In Vitro evaluering af onkogene transformation i humane mammary epitelceller
Summary
Denne protokol giver eksperimentelle in vitro værktøjer til at evaluere omdannelsen af menneskelige mælkeceller. Detaljerede trin til opfølgende celleproliferedningshastighed, forankrings-uafhængig vækstkapacitet og fordeling af cellestælg i 3D-kulturer med kældermembranmatrix er beskrevet.
Abstract
Tumorigenesis er en multi-trins proces, hvor celler erhverve kapaciteter, der tillader deres vækst, overlevelse, og formidling under fjendtlige forhold. Forskellige tests har til formål at identificere og kvantificere disse kendetegn ved kræftceller; men de fokuserer ofte på et enkelt aspekt af cellulære transformation og i virkeligheden, flere tests er nødvendige for deres rette karakterisering. Formålet med dette arbejde er at give forskerne et sæt værktøjer til at vurdere cellulære transformation in vitro fra et bredt perspektiv, hvilket gør det muligt at drage gode konklusioner.
En vedvarende proliferativ signalering aktivering er det vigtigste træk ved tumoralvæv og kan let overvåges under in vitro betingelser ved at beregne antallet af befolkning fordoblinger opnået over tid. Udover, væksten af celler i 3D kulturer tillader deres interaktion med omkringliggende celler, der ligner hvad der sker in vivo. Dette gør det muligt at evaluere cellulære sammenlægning og, sammen med immunfluorescerende mærkning af karakteristiske cellulære markører, at indhente oplysninger om et andet relevant træk ved tumoral transformation: tab af ordentlig organisation. Et andet bemærkelsesværdigt kendetegn ved transformerede celler er deres evne til at vokse uden fastgørelse til andre celler og til den ekstracellulære matrix, som kan evalueres med forankringsanalysen.
Detaljerede eksperimentelle procedurer til vurdering af cellevækst, til at udføre immunfluorescerende mærkning af cellelinjemarkører i 3D-kulturer og til at teste forankringsuafhængig cellevækst i blød agar. Disse metoder er optimeret til Breast Primary Epitelceller (BPEC) på grund af dens relevans i brystkræft; Procedurer kan dog anvendes på andre celletyper efter nogle justeringer.
Introduction
Flere på hinanden følgende begivenheder er nødvendige for neoplasm udvikling. I 2011 beskrev Hanahan og Weinberg 10 kapaciteter, der muliggør transformeret cellers vækst, overlevelse og formidling: den såkaldte “Hallmarks of Cancer”1. Den metode, der er beskrevet her, samler tre forskellige værktøjer til at evaluere in vitro cellulære transformation ved at fokusere på nogle af de tumorceller ‘karakteristiske træk. Disse teknikker vurderer celleprolifererende sats, adfærd celler, når dyrket i 3D og deres evne til at danne kolonier med forankring uafhængighed.
Cellemodeller er afgørende for at teste hypotese in vitro. Forskellige tilgange er blevet udviklet til at generere eksperimentelle modeller for cellulære transformation til undersøgelse af kræft2,3,4. Da brystkræft er den mest almindelige kræftform blandt kvinder på verdensplan og er ansvarlig for ca 15% af kræftdødsfaldblandt kvinder 5, giver egnede cellulære modeller af bryst epitelceller er af allerstørste betydning for yderligere undersøgelse. I denne artikel har vi illustreret potentialet i tre teknikker til at evaluere cellulære transformation ved hjælp af en eksperimentel model af Breast Primary Epithelial Cells (BPECs) transformation oprindeligt beskrevet af Ince og kolleger i 20076 og senere implementeret i vores laboratorium7. Denne eksperimentelle model er baseret på den sekventielle ændring af tre målrettede gener (SV40 Large T og små t antigener heri benævnt Ttag, hTERT, og HRAS) til genomet af ikke-transformerede BPECs. Desuden er den metode, der anvendes til BPECs afledning favoriserer vedligeholdelse af bryst epitelceller med luminal eller myoepithelial markører, hvilket resulterer i en heterogen cellekultur, der bevarer nogle af de mælkekirtlen fysiologiske træk.
