Summary

Halogenerad agentleverans i svinmodell av akut respiratoriskt nödsyndrom via en intensivvårdsenhet typ enhet

Published: September 24, 2020
doi:

Summary

Vi beskriver en modell av saltsyra-inducerad akut luftvägarna nöd syndrom (ARDS) i smågrisar som får sedering med halogenated agenter, isofluran och sevofluran, genom en enhet som används för inhalerad intensiv vård sedering. Denna modell kan användas för att undersöka de biologiska mekanismerna hos halogenerade medel vid lungskada och reparation.

Abstract

Akut respiratoriskt nödsyndrom (ARDS) är en vanlig orsak till hypoxemisk andningssvikt och död hos kritiskt sjuka patienter, och det finns ett akut behov av att hitta effektiva terapier. Prekliniska studier har visat att inhalerade halogenerade agenser kan ha positiva effekter i djurmodeller av ARDS. Utvecklingen av nya enheter för att administrera halogenerade medel med hjälp av moderna intensivvårdsavdelning (ICU) ventilatorer har avsevärt förenklat dispensering av halogenerade medel till IVA patienter. Eftersom tidigare experimentell och klinisk forskning föreslog potentiella fördelar med halogenated flyktiga ämnen, såsom sevofluran eller isofluran, för lung alveolar epitelial skada och inflammation, två patophysiologic landmärken av diffusa alveolar skador under ARDS, utformade vi en djurmodell för att förstå mekanismerna för effekterna av halogenerade medel på lungskada och reparation. Efter generell anestesi, trakeal intubation och inledandet av mekanisk ventilation, ARDS inducerades i smågrisar via intratracheal instillation av saltsyra. Sedan sövdes smågrisarna med inhalerad sevofluran eller isofluran med hjälp av en ICU-typ enhet, och djuren ventilerades med lungskyddande mekanisk ventilation under en 4 h period. Under studieperioden samlades blod- och alveolarprover in för att utvärdera arteriell syresättning, permeabiliteten hos alveolar-kapillärmembranet, alveolar vätske clearance och lunginflammation. Mekaniska ventilationsparametrar samlades också in under hela experimentet. Även om denna modell induceras en markant minskning av kranskärlens syresättning med förändrad alveolar-kapillär permeabilitet, är det reproducerbart och kännetecknas av en snabb debut, god stabilitet över tiden och inga dödliga komplikationer.

Vi har utvecklat en nasse modell av syra strävan som reproducerar de flesta fysiologiska, biologiska och patologiska funktionerna i kliniska ARDS, och det kommer att vara till hjälp för att främja vår förståelse av de potentiella lungskyddande effekterna av halogenerade medel levereras genom enheter som används för inhalerad ICU sedering.

Introduction

Akut respiratoriskt nödsyndrom (ARDS) är en vanlig orsak till hypoxemisk andningssvikt och död hos kritiskt sjuka patienter1. Det kännetecknas av både diffusa alveolar epitelial och endotelskador, vilket leder till ökad permeabilitet och lungödem, förändrad alveolar vätskefrigång (AFC) och förvärrad andnöd2. Resorptionen av alveolarödem och återhämtning från ARDS kräver epitelvätska transport genom alveolerna för att förbli intakt, vilket tyder på att en terapi som förbättrar AFC kan vara användbar3,4. Även om lungskyddande ventilation och en restriktiv strategi för intravenös vätsketerapi har visat sig vara fördelaktigt för att förbättra resultaten2,5, är de fortfarande förknippade med hög dödlighet och sjuklighet6. Därför finns det ett brådskande behov av att utveckla effektiva terapier för syndromet och att bättre förstå de exakta mekanismer genom vilka sådana terapier kan fungera.

