Summary

En ikke-kodende liten RNA-micC bidrar til virulens i ytre membranproteiner i Salmonella enteritidis

Published: January 27, 2021
doi:

Summary

Et λ-Red-mediert rekombinasjonssystem ble brukt til å lage en delesjonsmutant av en liten ikke-kodende RNA-micC.

Abstract

Et ikke-kodende lite RNA (sRNA) er en ny faktor for å regulere genuttrykk på posttranskripsjonsnivå. En slags sRNA MicC, kjent i Escherichia coli og Salmonella Typhimurium, kunne undertrykke uttrykket av ytre membranproteiner. For ytterligere å undersøke reguleringsfunksjonen av micC i Salmonella Enteritidis, klonet vi micC-genet i Salmonella Enteritidis-stammen 50336, og konstruerte deretter mutanten 50336Δ micC ved λ Red-basert rekombinasjonssystem og det komplementerte muterte 50336Δ micCmicC som bærer rekombinant plasmid pBR322 som uttrykker micC. qRT-PCR-resultater viste at transkripsjon av ompD i 50336Δ micC var 1,3 ganger høyere enn i villtypestammen, mens transkripsjonen av ompA og ompC i 50336ΔmicC var 2,2 ganger og 3 ganger høyere enn de i villtypestammen. Disse indikerte at micC undertrykker uttrykket av ompA og ompC. I den følgende studien ble patogeniteten til 50336ΔmicC påvist av både infiserende 6 uker gamle Balb / c-mus og 1 dag gamle kyllinger. Resultatet viste at LD 50 av villtypestammen 50336, mutantene 50336Δ micC og 50336Δ micC/pmicC for 6 uker gamle Balb/c-mus var henholdsvis 12,59 CFU, 5,01 CFU og 19,95 CFU. LD50 av stammene for 1 dag gamle kyllinger var henholdsvis 1,13 x 109 CFU, 1,55 x 10 8 CFU og 2,54 x 108 CFU. Det indikerte at sletting av micC økte virulensen til S. Enteritidis hos mus og kyllinger ved å regulere ekspresjon av ytre membranproteiner.

Introduction

Ikke-kodende små RNA (sRNA) er 40-400 nukleotider i lengde, som vanligvis ikke koder for proteiner, men kan transkriberes uavhengig i bakterielle kromosomer 1,2,3. De fleste sRNA er kodet i de intergeniske regionene (IGRs) mellom genkodende regioner og interagerer med mål-mRNA gjennom baseparingshandlinger, og regulerer målgenuttrykk på posttranskripsjonsnivå 4,5. De spiller viktige reguleringsroller i stoffmetabolisme, ytre membranproteinsyntese, quorumsensing og virulensgenuttrykk5.

MicC er et 109-nukleotid lite RNA-transkript tilstede i Escherichia coli og Salmonella enterica serovar Typhimurium, som kan regulere flere ytre membranproteinuttrykk som OmpC, OmpD, OmpN, Omp35 og Omp36 6,7,8,9. MicC regulerer uttrykket av OmpC ved å hemme ribosombinding til ompC mRNA-lederen in vitro, og det krever Hfq RNA-chaperone for sin funksjon i Escherichia coli6. I Salmonella Typhimurium slår MicC av ompD mRNA via en ≤12-bp RNA duplex i kodingssekvensen (kodon 23-26) og destabiliserer deretter endonukleolytisk mRNA7. Denne reguleringsprosessen er assistert av chaperone protein Hfq10. OmpC er et rikelig ytre membranprotein som ble antatt å være viktig i miljøer der nærings- og toksinkonsentrasjoner var høye, for eksempel i tarmen6. OmpD-porin er det mest tallrike ytre membranproteinet i Salmonella Typhimurium og representerer ca. 1% av totalt celleprotein11. OmpD er involvert i adherens til humane makrofager og tarmepitelceller12. MicC undertrykker også uttrykket til både OmpC- og OmpD-poriner. Det antas at MicC kan regulere virulens. For å utforske nye målgener regulert av MicC og studere virulensreguleringsfunksjonen til micC, klonet vi micC-genet i Salmonella Enteritidis (SE) stammen 50336, og konstruerte deretter mutanten 50336ΔmicC og den komplementerte mutanten 50336ΔmicC / p micC. Nye målgener ble screenet med qRT-PCR. Virulensen av 50336ΔmicC ble påvist av mus og kyllinginfeksjoner.

