Summary

Entrega de agente halogenado em modelo suíno de síndrome de angústia respiratória aguda através de um dispositivo tipo unidade de terapia intensiva

Published: September 24, 2020
doi:

Summary

Descrevemos um modelo de síndrome de angústia respiratória aguda induzida por ácido clorídrico (ARDS) em leitões que recebem sedação com agentes halogenados, isoflurano e sevoflurano, através de um dispositivo usado para sedação intensiva inalada. Este modelo pode ser usado para investigar os mecanismos biológicos de agentes halogenados em lesões pulmonares e reparos.

Abstract

A síndrome do desconforto respiratório agudo (ARDS) é uma causa comum de insuficiência respiratória hipoxêmica e morte em pacientes gravemente doentes, e há uma necessidade urgente de encontrar terapias eficazes. Estudos pré-clínicos mostraram que agentes halogenados inalados podem ter efeitos benéficos em modelos animais de ARDS. O desenvolvimento de novos dispositivos para administrar agentes halogenados utilizando modernos ventiladores de unidade de terapia intensiva (UTI) simplificou significativamente a dispensação de agentes halogados para pacientes de UTI. Como pesquisas experimentais e clínicas anteriores sugeriram potenciais benefícios de voláteis halogenados, como sevoflurano ou isoflurano, para lesão epitelial alveolar pulmonar e inflamação, dois marcos fisiofiológicos de danos alveolares difusos durante a ARDS, projetamos um modelo animal para entender os mecanismos dos efeitos dos agentes halógenados na lesão pulmonar e reparação. Após anestesia geral, intubação traqueal e início da ventilação mecânica, a ARDS foi induzida em leitões através da instilação intratraqueal de ácido clorídrico. Em seguida, os leitões foram sedados com sevoflurano inalado ou isoflurano usando um dispositivo do tipo UTI, e os animais foram ventilados com ventilação mecânica protetora do pulmão durante um período de 4h. Durante o período de estudo, foram coletadas amostras de sangue e alveolar para avaliar a oxigenação arterial, a permeabilidade da membrana alveolar-capilar, o despejo de fluidos alveolares e a inflamação pulmonar. Parâmetros de ventilação mecânica também foram coletados durante todo o experimento. Embora este modelo tenha induzido uma diminuição acentuada da oxigenação arterial com permeabilidade alveolar-capilar alterada, é reprodutível e é caracterizado por um início rápido, boa estabilidade ao longo do tempo e sem complicações fatais.

Desenvolvemos um modelo de aspiração ácida que reproduz a maioria das características fisiológicas, biológicas e patológicas da ARDS clínica, e será útil para aprofundar nossa compreensão dos potenciais efeitos protetores pulmonares de agentes halogenados entregues através de dispositivos usados para sedação inalada da UTI.

Introduction

Síndrome de angústia respiratória aguda (ARDS) é uma causa comum de insuficiência respiratória hipoxêmica e morte em pacientes gravemente doentes1. Caracteriza-se por lesões epiteliais e endoteliais difusas, levando ao aumento da permeabilidade e edema pulmonar, liberação alterada do fluido alveolar (AFC) e piora do desconforto respiratório2. A resorção do edema alveolar e a recuperação da ARDS requerem o transporte de fluido epitelial através dos alvéolos para permanecer intacto, o que sugere que uma terapia que melhore a AFC poderia ser útil3,4. Embora a ventilação protetora pulmonar e uma estratégia restritiva para a terapia de fluidos intravenosos tenham se mostrado benéficas para melhorar os desfechos2,5, eles ainda estão associados à alta mortalidade e morbidade6. Portanto, é urgente desenvolver terapias eficazes para a síndrome e entender melhor os mecanismos precisos através dos quais tais terapias podem funcionar.