I mælkekirtlen, luminal mamma epitelceller, som er ansvarlige for mælkeproduktionen, er placeret i nærheden af lumen, mens myoepithelial celler er bortskaffes omkring lysceller og tage sig af sammentrækning bevægelser fører mælken til brystvorten. Tabet af korrekt organisation mellem disse celle slægter er en funktion af tumoral transformation8, der kan vurderes in vitro efter immunfluorescerende påvisning af særprægede afstamning markører i 3D-celle kulturer. Et andet vigtigt kendetegn ved tumorceller er deres evne til at vokse uden tilknytning til andre celler og til den ekstracellulære matrix1. Når raske celler er tvunget til at vokse i suspension, mekanismer såsom anoikis \ u2012 en type celledød induceret som reaktion på løsrivelse fra den ekstracellulære matrix \u2012 aktiveres9. Unddragelse af celledød er et af de karakteristiske kendetegn ved kræft, og således er transformerede celler i stand til at inaktivere anoikier og overleve på en anker-uafhængig måde. Denne kapacitet kan evalueres in vitro med forankring-uafhængig analyse ved hjælp af blød agar. Endvidere, en iboende træk ved tumoralvæv er deres vedvarende proliferativ signalering kapacitet, som let kan overvåges under in vitro betingelser ved at måle stigningen i cellenummer langs tid, ikke kun i suspension assays, men også ved at overvåge vækstraten for monolayer tilhængere kulturer.
På trods af den bedste model til at teste tumorigenic potentiale er vaccination af tumorceller i murine modeller og evaluering af tumor udvikling in situ, Det er vigtigt at minimere antallet af dyr ansat i eksperimentelle forsøg så meget som muligt. Derfor er det en topprioritet at have passende test til at vurdere transformation in vitro. Her giver vi et sæt værktøjer til at evaluere tumorigenic potentialet i delvist og fuldt transformeret bryst epitelceller, der let kan gennemføres i de fleste af de laboratorier, der arbejder med cellulære transformation modeller.
Protocol
Representative Results
Discussion
De eksperimentelle protokoller, der er beskrevet i dette dokument, giver nyttige værktøjer til at vurdere den onkogen transformation af in vitro-dyrkede celler. Hver teknik evaluerer specifikke aspekter af transformationsprocessen, og derfor skal der lægges særlig vægt på at drage konklusioner af en enkelt analyse. Vækst kurver opbygning er en tilgang, der kræver oplysninger, der allerede er tilgængelige, når dyrke celler til andre formål. Det gør denne teknik billigere og lettere at anvende i forhold til and…
Declarações
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
AG-laboratoriet finansieres af det spanske råd for nuklear sikkerhed. T.A. og A.G. er medlemmer af en forskningsgruppe anerkendt af Generalitat de Catalunya (2017-SGR-503). MT har en kontrakt finansieret af Scientific Foundation Asociación Española Contra el Cáncer [AECC-INVES19022TERR]. G.F. kontrakt er finansieret af et tilskud fra Cellex Foundation.
