), 545-553 (2010).
  2. Verbruggen, S. W., Oyen, M. L., Phillips, A. T., Nowlan, N. C. Function and failure of the fetal membrane: Modelling the mechanics of the chorion and amnion. PLoS One. 12 (3), 0171588 (2017).
  3. Higgins, R. D., et al. Evaluation and Management of Women and Newborns With a Maternal Diagnosis of Chorioamnionitis: Summary of a Workshop. Obstetrics & Gynecology. 127 (3), 426-436 (2016).
  4. Peng, C. C., Chang, J. H., Lin, H. Y., Cheng, P. J., Su, B. H. Intrauterine inflammation, infection, or both (Triple I): A new concept for chorioamnionitis. Pediatrics and Neonatology. 59 (3), 231-237 (2018).
  5. Romero, R., et al. Prevalence and clinical significance of sterile intra-amniotic inflammation in patients with preterm labor and intact membranes. American Journal of Reproductive Immunology. 72 (5), 458-474 (2014).
  6. Romero, R., et al. Sterile intra-amniotic inflammation in asymptomatic patients with a sonographic short cervix: prevalence and clinical significance. Journal of Maternal-Fetal and Neonatal. , 1-17 (2014).
  7. Romero, R., et al. Sterile and microbial-associated intra-amniotic inflammation in preterm prelabor rupture of membranes. Journal of Maternal-Fetal and Neonatal Medicine. 28 (12), 1394-1409 (2015).
  8. Goldenberg, R. L., Culhane, J. F., Iams, J. D., Romero, R. Epidemiology and causes of preterm birth. Lancet. 371 (9606), 75-84 (2008).
  9. Erdemir, G., et al. Histological chorioamnionitis: effects on premature delivery and neonatal prognosis. Pediatrics and Neonatology. 54 (4), 267-274 (2013).
  10. Metcalfe, A., Lisonkova, S., Sabr, Y., Stritzke, A., Joseph, K. S. Neonatal respiratory morbidity following exposure to chorioamnionitis. BMC Pediatrics. 17 (1), 128 (2017).
  11. Anblagan, D., et al. Association between preterm brain injury and exposure to chorioamnionitis during fetal life. Scientific Reports. 6, 37932 (2016).
  12. Villamor-Martinez, E., et al. Corrigendum: Chorioamnionitis Is a Risk Factor for Intraventricular Hemorrhage in Preterm Infants: A Systematic Review and Meta-Analysis. Frontiers in Physiology. 10, 102 (2019).
  13. Villamor-Martinez, E., et al. Chorioamnionitis as a risk factor for retinopathy of prematurity: An updated systematic review and meta-analysis. PLoS One. 13 (10), 0205838 (2018).
  14. Randis, T. M., et al. Incidence of early-onset sepsis in infants born to women with clinical chorioamnionitis. Journal of Perinatal Medicine. 46 (8), 926-933 (2018).
  15. Rodrigo, F. G. M., Henriquez F, G. G., Aloy, F. J., Perez, G. A. A. Outcomes of very-low-birth-weight infants exposed to maternal clinical chorioamnionitis: a multicentre study. Neonatology. 106 (3), 229-234 (2014).
  16. Been, J. V., Lievense, S., Zimmermann, L. J., Kramer, B. W., Wolfs, T. G. Chorioamnionitis as a risk factor for necrotizing enterocolitis: a systematic review and meta-analysis. Journal of Pediatrics. 162 (2), 236-242 (2013).
  17. Tanner, S. M., et al. Pathogenesis of necrotizing enterocolitis: modeling the innate immune response. American Journal of Pathology. 185 (1), 4-16 (2015).
  18. Fitzgibbons, S. C., et al. Mortality of necrotizing enterocolitis expressed by birth weight categories. Journal of Pediatric Surgery. 44 (6), 1075-1076 (2009).
  19. Vongbhavit, K., Underwood, M. A. Prevention of Necrotizing Enterocolitis Through Manipulation of the Intestinal Microbiota of the Premature Infant. Clinical Therapeutics. 38 (4), 716-732 (2016).
  20. Yee, W. H., et al. Incidence and timing of presentation of necrotizing enterocolitis in preterm infants. Pediatrics. 129 (2), 298-304 (2012).
  21. Gantert, M., et al. Chorioamnionitis: a multiorgan disease of the fetus. Journal of Perinatology. 30, 21-30 (2010).
  22. Hudalla, H., et al. LPS-induced maternal inflammation promotes fetal leukocyte recruitment and prenatal organ infiltration in mice. Pediatric Research. 84 (5), 757-764 (2018).
  23. Yamada, N., et al. Histological severity of fetal inflammation is useful in predicting neonatal outcome. Placenta. 36 (12), 1490-1493 (2015).
  24. Wolfe, K. B., et al. Modulation of lipopolysaccharide-induced chorioamnionitis in fetal sheep by maternal betamethasone. Reproductive Sciences. 20 (12), 1447-1454 (2013).
  25. Normann, E., et al. A novel mouse model of Ureaplasma-induced perinatal inflammation: effects on lung and brain injury. Pediatric Research. 65 (4), 430-436 (2009).
  26. Burd, I., Brown, A., Gonzalez, J. M., Chai, J., Elovitz, M. A. A mouse model of term chorioamnionitis: unraveling causes of adverse neurological outcomes. Reproductive Sciences. 18 (9), 900-907 (2011).
  27. Dell’Ovo, V., et al. An animal model for chorioamnionitis at term. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 213 (3), 387 (2015).