Anestésicos halogenados, como isoflurano ou sevoflurano, têm sido amplamente utilizados para anestesia geral na sala de cirurgia. Sevoflurano está associado à diminuição da inflamação nos pulmões de pacientes submetidos à cirurgia torácica e à diminuição de complicações pulmonares pós-operatórias, como a ARDS7. Resultados semelhantes foram encontrados em uma meta-análise de pacientes após cirurgia cardíaca8. Os voláteis halógenos também têm um efeito broncodilatário9,10 e talvez algumas propriedades que protegem vários órgãos, como o coração8,11 e os rins12,13,14. Recentemente, tem crescido o interesse pelo uso clínico de anestésicos inalados como sedativos na Unidade de Terapia Intensiva (UTI). Tanto estudos em animais quanto humanos apoiam os efeitos protetores do pré-tratamento com agentes halogenados antes da isquemia prolongada do fígado15, do cérebro16ou do coração11. Os agentes halogenados também têm potenciais vantagens farmacocinéticas e farmacodinâmicas em relação a outros agentes intravenosos para a sedação de pacientes gravemente doentes, incluindo um rápido início de ação e deslocamento rápido devido ao pouco acúmulo de tecidos. Agentes halogenados inalados diminuem os tempos de intubação em comparação com a sedação intravenosa em pacientes submetidos à cirurgia cardíaca17. Diversos estudos apoiam a segurança e a eficácia dos agentes halogados na sedação de pacientes da UTI18,19,20. Em modelos experimentais de ARDS, a sevoflurano inalada melhora a troca de gás21,22, reduz o edema alveolar21,22, e atenua tanto a inflamação pulmonar quanto sistêmica23. Isoflurano também ameniza o reparo pulmonar após lesão mantendo a integridade da barreira alveolar-capilar, possivelmente modulando a expressão de uma proteína de junção apertadachave 24,25,26. Além disso, macrófagos de camundongos que foram cultivados e tratados com isoflurane tiveram melhores efeitos fagocíticos em neutrófilos do que macrófagos que não foram tratados com isoflurane27.

No entanto, as vias biológicas precisas e os mecanismos que contabilizam as propriedades de proteção pulmonar de anestésicos voláteis permanecem amplamente desconhecidos até o momento, exigindo uma investigação mais aprofundada18. Estudos adicionais também são justificados para investigar os efeitos precisos do sevoflurano na lesão pulmonar e verificar se evidências experimentais podem ser traduzidas para pacientes. O primeiro teste de controle randomizado de nossa equipe descobriu que a administração de sevoflurano inalado em pacientes com ARDS estava associada à melhora da oxigenação e diminuição dos níveis de citocinas pró-inflamatórias e marcadores de lesão epitelial pulmonar, avaliados por receptores solúveis de plasma e alveolar para produtos finais de glicação avançada (sRAGE)28 . Como o sRAGE é agora considerado como um marcador de lesão celular tipo 1 alveolar e um mediador chave da inflamação alveolar, esses resultados podem sugerir alguns efeitos benéficos do sevoflurano na lesão epitelial21,29,30.

O uso de agentes halogêgenos para sedação inalada da UTI há muito tempo requer ventiladores de anestesia da sala de cirurgia e vaporizadores de gás para serem implantados na UTI. Desde então, refletores anestésicos adequados para uso com modernos ventiladores de cuidados críticos foram desenvolvidos para uso específico na UTI31. Estes dispositivos apresentam filtros modificados de troca de calor e umidade inseridos entre a peça Y do circuito respiratório e o tubo endotraqueal. Eles permitem a administração de agentes halogenados, com isoflurano e sevoflurano sendo o mais usado, e consistem em uma haste evaporador de polipropileno poroso, na qual um agente líquido, entregue por uma bomba de seringa específica, é liberado. O agente halogenado é absorvido durante a expiração por um meio refletivo contido no dispositivo e é liberado durante a próxima inspiração, permitindo a recirculação de aproximadamente 90% do agente halogenado expirado31,32. Recentemente, uma versão miniaturizada do dispositivo foi desenvolvida com um espaço instrumental morto de 50 mL, tornando-o ainda mais adequado para uso durante a ventilação ultraprote protetora em pacientes ARDS, com volumes de marés que poderiam ser tão baixos quanto 200 mL31. Tal dispositivo miniaturizado nunca foi estudado em um modelo experimental de leitão da ARDS.

