Summary

Differentiering af monocytter til fænocypisk forskellige makrofager efter behandling med human navlestrengsblod stamceller (CB-SC)-Afledte Exosomer

Published: November 12, 2020
doi:

Summary

Exosome ansøgning er et nyt værktøj til udvikling af lægemidler og regenerativ medicin. Vi etablerer en exosome isolation protokol med høj renhed til at isolere exosomer fra nye identificerede stamceller kaldet CB-SC for mekanistiske undersøgelser. Vi har også coculture CB-SC-afledte exosomer med menneskelige monocytter, hvilket fører til deres differentiering i fænocypisk forskellige makrofager.

Abstract

Stamcellepædagog (SCE) terapi er en ny klinisk tilgang til behandling af type 1 diabetes og andre autoimmune sygdomme. SCE terapi cirkulerer den isolerede patientens blod mononuclear celler (f.eks lymfocytter og monocytter) gennem en aferese maskine, co-kulturer patientens blod mononukleare celler med klæbende navlestrengsblod-afledte stamceller (CB-SC) i SCE-enheden, og derefter returnerer disse “uddannede” immunceller til patientens blod. Exosomer er nano-størrelse ekstracellulære vesikler mellem 30 \u2012150 nm eksisterende i alle biofluid og cellekultur medier. For yderligere at udforske molekylære mekanismer, der ligger til grund for SCE-behandling og bestemme handlinger exosomer frigivet fra CB-SC, undersøger vi, hvilke celler der er omfattende disse exosomer under behandlingen med CB-SC. Ved at co-culturing Dio-mærket CB-SC-afledte exosomer med menneskelige perifere blod mononukleare celler (PBMC), fandt vi, at CB-SC-afledte exosomer overvejende blev taget op af menneskelige CD14-positive monocytter, hvilket fører til differentiering af monocytter i type 2 makrofager (M2), med spindel-lignende morfologi og udtryk for M2-associerede overflademolekyliske markører. Her præsenterer vi en protokol for isolering og karakterisering af CB-SC-afledte eksosomer og protokollen for co-kultur CB-SC-afledte exosomer med menneskelige monocytter og overvågning af M2 differentiering.

Introduction

Navlestrengsblod stamceller (CB-SC) er unikke type stamceller identificeret fra humant navlestrengsblod og adskiller sig fra andre kendte typer stamceller såsom mesenkymale stamceller (MSC) og hæmatopoietiske stamceller (HSC)1. Baseret på deres unikke egenskaber af immun modulering og deres evne til stramt at holde sig til overfladen af petriskåle, vi udviklet en ny teknologi udpeget som Stem Cell Educator (SCE) terapi ikliniske forsøg 2,3. Under SCE terapi, en patients perifere blod mononukleare celler (PBMC) indsamles og cirkuleres gennem en celle separator og co-kulturperler med klæbende CB-SC in vitro. Disse “uddannede” celler (CB-SC-behandlet PBMC) returneres derefter til patientens cirkulation i et lukket kredsløb. Kliniske forsøg har allerede vist den kliniske sikkerhed og virkning af SCE-behandling til behandling af autoimmune sygdomme, herunder type 1-diabetes (T1D)2,4 ogalopeci areata (AA)5.

Exosomer er en familie af nanopartikler med diametre på 30\u2012150 nm og findes i alle biofluid og cellekultur medier6. Exosomer er beriget med mange bioaktive molekyler, herunder lipider, mRNAs, proteiner og microRNA ‘er (miRNA), og spiller en vigtig rolle i celle-til-celle kommunikation. For sent, exosomer er blevet mere attraktivt for forskere og farmaceutiske virksomheder på grund af deres terapeutiske potentialer i klinikker7,8,9. For nylig, vores mekanistiske undersøgelser viste, at CB-SC-frigivet exosomer bidrage til immunmodulering af SCE terapi10.