  28. Randis, T. M., et al. Group B Streptococcus beta-hemolysin/cytolysin breaches maternal-fetal barriers to cause preterm birth and intrauterine fetal demise in vivo. Journal of Infectious Diseases. 210 (2), 265-273 (2014).
  29. Breen, K., et al. TLR-4-dependent and -independent mechanisms of fetal brain injury in the setting of preterm birth. Reproductive Sciences. 19 (8), 839-850 (2012).
  30. Burd, I., Balakrishnan, B., Kannan, S. Models of fetal brain injury, intrauterine inflammation, and preterm birth. American Journal of Reproductive Immunology. 67 (4), 287-294 (2012).
  31. Agrawal, V., et al. Role of Notch signaling during lipopolysaccharide-induced preterm labor. Journal of Leukocyte Biology. 100 (2), 261-274 (2016).
  32. Filipovich, Y., Klein, J., Zhou, Y., Hirsch, E. Maternal and fetal roles in bacterially induced preterm labor in the mouse. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 214 (3), 381-389 (2016).
  33. Alexander, C., Rietschel, E. T. Bacterial lipopolysaccharides and innate immunity. Journal of Endotoxin Research. 7 (3), 167-202 (2001).
  34. McCarthy, R., et al. Mouse models of preterm birth: suggested assessment and reporting guidelines. Biology of Reproduction. 99 (5), 922-937 (2018).
  35. Rueda, C. M., et al. Lipopolysaccharide-Induced Chorioamnionitis Promotes IL-1-Dependent Inflammatory FOXP3+ CD4+ T Cells in the Fetal Rhesus Macaque. Journal of Immunology. 196 (9), 3706-3715 (2016).
  36. Gavilanes, A. W., et al. Chorioamnionitis induced by intraamniotic lipopolysaccharide resulted in an interval-dependent increase in central nervous system injury in the fetal sheep. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 200 (4), 431-438 (2009).
  37. Boksa, P. Effects of prenatal infection on brain development and behavior: a review of findings from animal models. Brain, Behavior, and Immunity. 24 (6), 881-897 (2010).
  38. Knuesel, I., et al. Maternal immune activation and abnormal brain development across CNS disorders. Nature Reviews Neurology. 10 (11), 643-660 (2014).
  39. Garay, P. A., Hsiao, E. Y., Patterson, P. H., McAllister, A. K. Maternal immune activation causes age- and region-specific changes in brain cytokines in offspring throughout development. Brain, Behavior, and Immunity. 31, 54-68 (2013).
  40. Smith, S. E., Li, J., Garbett, K., Mirnics, K., Patterson, P. H. Maternal immune activation alters fetal brain development through interleukin-6. Journal of Neuroscience. 27 (40), 10695-10702 (2007).
  41. Elgin, T. G., et al. Fetal exposure to maternal inflammation interrupts murine intestinal development and increases susceptibility to neonatal intestinal injury. Disease Models & Mechanisms. 12 (10), (2019).
  42. Fricke, E. M., et al. Lipopolysaccharide-induced maternal inflammation induces direct placental injury without alteration in placental blood flow and induces a secondary fetal intestinal injury that persists into adulthood. American Journal of Reproductive Immunology. 79 (5), 12816 (2018).
  43. Wynn, J. L., et al. Targeting IL-17A attenuates neonatal sepsis mortality induced by IL-18. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 113 (19), 2627-2635 (2016).
  44. Brown, K. S., et al. Tumor necrosis factor induces developmental stage-dependent structural changes in the immature small intestine. Mediators of Inflammation. 2014, 852378 (2014).
  45. McElroy, S. J., et al. The ErbB4 ligand neuregulin-4 protects against experimental necrotizing enterocolitis. American Journal of Pathology. 184 (10), 2768-2778 (2014).
  46. McElroy, S. J., et al. Tumor necrosis factor receptor 1-dependent depletion of mucus in immature small intestine: a potential role in neonatal necrotizing enterocolitis. American Journal of Physiology – Gastrointestinal and Liver Physiology. 301 (4), 656 (2011).
  47. Stanford, A. H., et al. A direct comparison of mouse and human intestinal development using epithelial gene expression patterns. Pediatric Research. , (2019).
  48. McElroy, S. J., Weitkamp, J. H. Innate Immunity in the Small Intestine of the Preterm Infant. NeoReviews. 12 (9), 517-526 (2011).
  49. McElroy, S. J., Underwood, M. A., Sherman, M. P. Paneth cells and necrotizing enterocolitis: a novel hypothesis for disease pathogenesis. Neonatology. 103 (1), 10-20 (2013).
  50. Park, B. S., Lee, J. O. Recognition of lipopolysaccharide pattern by TLR4 complexes. Experimental & Molecular Medicine. 45, 66 (2013).
  51. Lester, S. N., Li, K. Toll-like receptors in antiviral innate immunity. Journal of Molecular Biology. 426 (6), 1246-1264 (2014).
  52. Pott, J., et al. Age-dependent TLR3 expression of the intestinal epithelium contributes to rotavirus susceptibility. PLOS Pathogens. 8 (5), 1002670 (2012).
check_url/pt/61464?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Juber, B. A., Elgin, T. G., Fricke, E. M., Gong, H., Reese, J., McElroy, S. J. A Murine Model of Fetal Exposure to Maternal Inflammation to Study the Effects of Acute Chorioamnionitis on Newborn Intestinal Development. J. Vis. Exp. (160), e61464, doi:10.3791/61464 (2020).

View Video