Como pesquisas anteriores apoiam os papéis promissores de voláteis halogenados na inflamação e lesão do alveolar pulmonar durante a ARDS, projetamos um modelo animal experimental para alcançar uma compreensão translacional dos mecanismos dos efeitos dos agentes halogenados na lesão pulmonar e reparar33,34,35. Neste estudo, desenvolvemos um modelo de ARDS induzido por ácido clorídrico (HCl) em leitões nos quais a sedação inalada pode ser entregue usando a versão miniaturizada do dispositivo de conservação anestésica, um dispositivo do tipo UTI. Este grande modelo animal de ARDS poderia ser usado para aprofundar nossa compreensão dos potenciais efeitos protetores pulmonares de agentes halogenados inalados.

Protocol

O protocolo de estudo foi aprovado pelo Comitê de Ética Animal da Ministère de l’Education Nationale francesa, de l’Enseignement Supérieur et de la Recherche (número de aprovação 01505.03) antes de ser registrado no preclinicaltrials.eu (identificador de registro pré-clínico PCTE0000129). Todos os procedimentos foram realizados no Centro Internacional de Chirurgie Endoscopique, Université Clermont Auvergne, Clermont-Ferrand, França, de acordo com as diretrizes36</su…

Representative Results

Para este experimento, 25 leitões foram anestesiados e divididos em dois grupos: 12 leitões no grupo não tratado (grupo SHAM) e 13 leitões no grupo acidutico (grupo HCl). Nenhum leitão morreu antes do fim do experimento. Uma análise de duas medidas repetidas de variância (RM-ANOVA) indicou um tempo significativo de interação em grupo (P < 10−4) com um efeito prejudicial do ARDS induzido por HCl no PaO2/FiO2, em comparação com animais falsos sem ARDS(Figur…

Discussion

Este artigo descreve um modelo experimental reprodutível de ARDS induzido pela instilação intratraqueal de HCl em leitões para investigar os efeitos protetores pulmonares de voláteis halogenados, como sevoflurano ou isoflurano, entregue usando um dispositivo de conservação anestésico.

O objetivo principal deste estudo foi desenvolver um modelo experimental de ARDS no qual agentes voláteis pudessem ser entregues por um dispositivo de conservação anestésico, como os utilizados em pac…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Os autores gostariam de agradecer à equipe do GreD, da Université Clermont Auvergne e do Centre International de Chirurgie Endoscopique (todos em Clermont-Ferrand, França).

Materials

Tracheal intubation
Endotracheal tube 6-mm Covidien 18860
Animal preparation
Central venous catheter 3-lumens catheter (7 French – 16 cm) Arrow CV-12703
Pulse contour cardiac output monitor PiCCO catheter (3-5 French – 20 cm) Getinge Pulsion Medical System catheter
Warm blankets WarmTouch5300 MedTronic 5300
Monitoring
External monitor IntelliVue MP40 Phillips MNT 142
Point-of-care blood gas analyzer Epoc® Blood Analysis System Siemens 20093
Pulse contour cardiac output monitor PiCCO Device PulsioFlex Monitor Getinge Pulsion Medical System PulsioFlex
Mechanical ventilation
Ventilator Engström Carestation General Electrics Engström
Halogenated anesthetics
Anaconda Syringe SedanaMedical 26022
Anesthetic conserving device AnaConDa-S SedanaMedical 26050
Charcoal filter FlurAbsorb SedanaMedical 26096
Filling Adaptaters SedanaMedical 26042
Ionomer membrane dryer line Nafion SedanaMedical 26053
Products
Propofol Mylan 66617123
Isoflurane Virbac QN01AB06
Pentobarbital PanPharma 68942457
Sevoflurane Abbvie N01AB08
Sufentanil Mylan 62404996