Materials
| 1 ml Serological Pipettes | Labclinics | PLC91001 | |
| 1.5 ml Eppendorfs | Thermo Fisher Scientific | 3451 | Dark eppendorfs are preferred for MTT long-term storage |
| 10 μl Pipette tips w/o filter | Biologix | 20-0010 | |
| 100 ml glass bottle | With cap, autoclavable | ||
| 1000 μl Pipette tips w/ filter | Labclinics | LAB1000ULFNL | |
| 1000 μl Pipette tips w/o filter | Biologix | 20-1000 | |
| 15 ml Conical tubes | VWR | 525-0400 | |
| 2 ml Serological Pipettes | Labclinics | PLC91002 | |
| 200 μl Pipette tips w/ filter | Labclinics | FTR200-96 | |
| 5 ml Serological Pipettes | Labclinics | PLC91005 | |
| 50 ml Conical Tubes | VWR | 525-0304 | |
| Acetone | PanReac AppliChem | 211007 | Used for 3D structure fixation prior to immunofluorescent labelling |
| Agar | Sigma-Aldrich | A1296 | Used for anchorage assay |
| Anti-Claudin 4 antibody | Abcam | 15104, RRID:AB_301650 | Working dilution 1:100, host: rabbit |
| Anti-Cytokeratin 14 [RCK107] antibody | Abcam | 9220, RRID:AB_307087 | Working dilution 1:100, host: mouse |
| Anti-mouse Cyanine Cy3 antibody | Jackson ImmunoResearch Inc. | 115-165-146, RRID:AB_2338690 | Working dilution 1:500, host: goat |
| Anti-rabbit Alexa Fluor 488 antibody | Thermo Fisher Scientific | A-11034, RRID:AB_2576217 | Working dilution 1:500, host: goat |
| Autoclave | |||
| BioVoxxel Toolbox | RRID:SCR_015825 | ||
| Cell culture 24-well Plate | Labclinics | PLC30024 | Used for 3D cultures in Matrigel. Flat Bottom |
| Cell culture 6-well Plate | Labclinics | PLC30006 | Used for anchorage assay |
| Cell incubator (37 ºC and 5 % CO2) | |||
| Cell Strainers | Fisherbrand | 11587522 | Mesh size: 40 μm |
| CellSense software | Olympus | Used to image acquisition | |
| Centrifuge | |||
| Cholera Toxin from Vibrio cholerae | Sigma-Aldrich | C8052 | Used to supplement cell culture medium |
| Class II Biological Safety Cabinet | Herasafe | HAEREUS HS12 | |
| Confocal inverted Microscope | Leica | TCS SP5 | |
| Cover glasses | Witeg Labortechnik GmbH | 4600122 | 22 X 22 mm, thickness 0.13 – 0.17 mm |
| DAPI | 2-(4-amidinophenyl)-1H -indole-6-carboxamidine | ||
| Fetal Bovine Serum | Biowest | S1810 | Used to inactivate trypsine action |
| Fiji software (ImageJ) | National Institutes of Health | RRID:SCR_002285 | Free download, no license needed |
| Glass Pasteur Pipettes | |||
| Glass slides | Fisherbrand | 11844782 | |
| Goat Serum | Biowest | S2000 | Used for immunofluorescence of 3D structures |
| Heat-Resistant Gloves | Used for agar manipulation after autoclave | ||
| Heater bath (37 ºC) | Used to temper solutions prior to cell subculture | ||
| Heater bath (42 ºC) | Used to keep agar warm | ||
| Heating plate | Used for Matrigel dehydration | ||
| Humid chamber | Used for the incubation of antibodies during immunofluorescence | ||
| Ice | Used during Matrigel manipulation | ||
| Ice-box | |||
| Inverted Optic Microscope | Olympus | IX71 | |
| Matrigel Matrix | Becton Dickinson | 354234 | Store at -20 ºC and keep cold when in use. Referred to as basement membrane matrix |
| Methanol | PanReac AppliChem | 131091 | Used for 3D structure fixation prior to immunofluorescent labelling |
| Micropipette | p1000, p200 and p10 | ||
| Microsoft Office Excel | Microsoft | RRID:SCR_016137 | Used to calculate population doubling and to obtain growth rate equation |
| MilliQ water | Referred to as ultrapure water | ||
| Nail Polish | Used to seal samples after mounting | ||
| Parafilm M | Bemis | PM-999 | Used to cover antibody solution during incubation |