Halogenerade bedövningsmedel, såsom isofluran eller sevofluran, har använts i stor utsträckning för narkos i operationssalen. Sevofluran är förknippat med minskad inflammation i lungorna hos patienter som genomgår thoraxkirurgi och med en minskning av postoperativa lungkomplikationer, såsom ARDS7. Liknande resultat har hittats i en metaanalys av patienter efter hjärtkirurgi8. Halogenerade flyktiga ämnen har också en bronkdilatory effekt9,10 och kanske några egenskaper som skyddar flera organ, såsom hjärtat8,11 och njurarna12,13,14. Nyligen har det funnits ett växande intresse för klinisk användning av inhalerade anestetika som lugnande medel på intensivvårdsavdelningen (IVA). Både djur- och humanstudier stöder de skyddande effekterna av förbehandling med halogenerade medel före långvarig ischemi i levern15, hjärnan16eller hjärtat11. Halogenerade medel har också potentiella farmakokinetiska och farmakodynamiska fördelar jämfört med andra intravenösa medel för sedering av kritiskt sjuka patienter, inklusive en snabb insättande av åtgärder och snabb offset på grund av liten ackumulering i vävnader. Inhalerade halogenerade medel minskar intuberingstiderna jämfört med intravenös sedering hos patienter som genomgår hjärtkirurgi17. Flera studier stöder säkerhet och effekt av halogenerade medel vid sedering av IVA-patienter18,19,20. I experimentella modeller av ARDS förbättrar inhalerad sevofluran gasutbyte21,22, minskar alveolarödem21,22och dämpar både lung- och systemisk inflammation23. Isofluran lindrar också lungreparation efter skada genom att upprätthålla integriteten hos alveolar-kapillärbarriären, eventuellt genom att modulera uttrycket av ett viktigt tätt kopplingsprotein24,25,26. Dessutom hade musmakrofager som odlades och behandlades med isofluran bättre fagocytiska effekter på neutrofiler än makrofager som inte behandlades med isofluran27.

De exakta biologiska vägarna och mekanismerna som redovisar de lungskyddande egenskaperna hos flyktiga bedövningsmedel är dock fortfarande i stort sett okända hittills, vilket kräver ytterligare undersökning18. Ytterligare studier är också motiverade för att undersöka de exakta effekterna av sevofluran på lungskada och för att kontrollera om experimentella bevis kan översättas till patienter. Den första randomiserade kontrollstudien från vårt team fann att administrering av inhalerad sevofluran hos patienter med ARDS var förknippad med syresättningsförbättring och minskade nivåer av både proinflammatoriska cytokiner och lungepitetelskada markörer, som bedömts av plasma- och alveolarlösliga receptorer för avancerade glykationsslutprodukter (sRAGE)28 . Eftersom sRAGE nu betraktas som en markör för alveolar typ 1 cellskada och en viktig medlare av alveolar inflammation, dessa resultat kan föreslå några positiva effekter av sevofluran på lung alveolar epitelial skada21,29,30.

Användningen av halogenerade medel för inhalerad IVA sedering har länge krävt operationssal anestesi ventilatorer och gas vaporizers att distribueras i ICU. Sedan dess har anestesireflektorer lämpliga för användning med moderna kritiska skötselventiler utvecklats för specifik användning på IVA31. Dessa enheter har modifierade värme- och fuktutbytesfilter som sätts in mellan Y-delen av andningskretsen och endotrachealröret. De tillåter administrering av halogenerade medel, där isofluran och sevofluran är de vanligaste, och de består av en porös polypropylenförångarstav, i vilken ett flytande medel, levererat av en specifik sprutpump, frigörs. Det halogenerade medlet absorberas under utgången av ett reflekterande medium som finns i enheten och det frigörs under nästa inspiration, vilket möjliggör återcirkulation av cirka 90% av det utgångna halogenerade medlet31,32. Nyligen utvecklades en miniatyriserad version av enheten med ett instrumentellt dött utrymme på 50 ml, vilket gör den ännu mer lämplig för användning under ultraskyddande ventilation hos ARDS-patienter, med tidvattenvolymer som kan vara så låga som 200 ml31. En sådan miniatyriserad anordning har aldrig studerats i en experimentell nassemodell av ARDS.