Referências

  1. ARDS Definition Task Force et al. Acute respiratory distress syndrome: the Berlin Definition. JAMA: The Journal of the American Medical Association. 307 (23), 2526-2533 (2012).
  2. Thompson, B. T., Chambers, R. C., Liu, K. D. Acute Respiratory Distress Syndrome. The New England Journal of Medicine. 377 (6), 562-572 (2017).
  3. Ware, L. B., Matthay, M. A. Alveolar fluid clearance is impaired in the majority of patients with acute lung injury and the acute respiratory distress syndrome. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 163 (6), 1376-1383 (2001).
  4. McAuley, D. F., Frank, J. A., Fang, X., Matthay, M. A. Clinically relevant concentrations of beta2-adrenergic agonists stimulate maximal cyclic adenosine monophosphate-dependent airspace fluid clearance and decrease pulmonary edema in experimental acid-induced lung injury. Critical Care Medicine. 32 (7), 1470-1476 (2004).
  5. Fan, E., et al. An official American thoracic society/European society of intensive care medicine/society of critical care medicine clinical practice guideline: Mechanical ventilation in adult patients with acute respiratory distress syndrome. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 195 (9), 1253-1263 (2017).
  6. Bellani, G., et al. Epidemiology, patterns of care, and mortality for patients with acute respiratory distress syndrome in intensive care units in 50 countries. JAMA: The Journal of the American Medical Association. 315 (8), 788-800 (2016).
  7. De Conno, E., et al. Anesthetic-induced improvement of the inflammatory response to one-lung ventilation. Anesthesiology. 110 (6), 1316-1326 (2009).
  8. Uhlig, C., et al. Effects of volatile anesthetics on mortality and postoperative pulmonary and other complications in patients undergoing surgery: A systematic review and meta-analysis. Anesthesiology: The Journal of the American Society of Anesthesiologists. 124 (6), 1230-1245 (2016).
  9. Campagna, J. A., Miller, K. W., Forman, S. A. Mechanisms of actions of inhaled anesthetics. The New England Journal of Medicine. 348 (21), 2110-2124 (2003).
  10. Dikmen, Y., Eminoglu, E., Salihoglu, Z., Demiroluk, S. Pulmonary mechanics during isoflurane, sevoflurane and desflurane anaesthesia. Anaesthesia. 58 (8), 745-748 (2003).
  11. Hert, S. G. D., et al. Choice of primary anesthetic regimen can influence intensive care unit length of stay after coronary surgery with cardiopulmonary bypass. Anesthesiology. 101 (1), 9-20 (2004).
  12. Hashiguchi, H., et al. Isoflurane protects renal function against ischemia and reperfusion through inhibition of protein kinases, JNK and ERK. Anesthesia and Analgesia. , 1584-1589 (2005).
  13. Fukazawa, K., Lee, H. T. Volatile anesthetics and AKI: risks, mechanisms, and a potential therapeutic window. Journal of the American Society of Nephrology: JASN. 25 (5), 884-892 (2014).
  14. Obal, D., Rascher, K., Favoccia, C., Dettwiler, S., Schlack, W. Post-conditioning by a short administration of desflurane reduced renal reperfusion injury after differing of ischaemia times in rats. British Journal of Anaesthesia. 97 (6), 783-791 (2006).
  15. Lv, X., et al. Isoflurane preconditioning at clinically relevant doses induce protective effects of heme oxygenase-1 on hepatic ischemia reperfusion in rats. BMC Gastroenterology. 11, 31 (2011).
  16. Sakai, H., et al. Isoflurane provides long-term protection against focal cerebral ischemia in the rat. Anesthesiology. 106 (1), 92-99 (2007).
  17. Jerath, A., et al. Volatile-based short-term sedation in cardiac surgical patients: a prospective randomized controlled trial. Critical Care Medicine. 43 (5), 1062-1069 (2015).
  18. Jerath, A., Parotto, M., Wasowicz, M., Ferguson, N. D. Volatile Anesthetics. Is a New Player Emerging in Critical Care Sedation. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 193 (11), 1202-1212 (2016).