Her beskriver vi protokollen for at udforske mekanismen i SCE terapi rettet mod monocytter af CB-SC-frigivet exosomer. For det første blev EXosomer, der blev frigivet af CB-SC, isoleret fra CB-SC-afledte betingede medier ved hjælp af ultracentrifugeringsmetoder og valideret ved flowcytometri, western blot (WB) og dynamisk lyssprændering (DLS). For det andet, CB-SC-afledte exosomer blev mærket med en grøn fluorescerende lipofile farvestof: Dio. For det tredje var de co-kulturperler med PBMC at undersøge de positive procenter af Dio-mærket CB-SC-afledte exosomer på de forskellige delpopulationer af PBMC ved flow cytometri. Denne protokol giver vejledning til at undersøge handlingen af exosomer underliggende immunmodulering af stamceller.

Protocol

Protokollen følger retningslinjerne for institutionelle menneskelige forskning etiske udvalg på Center for Discovery og Innovation, Hackensack Meridian Health. Human buffy pels blod enheder blev købt fra New York Blood Center (New York, NY). Human navlestrengsblod enheder blev indsamlet fra raske donorer og købt fra Cryo-Cell International blodbank (Oldsmar, FL). Både New York Blood Center og Cryo-Cell har modtaget alle akkrediteringer for blodtapninger og distributioner, med IRB godkendelse og underskrevet Samtykke…

Representative Results

I første omgang blev CB-SC’s fænotype og renhed undersøgt ved flowcytometri med CB-SC-tilknyttede markører såsom leukocytgenereret antigen CD45, ES-cellespecifikke transskriptionsfaktorer OCT3/4 og SOX2. CB-SC viser høje niveauer af CD45, OCT3/4, SOX2, CD270 og galectin 9-udtryk, men intet udtryk for CD34 (Figur 1A). Flowcytometrianalyse bekræftede eksosomspecifikke markører, herunder CD9, CD81 og CD63, var på CB-SC-afledte eksosomer (Figur 1B). Morfolo…

Discussion

Anvendelse af exosomer er et nyt område for klinisk diagnose, lægemiddeludvikling og regenerativ medicin. Her præsenterer vi en detaljeret protokol om fremstilling af CB-SC-afledte eksosomer og den funktionelle undersøgelse af exosomer om differentiering af menneskelige monocytter. Den nuværende protokol viste, at funktionelle CB-SC-afledte eksosomer er isoleret ved sekventiel centrifugering og ultracentrifugering med høj renhed og udviser immunmodulering på monocytter.

Sammenlignet med…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi er taknemmelige for Mr. Poddar og Mr. Ludwig for generøs finansiering støtte via Hackensack UMC Foundation. Vi sætter pris på Laura Zhao for engelsk redigering.