Eftersom tidigare forskning stöder de lovande rollerna av halogenerade flyktiga ämnen i lungalveolar inflammation och skada under ARDS, utformade vi en experimentell djurmodell för att uppnå en translationell förståelse av mekanismerna för effekterna av halogenerade medel på lungskada och reparation33,34,35. I denna studie utvecklade vi en modell av saltsyra (HCl)-inducerad ARDS i smågrisar i vilka inhalerad sedering kan levereras med hjälp av den miniatyriserade versionen av bedövningsmedel spara enhet, en ICU-typ enhet. Denna stora djurmodell av ARDS kan användas för att främja vår förståelse av de potentiella lungskyddande effekterna av inhalerade halogenerade medel.

Protocol

Studieprotokollet godkändes av den franska ministère de l’Education Nationales djuriska kommitté, de l’Enseignement Supérieur et de la Recherche (godkännandenummer 01505.03) innan det registrerades vid preclinicaltrials.eu (Pre-clinical registeridentifiering PCTE0000129). Alla förfaranden utfördes i Centre International de Chirurgie Endoscopique, Université Clermont Auvergne, Clermont-Ferrand, Frankrike, i enlighet med riktlinjernafördjurforskning: Rapportering …

Representative Results

För detta experiment bedövades 25 grisar och delades in i två grupper: 12 smågrisar i den obehandlade gruppen (SHAM-gruppen) och 13 grisar i den syraskadade gruppen (HCl-gruppen). Ingen gris dog innan experimentet var slut. En tvåvägs analys av variansen (RM-ANOVA) visade en signifikant tid per gruppinteraktion (P < 10−4) med en skadlig effekt av HCl-inducerad ARDS på PaO2/FiO2, jämfört med skendjur utan ARDS (figur 3). En signifikant skillnad mell…

Discussion

Denna artikel beskriver en reproducerbar experimentell modell av ARDS inducerad av intratracheal instillation av HCl i smågrisar att undersöka de lungskyddande effekterna av halogenated flyktiga ämnen, såsom sevofluran eller isofluran, levereras med hjälp av en bedövningsmedel bevara enhet.

Det primära målet med denna studie var att utveckla en experimentell modell av ARDS där flyktiga medel kunde levereras av en bedövningsmedel som bevarar enheten, såsom de som används i IVA patie…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna vill tacka personalen från GreD, Université Clermont Auvergne och Centre International de Chirurgie Endoscopique (alla i Clermont-Ferrand, Frankrike).

Materials

Tracheal intubation
Endotracheal tube 6-mm Covidien 18860
Animal preparation
Central venous catheter 3-lumens catheter (7 French – 16 cm) Arrow CV-12703
Pulse contour cardiac output monitor PiCCO catheter (3-5 French – 20 cm) Getinge Pulsion Medical System catheter
Warm blankets WarmTouch5300 MedTronic 5300
Monitoring
External monitor IntelliVue MP40 Phillips MNT 142
Point-of-care blood gas analyzer Epoc® Blood Analysis System Siemens 20093
Pulse contour cardiac output monitor PiCCO Device PulsioFlex Monitor Getinge Pulsion Medical System PulsioFlex
Mechanical ventilation
Ventilator Engström Carestation General Electrics Engström
Halogenated anesthetics
Anaconda Syringe SedanaMedical 26022
Anesthetic conserving device AnaConDa-S SedanaMedical 26050
Charcoal filter FlurAbsorb SedanaMedical 26096
Filling Adaptaters SedanaMedical 26042
Ionomer membrane dryer line Nafion SedanaMedical 26053
Products
Propofol Mylan 66617123
Isoflurane Virbac QN01AB06
Pentobarbital PanPharma 68942457
Sevoflurane Abbvie N01AB08
Sufentanil Mylan 62404996