  19. Perbet, S., et al. A pharmacokinetic study of 48-hour sevoflurane inhalation using a disposable delivery system (AnaConDa®) in ICU patients. Minerva Anestesiologica. 80 (6), 655-665 (2014).
  20. Mesnil, M., et al. Long-term sedation in intensive care unit: a randomized comparison between inhaled sevoflurane and intravenous propofol or midazolam. Intensive Care Medicine. 37 (6), 933-941 (2011).
  21. Schläpfer, M., et al. Sevoflurane reduces severity of acute lung injury possibly by impairing formation of alveolar oedema. Clinical and Experimental Immunology. 168 (1), 125-134 (2012).
  22. Voigtsberger, S., et al. Sevoflurane ameliorates gas exchange and attenuates lung damage in experimental lipopolysaccharide-induced lung Injury. Anesthesiology. 111 (6), 1238-1248 (2009).
  23. Steurer, M., et al. The volatile anaesthetic sevoflurane attenuates lipopolysaccharide-induced injury in alveolar macrophages. Clinical and Experimental Immunology. 155 (2), 224-230 (2009).
  24. Englert, J. A., et al. Isoflurane Ameliorates Acute Lung Injury by Preserving Epithelial Tight Junction Integrity. Anesthesiology. 123 (2), 377-388 (2015).
  25. Li, Q. F., Zhu, Y. S., Jiang, H., Xu, H., Sun, Y. Isoflurane preconditioning ameliorates endotoxin-induced acute lung injury and mortality in rats. Anesthesia and Analgesia. 109 (5), 1591-1597 (2009).
  26. Reutershan, J., Chang, D., Hayes, J. K., Ley, K. Role of a reduction of cytokine levels in isoflurane-mediated protection from endotoxin-induced lung Injury. Anesthesiology. 105 (6), 1280-1281 (2006).
  27. Du, X., et al. Isoflurane promotes phagocytosis of apoptotic neutrophils through AMPK-mediated ADAM17/Mer signaling. PloS One. 12 (7), 0180213 (2017).
  28. Jabaudon, M., et al. Sevoflurane for Sedation in Acute Respiratory Distress Syndrome. A Randomized Controlled Pilot Study. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 195 (6), 792-800 (2017).
  29. Yue, T., et al. Postconditioning with a volatile anaesthetic in alveolar epithelial cells in vitro. The European Respiratory Journal: Official Journal of the European Society for Clinical Respiratory Physiology. 31 (1), 118-125 (2008).
  30. Blondonnet, R., Constantin, J. M., Sapin, V., Jabaudon, M. A pathophysiologic approach to biomarkers in acute respiratory distress syndrome. Disease Markers. 2016, 3501373 (2016).
  31. Farrell, R., Oomen, G., Carey, P. A technical review of the history, development and performance of the anaesthetic conserving device “AnaConDa” for delivering volatile anaesthetic in intensive and post-operative critical care. Journal of Clinical Monitoring and Computing. 32 (4), 595-604 (2018).
  32. Sturesson, L. W., Bodelsson, M., Jonson, B., Malmkvist, G. Anaesthetic conserving device AnaConDa: dead space effect and significance for lung protective ventilation. British Journal of Anaesthesia. 113 (3), 508-514 (2014).
  33. Blondonnet, R., et al. RAGE inhibition reduces acute lung injury in mice. Scientific Reports. 7 (1), 7208 (2017).
  34. Jabaudon, M., et al. Soluble receptor for advanced glycation end-products predicts impaired alveolar fluid clearance in acute respiratory distress syndrome. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 192 (2), 191-199 (2015).
  35. Jabaudon, M., et al. Soluble forms and ligands of the receptor for advanced glycation end-products in patients with acute respiratory distress syndrome: An observational prospective study. PloS One. 10 (8), 0135857 (2015).
  36. Kilkenny, C., Browne, W. J., Cuthill, I. C., Emerson, M., Altman, D. G. Improving bioscience research reporting: The ARRIVE guidelines for reporting animal research. PLoS Biology. 8, 1000412 (2010).
  37. Audard, J., et al. Inhibition of the receptor for advanced glycation end-products in acute respiratory distress syndrome: A randomised laboratory trial in piglets. Scientific Reports. 9 (1), 9227 (2019).
  38. Wu, C. W., et al. Intra-operative neural monitoring of thyroid surgery in a porcine model. Journal of Visualized Experiments. (144), e57919 (2019).