Protocol

Alle forsøkene ble utført i samsvar med Veiledning for omsorg og bruk av forsøksdyr fra Det nasjonale forskningsrådet. Dyrepleie- og brukskomiteen ved Yangzhou University godkjente alle eksperimenter og prosedyrer som ble brukt på dyrene (SYXK2016-0020). 1. Bakteriestammer, plasmider og kulturforhold Bruk bakteriene og plasmidene listet opp i tabell 1. Dyrkningsbakterier i LB-buljong eller på LB-agarplater ved 37 °C, i nærvær av 50 μg/ml ampicilli…

Representative Results

Konstruksjon av mutanten 50336Δ micC og komplementert stamme 50336Δ micC / p micC micC-genklonresultatet indikerte at dette genet var sammensatt av 109 bp som viste 100% identitet med S. Typhimurium. Basert på sekvensdataene ble delesjonsmutanten 50336ΔmicC og den komplementerte mutanten 50336ΔmicC/pmicC konstruert vellykke…

Discussion

S. Enteritidis er et viktig fakultativt intracellulært patogen som kan infisere unge kyllinger og produserer symptomer fra enteritt til systemisk infeksjon og død17,18. I tillegg forårsaker S. Enteritidis latente infeksjoner hos voksne kyllinger og kroniske bærere forurenser fjærfeprodukter, noe som resulterer i matbårne infeksjoner hos mennesker19. Den patogene mekanismen til S. Enteritidis gjenstår å bl…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne studien ble støttet av tilskudd fra Chinese National Science Foundation (nr. 31972651 og 31101826), Jiangsu High Education Science Foundation (No.14KJB230002), State Key Laboratory of Veterinary Biotechnology (No.SKLVBF201509), Nature Science Foundation Grant of Yangzhou (No.YZ2014019), et prosjekt finansiert av Priority Academic Program Development of Jiangsu Higher Education Institutions (PAPD).

Materials

dextrose Sangon Biotech A610219 for broth preparation
DNA purification kit TIANGEN DP214 for DNA purification
Ex Taq TaKaRa RR01A PCR
KH2PO4 Sinopharm Chemical Reagent 10017608 for broth preparation
K2HPO4 Sinopharm Chemical Reagent 20032116 for broth preparation
L-Arabinose Sangon Biotech A610071 λ-Red recombination
Mini Plasmid Kit TIANGEN DP106 plasmid extraction
NaCl Sinopharm Chemical Reagent 10019308 for broth preparation
(NH4)2SO4 Sinopharm Chemical Reagent 10002917 for broth preparation
PrimeScriptRRT reagent Kit with gDNA Eraser  TaKaRa RR047 qRT-PCR
SYBRR Premix Ex Taq II TaKaRa RR820 qRT-PCR
T4 DNA Ligase NEB M0202 Ligation
TRIzol  Invitrogen 15596018 RNA isolation
Tryptone Oxoid LP0042 for broth preparation
Yeast extract Oxoid LP0021 for broth preparation
centrifuge Eppendorf 5418 centrifugation
Electrophoresis apparatus Bio-Rad 164-5050 Electrophoresis
 Electroporation System Bio-Rad 165-2100 for bacterial transformation
Spectrophotometer BioTek Epoch Absorbance detection
Real-Time PCR system Applied Biosystems 7500 system qRT-PCR