Referências

  1. ARDS Definition Task Force et al. Acute respiratory distress syndrome: the Berlin Definition. JAMA: The Journal of the American Medical Association. 307 (23), 2526-2533 (2012).
  2. Thompson, B. T., Chambers, R. C., Liu, K. D. Acute Respiratory Distress Syndrome. The New England Journal of Medicine. 377 (6), 562-572 (2017).
  3. Ware, L. B., Matthay, M. A. Alveolar fluid clearance is impaired in the majority of patients with acute lung injury and the acute respiratory distress syndrome. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 163 (6), 1376-1383 (2001).
  4. McAuley, D. F., Frank, J. A., Fang, X., Matthay, M. A. Clinically relevant concentrations of beta2-adrenergic agonists stimulate maximal cyclic adenosine monophosphate-dependent airspace fluid clearance and decrease pulmonary edema in experimental acid-induced lung injury. Critical Care Medicine. 32 (7), 1470-1476 (2004).
  5. Fan, E., et al. An official American thoracic society/European society of intensive care medicine/society of critical care medicine clinical practice guideline: Mechanical ventilation in adult patients with acute respiratory distress syndrome. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 195 (9), 1253-1263 (2017).
  6. Bellani, G., et al. Epidemiology, patterns of care, and mortality for patients with acute respiratory distress syndrome in intensive care units in 50 countries. JAMA: The Journal of the American Medical Association. 315 (8), 788-800 (2016).
  7. De Conno, E., et al. Anesthetic-induced improvement of the inflammatory response to one-lung ventilation. Anesthesiology. 110 (6), 1316-1326 (2009).
  8. Uhlig, C., et al. Effects of volatile anesthetics on mortality and postoperative pulmonary and other complications in patients undergoing surgery: A systematic review and meta-analysis. Anesthesiology: The Journal of the American Society of Anesthesiologists. 124 (6), 1230-1245 (2016).
  9. Campagna, J. A., Miller, K. W., Forman, S. A. Mechanisms of actions of inhaled anesthetics. The New England Journal of Medicine. 348 (21), 2110-2124 (2003).
  10. Dikmen, Y., Eminoglu, E., Salihoglu, Z., Demiroluk, S. Pulmonary mechanics during isoflurane, sevoflurane and desflurane anaesthesia. Anaesthesia. 58 (8), 745-748 (2003).
  11. Hert, S. G. D., et al. Choice of primary anesthetic regimen can influence intensive care unit length of stay after coronary surgery with cardiopulmonary bypass. Anesthesiology. 101 (1), 9-20 (2004).
  12. Hashiguchi, H., et al. Isoflurane protects renal function against ischemia and reperfusion through inhibition of protein kinases, JNK and ERK. Anesthesia and Analgesia. , 1584-1589 (2005).
  13. Fukazawa, K., Lee, H. T. Volatile anesthetics and AKI: risks, mechanisms, and a potential therapeutic window. Journal of the American Society of Nephrology: JASN. 25 (5), 884-892 (2014).
  14. Obal, D., Rascher, K., Favoccia, C., Dettwiler, S., Schlack, W. Post-conditioning by a short administration of desflurane reduced renal reperfusion injury after differing of ischaemia times in rats. British Journal of Anaesthesia. 97 (6), 783-791 (2006).
  15. Lv, X., et al. Isoflurane preconditioning at clinically relevant doses induce protective effects of heme oxygenase-1 on hepatic ischemia reperfusion in rats. BMC Gastroenterology. 11, 31 (2011).
  16. Sakai, H., et al. Isoflurane provides long-term protection against focal cerebral ischemia in the rat. Anesthesiology. 106 (1), 92-99 (2007).
  17. Jerath, A., et al. Volatile-based short-term sedation in cardiac surgical patients: a prospective randomized controlled trial. Critical Care Medicine. 43 (5), 1062-1069 (2015).
  18. Jerath, A., Parotto, M., Wasowicz, M., Ferguson, N. D. Volatile Anesthetics. Is a New Player Emerging in Critical Care Sedation. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 193 (11), 1202-1212 (2016).