  39. Russ, M., et al. Lavage-induced surfactant depletion in pigs as a model of the acute respiratory distress syndrome (ARDS). Journal of visualized experiments. (115), e53610 (2016).
  40. Marumo, C. K., et al. Hemodynamic effects of PEEP in a porcine model of HCl-induced mild acute lung injury. Acta Anaesthesiologica Scandinavica. 53 (2), 190-202 (2009).
  41. Ambrosio, A. M., et al. Effects of positive end-expiratory pressure titration and recruitment maneuver on lung inflammation and hyperinflation in experimental acid aspiration-induced lung injury. Anesthesiology. 117 (6), 1322-1334 (2012).
  42. Sackey, P. V., Martling, C. R., Granath, F., Radell, P. J. Prolonged isoflurane sedation of intensive care unit patients with the Anesthetic Conserving Device. Critical Care Medicine. 32 (11), 2241-2246 (2004).
  43. Blanchard, F., et al. Minimal alveolar concentration for deep sedation (MAC-DS) in intensive care unit patients sedated with sevoflurane: A physiological study. Anaesthesia, Critical Care & Pain. , (2020).
  44. Verghese, G. M., Ware, L. B., Matthay, B. A., Matthay, M. A. Alveolar epithelial fluid transport and the resolution of clinically severe hydrostatic pulmonary edema. Journal of Applied Physiology. 87 (4), 1301-1312 (1999).
  45. Sakuma, T., et al. Alveolar fluid clearance in the resected human lung. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 150 (2), 305-310 (1994).
  46. Matthay, M. A., Wiener-Kronish, J. P. Intact epithelial barrier function is critical for the resolution of alveolar edema in humans. The American Review of Respiratory Disease. 142 (6), 1250-1257 (1990).
  47. Ware, L. B., Matthay, M. A. Alveolar fluid clearance is impaired in the majority of patients with acute lung injury and the acute respiratory distress syndrome. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 163 (6), 1376-1383 (2001).
  48. Ware, L. B., Golden, J. A., Finkbeiner, W. E., Matthay, M. A. Alveolar epithelial fluid transport capacity in reperfusion lung injury after lung transplantation. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 159 (3), 980-988 (1999).
  49. Constantin, J. M., et al. Response to recruitment maneuver influences net alveolar fluid clearance in acute respiratory distress syndrome. Anesthesiology. 106 (5), 944-951 (2007).
  50. Kemming, G. I., et al. Effects of perfluorohexan vapor on gas exchange, respiratory mechanics, and lung histology in pigs with lung injury after endotoxin infusion. Anesthesiology. 103 (3), 585-594 (2005).
  51. Matute-Bello, G., et al. An official American Thoracic Society workshop report: features and measurements of experimental acute lung injury in animals. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. 44 (5), 725-738 (2011).
  52. Chiew, Y. S., et al. Physiological relevance and performance of a minimal lung model: an experimental study in healthy and acute respiratory distress syndrome model piglets. BMC Pulmonary Medicine. 12, 59 (2012).
  53. Hochhausen, N., et al. Optimizing PEEP by Electrical Impedance Tomography in a Porcine Animal Model of ARDS. Respiratory Care. 62 (3), 340-349 (2017).
  54. Fu, H., Sun, M., Miao, C. Effects of different concentrations of isoflurane pretreatment on respiratory mechanics, oxygenation and hemodynamics in LPS-induced acute respiratory distress syndrome model of juvenile piglets. Experimental Lung Research. 41 (8), 415-421 (2015).
  55. Yehya, N. Lessons learned in acute respiratory distress syndrome from the animal laboratory. Annals of Translational Medicine. 7 (19), 503 (2019).
  56. Hochhausen, N., et al. Comparison of two experimental ARDS models in pigs using electrical impedance tomography. PloS One. 14 (11), 0225218 (2019).
  57. Shaver, C. M., et al. Cell-free hemoglobin: a novel mediator of acute lung injury. American Journal of Physiology. Lung Cellular and Molecular Physiology. 310 (6), 532-541 (2016).