Materials

1.5 ml Microcentrifuge tube Fisher Scientific 05-408-129
15 ml conical tube Falcon 352196
24-well plate Falcon 351147 Non-tissue culture
plate
3,3'-Diostadecyloxacarbocyanine perchlorate(Dio) Millipore sigma D4292-20MG Store at 4 °C
300 Mesh Grids Ted Pella 1GC300
50 mL conical tube Falcon 352070
6-well plate Falcon 353046 Tissue culture plate
96-well plate Falcon 353072 Tissue culture plate
ACK Lysis Buffer Lonza 10-548E 100 ml
Amicon-15 10kDa Centrifuge Fliter Unit Millipore sigma UFC901024
Anti-Human Alix Biolegend 634501 store at 4 °C, RRID: AB_2268110
Anti-Human Calnexin Biolegend 699401 store at 4 °C, RRID: AB_2728519
Anti-Human CD11c antibody, Pe-Cy7 BD Bioscience 561356 store at 4 °C, RRID: AB_10611859
Anti-Human CD14 antibody, Karma Orange Beckman Coulter B36294 store at 4 °C, RRID: AB_2728099
Anti-Human CD163 antibody, PE BD Bioscience 556018 store at 4 °C, RRID: AB_396296
Anti-Human CD19 antibody, PC5 Beckman Coulter IM2643U store at 4 °C, RRID: AB_131160
Anti-Human CD206 antibody, FITC BD Bioscience 551135 store at 4 °C, RRID: AB_394065
Anti-Human CD209 antibody, Brilliant Violet 421 BD Bioscience 564127 store at 4 °C, RRID: AB_2738610
Anti-Human CD270 antibody, PE Biolegend 318806 store at 4 °C, RRID: AB_2203703
Anti-Human CD3 antibody, Pacfic Blue Biolegend 300431 store at 4 °C, RRID: AB_1595437
Anti-Human CD34 antibody, APC Beckman Coulter IM2427U store at 4 °C, RRID: N/A
Anti-Human CD4 antibody, APC BD Bioscience 555349 store at 4 °C, RRID: AB_398593
Anti-Human CD45 antibody, Pe-Cy7 Beckman Coulter IM3548U store at 4 °C, RRID: AB_1575969
Anti-Human CD56 antibody, PE Beckman Coulter IM2073U store at 4 °C, RRID: AB_131195
Anti-Human CD63 antibody,PE BD Bioscience 561925 store at 4 °C, RRID: AB_10896821
Anti-Human CD8 antibody, APC-Alexa Fluor 750 Beckman Coulter A94686 store at 4 °C, RRID: N/A
Anti-Human CD80 antibody, APC Beckman Coulter B30642 store at 4 °C, RRID: N/A
Anti-Human CD81 antibody, FITC BD Bioscience 561956 store at 4 °C, RRID: AB_394049
Anti-Human CD86 antibody, APC-Alexa Fluor 750 Beckman Coulter B30646 store at 4 °C, RRID: N/A
Anti-Human CD9 antibody, FITC ThermoScientic MA5-16860 store at 4 °C, RRID: AB_2538339
Anti-Human Galectin 9 antibody, Brilliant Violet 421 Biolegend 348919 store at 4 °C, RRID: AB_2716134
Anti-Human OCT3/4 antibody, eFluor660 ThermoScientic 50-5841-82 store at 4 °C, RRID: AB_11218882
Anti-Human SOX2 antibody, Alexa Fluor 488 ThermoScientic 53-9811-82 store at 4 °C, RRID: AB_2574479
BCA Protein Assay Kit ThermoFisher Scientific 23227
Bovine Serum Albumin Millipore Sigma A1933
Buffy coat New York Blood Center 40-60 ml/unit
Cell scraper Falcon 353085
Disposable semi-micro cuvette VWR 97000590
Dissociation buffer Gibco 131510014 100 ml
Dual-Chanber cell counting slides Bio-Rad 1450015
Exosome-Human CD63 Detection reagent ThermoFisher Scientific 10606D store at 4 °C
Ficoll-Paque PLUS density grandient media GE Health 17-1440-03 500 ml
Fixed-Angle Rotor(25°) Thermo Scientifc 75003698 Maxium 24,700 x g
Gallios flow cytometer Beckman Coulter 3 lasers
10 Color Max
Human cord blood Cryo-Cell International 40-100 ml/unit
Human Fc Block BD Bioscience 564220 store at 4 °C
Immun-Blot PVDF membrane Bio-Rad 1620177
Millex-GP Syringe Filter Unit, 0.22 µm Millipore Sigma SLGP033RS
Optima XE-90 Ultracentriguge Beckman Coulter
Orbital Shaker MP4 BioExpress S-3500-1
PBS ThermoFisher Scientific 10010049 500 ml
Propidium Iodide BD Bioscience 56-66211E store at 4 °C
Nikon Eclipse Ti2 microscope Nikon instruments Inc Eclipse Ti2 NIS-Elements software version 5.11.02
Hochest 33342 Thermo Scientifc 62249 5 ml
Revert microsopy Fisher scientific 12563518
Rotor 41 Ti Beckman Coulter 331362 Maxium 41,000 rpm
Sorvall St 16R Centrifuge Thermo Scientifc 75004381
Swinging Bucket Rotor Thermo Scientifc 75003655
TC-20 cell counter Bio-Rad
ThermoScientific Forma 380 Steri Cycle CO2 Incubator ThermoFisher Scientific
Transmission electron microscopy JEOL JEM-2100 PLUS
Ultracentrifuge tube Beckman Coulter 331372
X'VIVO 15 Serum-free medium Lonza BEBP04-744Q 1000 ml Culture medium, store at 4 °C