  19. Perbet, S., et al. A pharmacokinetic study of 48-hour sevoflurane inhalation using a disposable delivery system (AnaConDa®) in ICU patients. Minerva Anestesiologica. 80 (6), 655-665 (2014).
  20. Mesnil, M., et al. Long-term sedation in intensive care unit: a randomized comparison between inhaled sevoflurane and intravenous propofol or midazolam. Intensive Care Medicine. 37 (6), 933-941 (2011).
  21. Schläpfer, M., et al. Sevoflurane reduces severity of acute lung injury possibly by impairing formation of alveolar oedema. Clinical and Experimental Immunology. 168 (1), 125-134 (2012).
  22. Voigtsberger, S., et al. Sevoflurane ameliorates gas exchange and attenuates lung damage in experimental lipopolysaccharide-induced lung Injury. Anesthesiology. 111 (6), 1238-1248 (2009).
  23. Steurer, M., et al. The volatile anaesthetic sevoflurane attenuates lipopolysaccharide-induced injury in alveolar macrophages. Clinical and Experimental Immunology. 155 (2), 224-230 (2009).
  24. Englert, J. A., et al. Isoflurane Ameliorates Acute Lung Injury by Preserving Epithelial Tight Junction Integrity. Anesthesiology. 123 (2), 377-388 (2015).
  25. Li, Q. F., Zhu, Y. S., Jiang, H., Xu, H., Sun, Y. Isoflurane preconditioning ameliorates endotoxin-induced acute lung injury and mortality in rats. Anesthesia and Analgesia. 109 (5), 1591-1597 (2009).
  26. Reutershan, J., Chang, D., Hayes, J. K., Ley, K. Role of a reduction of cytokine levels in isoflurane-mediated protection from endotoxin-induced lung Injury. Anesthesiology. 105 (6), 1280-1281 (2006).
  27. Du, X., et al. Isoflurane promotes phagocytosis of apoptotic neutrophils through AMPK-mediated ADAM17/Mer signaling. PloS One. 12 (7), 0180213 (2017).
  28. Jabaudon, M., et al. Sevoflurane for Sedation in Acute Respiratory Distress Syndrome. A Randomized Controlled Pilot Study. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 195 (6), 792-800 (2017).
  29. Yue, T., et al. Postconditioning with a volatile anaesthetic in alveolar epithelial cells in vitro. The European Respiratory Journal: Official Journal of the European Society for Clinical Respiratory Physiology. 31 (1), 118-125 (2008).
  30. Blondonnet, R., Constantin, J. M., Sapin, V., Jabaudon, M. A pathophysiologic approach to biomarkers in acute respiratory distress syndrome. Disease Markers. 2016, 3501373 (2016).
  31. Farrell, R., Oomen, G., Carey, P. A technical review of the history, development and performance of the anaesthetic conserving device “AnaConDa” for delivering volatile anaesthetic in intensive and post-operative critical care. Journal of Clinical Monitoring and Computing. 32 (4), 595-604 (2018).
  32. Sturesson, L. W., Bodelsson, M., Jonson, B., Malmkvist, G. Anaesthetic conserving device AnaConDa: dead space effect and significance for lung protective ventilation. British Journal of Anaesthesia. 113 (3), 508-514 (2014).
  33. Blondonnet, R., et al. RAGE inhibition reduces acute lung injury in mice. Scientific Reports. 7 (1), 7208 (2017).
  34. Jabaudon, M., et al. Soluble receptor for advanced glycation end-products predicts impaired alveolar fluid clearance in acute respiratory distress syndrome. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 192 (2), 191-199 (2015).
  35. Jabaudon, M., et al. Soluble forms and ligands of the receptor for advanced glycation end-products in patients with acute respiratory distress syndrome: An observational prospective study. PloS One. 10 (8), 0135857 (2015).
  36. Kilkenny, C., Browne, W. J., Cuthill, I. C., Emerson, M., Altman, D. G. Improving bioscience research reporting: The ARRIVE guidelines for reporting animal research. PLoS Biology. 8, 1000412 (2010).
  37. Audard, J., et al. Inhibition of the receptor for advanced glycation end-products in acute respiratory distress syndrome: A randomised laboratory trial in piglets. Scientific Reports. 9 (1), 9227 (2019).