  58. Matthay, M. A., et al. Acute respiratory distress syndrome. Nature Reviews. Disease Primers. 5 (1), 18 (2019).
  59. Martin, T. R., Matute-Bello, G. Experimental models and emerging hypotheses for acute lung injury. Critical Care Clinics. 27 (3), 735-752 (2011).
  60. Light, R. W., Gary Lee, Y. C. . Textbook of Pleural Diseases Second Edition. , (2008).
  61. Laferriere-Langlois, P., d’Arogon, F., Manzanares, W. Halogenated volatile anesthetics in the intensive care unit: current knowledge on an upcoming practice. Minerva Anestesiologica. 83 (7), 737-748 (2017).
  62. Devlin, J. W., et al. Clinical Practice Guidelines for the Prevention and Management of Pain, Agitation/Sedation, Delirium, Immobility, and Sleep Disruption in Adult Patients in the ICU. Critical Care Medicine. 46 (9), 825-873 (2018).
  63. DAS-Taskforce 2015 et al. Evidence and consensus based guideline for the management of delirium, analgesia, and sedation in intensive care medicine. Revision 2015 (DAS-Guildeline 2015) – short version. German Medical Science: GMS e-journal. 13, (2015).
  64. O’Gara, B., Talmor, D. Lung protective properties of the volatile anesthetics. Intensive Care Medicine. 42 (9), 1487-1489 (2016).
  65. Murthy, S., Gomersall, C. D., Fowler, R. A. Care for critically ill patients with COVID-19. JAMA: The Journal of the American Medical Association. , (2020).
  66. Liao, X., Wang, B., Kang, Y. Novel coronavirus infection during the 2019-2020 epidemic: preparing intensive care units-the experience in Sichuan Province, China. Intensive Care Medicine. 46 (2), 357-360 (2020).
  67. Grasselli, G., Pesenti, A., Cecconi, M. Critical care utilization for the COVID-19 outbreak in Lombardy, Italy: Early experience and forecast during an emergency response. JAMA: The Journal of the American Medical Association. , (2020).
  68. Arentz, M., et al. Characteristics and outcomes of 21 critically ill patients with COVID-19 in Washington State. JAMA: The Journal of the American Medical Association. , (2020).
  69. Xu, Z., et al. Pathological findings of COVID-19 associated with acute respiratory distress syndrome. The Lancet. Respiratory Medicine. 8 (4), 420-422 (2020).
  70. Ferrando, C., et al. but not propofol, reduces the lung inflammatory response and improves oxygenation in an acute respiratory distress syndrome model: a randomised laboratory study. European Journal of Anaesthesiology. 30 (8), 455-463 (2013).
  71. Voigtsberger, S., et al. Sevoflurane ameliorates gas exchange and attenuates lung damage in experimental lipopolysaccharide-induced lung injury. Anesthesiology. 111 (6), 1238-1248 (2009).
  72. Suter, D., et al. The immunomodulatory effect of sevoflurane in endotoxin-injured alveolar epithelial cells. Anesthesia and Analgesia. 104 (3), 638-645 (2007).
  73. Steurer, M., et al. The volatile anaesthetic sevoflurane attenuates lipopolysaccharide-induced injury in alveolar macrophages. Clinical and Experimental Immunology. 155 (2), 224-230 (2009).
  74. Blondonnet, R., et al. In vitro method to control concentrations of halogenated gases in cultured alveolar epithelial cells. Journal of Visualized Experiments. (144), e58554 (2018).
  75. Gargiulo, S., et al. Mice anesthesia, analgesia, and care, Part I: Anesthetic considerations in preclinical research. ILAR Journal / National Research Council, Institute of Laboratory Animal Resources. 53 (1), 55-69 (2012).
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Citar este artigo
Blondonnet, R., Paquette, B., Audard, J., Guler, R., Roman, F., Zhai, R., Belville, C., Blanchon, L., Godet, T., Futier, E., Bazin, J., Constantin, J., Sapin, V., Jabaudon, M. Halogenated Agent Delivery in Porcine Model of Acute Respiratory Distress Syndrome via an Intensive Care Unit Type Device. J. Vis. Exp. (163), e61644, doi:10.3791/61644 (2020).

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