| PBS pH 7.4 (w/o calcium & magnesium) | Gibco | 10010-056 | Sterile. Used for cell subculture |
| PBS tablets | Sigma-Aldrich | P4417 | Dilute in milliQ water. No sterility required. Used for immunofluorescence |
| Pipette Aid | |||
| Primaria T25 flasks | Corning | 353808 | Used for BPEC culture |
| Scepter Automated Cell Counter | Millipore | PHCC20060 | Alternatively, use an haemocytometer |
| Scissors | Used to cut pipette tips and parafilm | ||
| Sterile filters 0.22 μm | Millipore | SLGP033RS | Used to filter MTT solution |
| Thiazolyl Blue Tetrazolium Bromide (MTT) | Sigma-Aldrich | M2128 | Store at -20 ºC |
| Triton X-100 | Sigma-Aldrich | T8787 | Used for immunofluorescence of 3D structures |
| Trypsin-EDTA 10X | Biowest | X0930 | Dilute in PBS to obtain 3X solution |
| Vectashield Antifade Mounting Medium | Vector Laboratories | H-1000 | |
| WIT-P-NC Culture Medium | Stemgent | 00-0051 | Used for primary BPEC culture |
| WIT-T Culture Medium | Stemgent | 00-0047 | Used for transformed BPEC culture |
Referências
- Hanahan, D., Weinberg, R. A. Hallmarks of cancer: the next generation. Cell. 144 (5), 646-674 (2011).
- Stampfer, M. R., Yaswen, P. Culture models of human mammary epithelial cell transformation. Journal of Mammary Gland Biology and Neoplasia. 5 (4), 365-378 (2000).
- Schinzel, A. C., Hahn, W. C. Oncogenic transformation and experimental models of human cancer. Frontiers in Bioscience : A Journal and Virtual Library. 13 (13), 71 (2008).
- Balani, S., Nguyen, L. V., Eaves, C. J. Modeling the process of human tumorigenesis. Nature Communications. 8 (1), 15422 (2017).
- Bray, F., et al. Global cancer statistics 2018: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA: A Cancer Journal for Clinicians. 68 (6), 394-424 (2018).
- Ince, T. A., et al. Transformation of different human breast epithelial cell types leads to distinct tumor phenotypes. Cancer Cell. 12 (2), 160-170 (2007).
- Repullés, J., et al. Radiation-induced malignant transformation of preneoplastic and normal breast primary epithelial cells. Molecular Cancer Research. , 1-13 (2019).
- Weigelt, B., Bissell, M. J. Unraveling the microenvironmental influences on the normal mammary gland and breast cancer. Seminars in Cancer Biology. 18 (5), 311-321 (2008).
- Paoli, P., Giannoni, E., Chiarugi, P. Anoikis molecular pathways and its role in cancer progression. Biochimica et Biophysica Acta. 1833 (12), 3481-3498 (2013).
- Debnath, J., Muthuswamy, S. K., Brugge, J. S. Morphogenesis and oncogenesis of MCF-10A mammary epithelial acini grown in three-dimensional basement membrane cultures. Methods. 30 (3), 256-268 (2003).
- Borowicz, S., et al. The soft agar colony formation assay. Journal of Visualized Experiments. (92), (2014).
- Schindelin, J., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nature Methods. 9 (7), 676-682 (2012).
- Brocher, J. The BioVoxxel Image Processing and Analysis Toolbox. European BioImage Analysis Symposium. 8 (2), 67112 (2015).
- Torquato, S., Truskett, T. M., Debenedetti, P. G. Is random close packing of spheres well defined. Physical Review Letters. 84 (10), 2064-2067 (2000).
- LaBarge, M. A., Garbe, J. C., Stampfer, M. R. Processing of human reduction mammoplasty and mastectomy tissues for cell culture. Journal of Visualized Experiments. (71), (2013).
- Zubeldia-Plazaola, A., et al. Glucocorticoids promote transition of ductal carcinoma in situ to invasive ductal carcinoma by inducing myoepithelial cell apoptosis. Breast Cancer Research. 20 (1), 65 (2018).