  38. Wu, C. W., et al. Intra-operative neural monitoring of thyroid surgery in a porcine model. Journal of Visualized Experiments. (144), e57919 (2019).
  39. Russ, M., et al. Lavage-induced surfactant depletion in pigs as a model of the acute respiratory distress syndrome (ARDS). Journal of visualized experiments. (115), e53610 (2016).
  40. Marumo, C. K., et al. Hemodynamic effects of PEEP in a porcine model of HCl-induced mild acute lung injury. Acta Anaesthesiologica Scandinavica. 53 (2), 190-202 (2009).
  41. Ambrosio, A. M., et al. Effects of positive end-expiratory pressure titration and recruitment maneuver on lung inflammation and hyperinflation in experimental acid aspiration-induced lung injury. Anesthesiology. 117 (6), 1322-1334 (2012).
  42. Sackey, P. V., Martling, C. R., Granath, F., Radell, P. J. Prolonged isoflurane sedation of intensive care unit patients with the Anesthetic Conserving Device. Critical Care Medicine. 32 (11), 2241-2246 (2004).
  43. Blanchard, F., et al. Minimal alveolar concentration for deep sedation (MAC-DS) in intensive care unit patients sedated with sevoflurane: A physiological study. Anaesthesia, Critical Care & Pain. , (2020).
  44. Verghese, G. M., Ware, L. B., Matthay, B. A., Matthay, M. A. Alveolar epithelial fluid transport and the resolution of clinically severe hydrostatic pulmonary edema. Journal of Applied Physiology. 87 (4), 1301-1312 (1999).
  45. Sakuma, T., et al. Alveolar fluid clearance in the resected human lung. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 150 (2), 305-310 (1994).
  46. Matthay, M. A., Wiener-Kronish, J. P. Intact epithelial barrier function is critical for the resolution of alveolar edema in humans. The American Review of Respiratory Disease. 142 (6), 1250-1257 (1990).
  47. Ware, L. B., Matthay, M. A. Alveolar fluid clearance is impaired in the majority of patients with acute lung injury and the acute respiratory distress syndrome. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 163 (6), 1376-1383 (2001).
  48. Ware, L. B., Golden, J. A., Finkbeiner, W. E., Matthay, M. A. Alveolar epithelial fluid transport capacity in reperfusion lung injury after lung transplantation. American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine. 159 (3), 980-988 (1999).
  49. Constantin, J. M., et al. Response to recruitment maneuver influences net alveolar fluid clearance in acute respiratory distress syndrome. Anesthesiology. 106 (5), 944-951 (2007).
  50. Kemming, G. I., et al. Effects of perfluorohexan vapor on gas exchange, respiratory mechanics, and lung histology in pigs with lung injury after endotoxin infusion. Anesthesiology. 103 (3), 585-594 (2005).
  51. Matute-Bello, G., et al. An official American Thoracic Society workshop report: features and measurements of experimental acute lung injury in animals. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. 44 (5), 725-738 (2011).
  52. Chiew, Y. S., et al. Physiological relevance and performance of a minimal lung model: an experimental study in healthy and acute respiratory distress syndrome model piglets. BMC Pulmonary Medicine. 12, 59 (2012).
  53. Hochhausen, N., et al. Optimizing PEEP by Electrical Impedance Tomography in a Porcine Animal Model of ARDS. Respiratory Care. 62 (3), 340-349 (2017).
  54. Fu, H., Sun, M., Miao, C. Effects of different concentrations of isoflurane pretreatment on respiratory mechanics, oxygenation and hemodynamics in LPS-induced acute respiratory distress syndrome model of juvenile piglets. Experimental Lung Research. 41 (8), 415-421 (2015).
  55. Yehya, N. Lessons learned in acute respiratory distress syndrome from the animal laboratory. Annals of Translational Medicine. 7 (19), 503 (2019).
  56. Hochhausen, N., et al. Comparison of two experimental ARDS models in pigs using electrical impedance tomography. PloS One. 14 (11), 0225218 (2019).
  57. Shaver, C. M., et al. Cell-free hemoglobin: a novel mediator of acute lung injury. American Journal of Physiology. Lung Cellular and Molecular Physiology. 310 (6), 532-541 (2016).