References

  1. Jørgensen, M. G., Pettersen, J. S., Kallipolitis, B. H. sRNA-mediated control in bacteria: An increasing diversity of regulatory mechanisms. Biochimica et Biophysica Acta-Gene Regulatory Mechanisms. 1863 (5), 194504 (2020).
  2. Wagner, E. G. H., Romby, P. Small RNAs in bacteria and archaea: who they are, what they do, and how they do it. Advances In Genetics. 90, 133-208 (2015).
  3. Vogel, J. A rough guide to the non-coding RNA world of Salmonella. Molecular Microbiology. 71 (1), 1-11 (2009).
  4. Dutta, T., Srivastava, S. Small RNA-mediated regulation in bacteria: A growing palette of diverse mechanisms. Gene. 656, 60-72 (2018).
  5. Waters, L. S., Storz, G. Regulatory RNAs in bacteria. Cell. 136 (4), 615-628 (2009).
  6. Chen, S., Zhang, A., Blyn, L. B., Storz, G. MicC, a second small-RNA regulator of Omp protein expression in Escherichia coli. Journal of Bacteriology. 186 (20), 6689-6697 (2004).
  7. Pfeiffer, V., Papenfort, K., Lucchini, S., Hinton, J. C., Vogel, J. Coding sequence targeting by MicC RNA reveals bacterial mRNA silencing downstream of translational initiation. Nature Structural & Molecular Biology. 16 (8), 840-846 (2009).
  8. Dam, S., Pagès, J. M., Masi, M. Dual Regulation of the Small RNA MicC and the Quiescent Porin OmpN in Response to Antibiotic Stress in Escherichia coli. Antibiotics (Basel). 6 (4), 33 (2017).
  9. Hao, M., et al. Porin Deficiency in Carbapenem-Resistant Enterobacter aerogenes Strains. Microbial Drug Resistance. 24 (9), 1277-1283 (2018).
  10. Wroblewska, Z., Olejniczak, M. Hfq assists small RNAs in binding to the coding sequence of ompD mRNA and in rearranging its structure. RNA. 22 (7), 979-994 (2016).
  11. Santiviago, C. A., Toro, C. S., Hidalgo, A. A., Youderian, P., Mora, G. C. Global regulation of the Salmonella enterica serovar typhimurium major porin, OmpD. Journal of Bacteriology. 185 (19), 5901-5905 (2003).
  12. Hara-Kaonga, B., Pistole, T. G. OmpD but not OmpC is involved in adherence of Salmonella enterica serovar typhimurium to human cells. Canadian Journal of Microbiology. 50 (9), 719-727 (2004).
  13. Datsenko, K. A., Wanner, B. L. One-step inactivation of chromosomal genes in Escherichia coli K-12 using PCR products. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 97 (12), 6640-6645 (2000).
  14. Meng, X., et al. The RNA chaperone Hfq regulates expression of fimbrial-related genes and virulence of Salmonella enterica serovar Enteritidis. FEMS Microbiology Letters. 346 (2), 90-96 (2013).
  15. Livak, K. J., Schmittgen, T. D. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2(-Delta Delta C(T)) Method. Methods. 25 (4), 402-408 (2001).
  16. Vander Velden, A. W., Bäumler, A. J., Tsolis, R. M., Heffron, F. Multiple fimbrial adhesins are required for full virulence of Salmonella typhimurium in mice. Infection and Immunity. 66 (6), 2803-2808 (1998).
  17. Prescott, J. F. Salmonella enterica serovar enteritidis in humans and animals: Epidemiology, pathogenesis, and control. Canadian Veterinary Journal La Revue Veterinaire Canadienne. 40 (10), 736 (1999).
  18. Balasubramanian, R., et al. The global burden and epidemiology of invasive non-typhoidal. Hum Vaccin Immunother. 15 (6), 1421-1426 (2019).
  19. De Buck, J., Van Immerseel, F., Haesebrouck, F., Ducatelle, R. Colonization of the chicken reproductive tract and egg contamination by Salmonella. Journal of General and Applied Microbiology. 97 (2), 233-245 (2004).
  20. Padalon-Brauch, G., et al. Small RNAs encoded within genetic islands of Salmonella typhimurium show host-induced expression and role in virulence. Nucleic Acids Research. 36 (6), 1913-1927 (2008).
  21. Santiviago, C. A., et al. Analysis of pools of targeted Salmonella deletion mutants identifies novel genes affecting fitness during competitive infection in mice. PLoS Pathogens. 5 (7), 1000477 (2009).
  22. Gong, H., et al. A Salmonella small non-coding RNA facilitates bacterial invasion and intracellular replication by modulating the expression of virulence factors. PLoS Pathogens. 7 (9), 1002120 (2011).
  23. Hébrard, M., et al. sRNAs and the virulence of Salmonella enterica serovar Typhimurium. RNA Biology. 9 (4), 437-445 (2012).
  24. Vogel, J., Papenfort, K. Small non-coding RNAs and the bacterial outer membrane. Current Opinion in Microbiology. 9 (6), 605-611 (2006).
  25. Papenfort, K., et al. SigmaE-dependent small RNAs of Salmonella respond to membrane stress by accelerating global omp mRNA decay. Molecular Microbiology. 62 (6), 1674-1688 (2006).
  26. Udekwu, K. I., et al. Hfq-dependent regulation of OmpA synthesis is mediated by an antisense RNA. Genes and Development. 19 (19), 2355-2366 (2005).
  27. Papenfort, K., Vogel, J. Multiple target regulation by small noncoding RNAs rewires gene expression at the post-transcriptional level. Research in Microbiology. 160 (4), 278-287 (2009).
  28. Lease, R. A., Cusick, M. E., Belfort, M. Riboregulation in Escherichia coli: DsrA RNA acts by RNA:RNA interactions at multiple loci. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 95 (21), 12456-12461 (1998).
  29. Sharma, C. M., Darfeuille, F., Plantinga, T. H., Vogel, J. A small RNA regulates multiple ABC transporter mRNAs by targeting C/A-rich elements inside and upstream of ribosome-binding sites. Genes and Development. 21 (21), 2804-2817 (2007).
  30. Boisset, S., et al. Staphylococcus aureus RNAIII coordinately represses the synthesis of virulence factors and the transcription regulator Rot by an antisense mechanism. Genes and Development. 21 (11), 1353-1366 (2007).
  31. Massé, E., Vanderpool, C. K., Gottesman, S. Effect of RyhB small RNA on global iron use in Escherichia coli. Journal of Bacteriology. 187 (20), 6962-6971 (2005).
  32. Papenfort, K., Vogel, J. Regulatory RNA in bacterial pathogens. Cell Host & Microbe. 8 (1), 116-127 (2010).
check_url/61808?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Meng, X., Cui, W., Meng, X., Wang, J., Wang, J., Zhu, G. A Non-Coding Small RNA MicC Contributes to Virulence in Outer Membrane Proteins in Salmonella Enteritidis. J. Vis. Exp. (167), e61808, doi:10.3791/61808 (2021).

View Video