Referências

  1. Zhao, Y. Stem cell educator therapy and induction of immune balance. Current Diabetes Reports. 12 (5), 517-523 (2012).
  2. Zhao, Y., et al. Reversal of type 1 diabetes via islet beta cell regeneration following immune modulation by cord blood-derived multipotent stem cells. BMC Medicine. 10 (1), 3 (2012).
  3. Zhao, Y., et al. Targeting insulin resistance in type 2 diabetes via immune modulation of cord blood-derived multipotent stem cells (CB-SCs) in stem cell educator therapy: phase I/II clinical trial. BMC Medicine. 11, 160 (2013).
  4. Delgado, E., et al. Modulation of autoimmune T-cell memory by stem cell educator therapy: phase 1/2 clinical trial. EBioMedicine. 2 (12), 2024-2036 (2015).
  5. Li, Y., et al. Hair regrowth in alopecia areata patients following Stem Cell Educator therapy BMC. Medicina. 13 (1), 87 (2015).
  6. Colombo, M., Raposo, G., Thery, C. Biogenesis, secretion, and intercellular interactions of exosomes and other extracellular vesicles. Annual Review of Cell And Developmental Biology. 30, 255-289 (2014).
  7. Abak, A., Abhari, A., Rahimzadeh, S. Exosomes in cancer: small vesicular transporters for cancer progression and metastasis, biomarkers in cancer therapeutics. PeerJ. 6, 4763 (2018).
  8. Adamiak, M., Sahoo, S. Exosomes in myocardial repair: advances and challenges in the development of next-generation therapeutics. Molecular Therapy. 26 (7), 1635-1643 (2018).
  9. Akyurekli, C., et al. A systematic review of preclinical studies on the therapeutic potential of mesenchymal stromal cell-derived microvesicles. Stem Cell Review and Report. 11 (1), 150-160 (2015).
  10. Hu, W., Song, X., Yu, H., Sun, J., Zhao, Y. Released exosomes contribute to the immune modulation of cord blood-derived stem cells (CB-SC). Frontiers in Immunology. (11), 165 (2020).
  11. Jacobson, G., Kårsnäs, P. Important parameters in semi-dry electrophoretic transfer. Electrophoresis. 11 (1), 46-52 (1990).
  12. Dykstra, M. J., Reuss, L. E. . Biological Electron Microscopy: Theory, Techniques, and Troubleshooting. , (2011).
  13. Konoshenko, M. Y., Lekchnov, E. A., Vlassov, A. V., Laktionov, P. P. Isolation of extracellular vesicles: general methodologies and latest trends. BioMed Research International. 2018, 8545347 (2018).
  14. Witwer, K. W., et al. Standardization of sample collection, isolation and analysis methods in extracellular vesicle research. Journal of Extracellular Vesicles. 2, (2013).
  15. Orecchioni, M., Ghosheh, Y., Pramod, A. B., Ley, K. Macrophage polarization: different gene signatures in M1(LPS+) vs. classically and M2(LPS-) vs. alternatively activated macrophages. Frontiers in Immunology. 10, 1084 (2019).
check_url/pt/61562?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Hu, W., Song, X., Yu, H., Sun, J., Zhao, Y. Differentiation of Monocytes into Phenotypically Distinct Macrophages After Treatment with Human Cord Blood Stem Cell (CB-SC)-Derived Exosomes. J. Vis. Exp. (165), e61562, doi:10.3791/61562 (2020).

View Video