  58. Matthay, M. A., et al. Acute respiratory distress syndrome. Nature Reviews. Disease Primers. 5 (1), 18 (2019).
  59. Martin, T. R., Matute-Bello, G. Experimental models and emerging hypotheses for acute lung injury. Critical Care Clinics. 27 (3), 735-752 (2011).
  60. Light, R. W., Gary Lee, Y. C. . Textbook of Pleural Diseases Second Edition. , (2008).
  61. Laferriere-Langlois, P., d’Arogon, F., Manzanares, W. Halogenated volatile anesthetics in the intensive care unit: current knowledge on an upcoming practice. Minerva Anestesiologica. 83 (7), 737-748 (2017).
  62. Devlin, J. W., et al. Clinical Practice Guidelines for the Prevention and Management of Pain, Agitation/Sedation, Delirium, Immobility, and Sleep Disruption in Adult Patients in the ICU. Critical Care Medicine. 46 (9), 825-873 (2018).
  63. DAS-Taskforce 2015 et al. Evidence and consensus based guideline for the management of delirium, analgesia, and sedation in intensive care medicine. Revision 2015 (DAS-Guildeline 2015) – short version. German Medical Science: GMS e-journal. 13, (2015).
  64. O’Gara, B., Talmor, D. Lung protective properties of the volatile anesthetics. Intensive Care Medicine. 42 (9), 1487-1489 (2016).
  65. Murthy, S., Gomersall, C. D., Fowler, R. A. Care for critically ill patients with COVID-19. JAMA: The Journal of the American Medical Association. , (2020).
  66. Liao, X., Wang, B., Kang, Y. Novel coronavirus infection during the 2019-2020 epidemic: preparing intensive care units-the experience in Sichuan Province, China. Intensive Care Medicine. 46 (2), 357-360 (2020).
  67. Grasselli, G., Pesenti, A., Cecconi, M. Critical care utilization for the COVID-19 outbreak in Lombardy, Italy: Early experience and forecast during an emergency response. JAMA: The Journal of the American Medical Association. , (2020).
  68. Arentz, M., et al. Characteristics and outcomes of 21 critically ill patients with COVID-19 in Washington State. JAMA: The Journal of the American Medical Association. , (2020).
  69. Xu, Z., et al. Pathological findings of COVID-19 associated with acute respiratory distress syndrome. The Lancet. Respiratory Medicine. 8 (4), 420-422 (2020).
  70. Ferrando, C., et al. but not propofol, reduces the lung inflammatory response and improves oxygenation in an acute respiratory distress syndrome model: a randomised laboratory study. European Journal of Anaesthesiology. 30 (8), 455-463 (2013).
  71. Voigtsberger, S., et al. Sevoflurane ameliorates gas exchange and attenuates lung damage in experimental lipopolysaccharide-induced lung injury. Anesthesiology. 111 (6), 1238-1248 (2009).
  72. Suter, D., et al. The immunomodulatory effect of sevoflurane in endotoxin-injured alveolar epithelial cells. Anesthesia and Analgesia. 104 (3), 638-645 (2007).
  73. Steurer, M., et al. The volatile anaesthetic sevoflurane attenuates lipopolysaccharide-induced injury in alveolar macrophages. Clinical and Experimental Immunology. 155 (2), 224-230 (2009).
  74. Blondonnet, R., et al. In vitro method to control concentrations of halogenated gases in cultured alveolar epithelial cells. Journal of Visualized Experiments. (144), e58554 (2018).
  75. Gargiulo, S., et al. Mice anesthesia, analgesia, and care, Part I: Anesthetic considerations in preclinical research. ILAR Journal / National Research Council, Institute of Laboratory Animal Resources. 53 (1), 55-69 (2012).
check_url/pt/61644?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Blondonnet, R., Paquette, B., Audard, J., Guler, R., Roman, F., Zhai, R., Belville, C., Blanchon, L., Godet, T., Futier, E., Bazin, J., Constantin, J., Sapin, V., Jabaudon, M. Halogenated Agent Delivery in Porcine Model of Acute Respiratory Distress Syndrome via an Intensive Care Unit Type Device. J. Vis. Exp. (163), e61644, doi:10.3791/61644 (2020).

View Video