Summary

Hurtig samling af multigenkonstruktioner ved hjælp af modulær golden gate-kloning

Published: February 05, 2021
doi:

Summary

Målet med denne protokol er at give en detaljeret, trin-for-trin guide til samling af multi-gen konstruktioner ved hjælp af modulopbygget kloning system baseret på Golden Gate kloning. Den giver også anbefalinger til kritiske skridt for at sikre optimal montage baseret på vores erfaringer.

Abstract

Golden Gate-kloningsmetoden muliggør hurtig samling af flere gener i ethvert brugerdefineret arrangement. Det bruger type IIS-begrænsningsenzymer, der skærer uden for deres genkendelsessteder og skaber et kort udhæng. Dette modulopbyggede kloningssystem (MoClo) bruger en hierarkisk arbejdsgang, hvor forskellige DNA-dele, såsom promotorer, kodningssekvenser (CDS) og terminatorer, først klones til en indgangsvektor. Flere indgangsvektorer samles derefter i transskriberingsenheder. Flere transskriptionsenheder opretter derefter forbindelse til et multi-gen plasmid. Golden Gate kloning strategi er af enorm fordel, fordi det giver ar-mindre, retningsbestemt, og modulopbygget samling i en one-pot reaktion. Den hierarkiske arbejdsgang muliggør typisk facile kloning af en lang række multigenkonstruktioner uden behov for sekventering ud over indgangsvektorer. Brugen af fluorescerende proteinudfald gør det nemt at screene visuelt. Dette arbejde giver en detaljeret, trin-for-trin protokol til samling af multi-gen plasmider ved hjælp af gær modulopbygget kloning (MoClo) kit. Vi viser optimale og suboptimale resultater af multi-gen plasmid samling og giver en guide til screening for kolonier. Denne kloningsstrategi gælder i høj grad for metabolisk gærteknik og andre situationer, hvor multigenplasmidkloning er påkrævet.

Introduction

Syntetisk biologi har til formål at konstruere biologiske systemer med nye funktionaliteter, der er nyttige for farmaceutiske, landbrugs- og kemiske industrier. At samle et stort antal DNA-fragmenter på en høj gennemstrømningshastighed er en grundlæggende teknologi i syntetisk biologi. En sådan kompliceret proces kan opdeles i flere niveauer med faldende kompleksitet, et koncept lånt fra grundlæggende ingeniørvidenskab1,2. I syntetisk biologi samles DNA-fragmenter normalt hierarkisk baseret på funktionalitet: (i) Delniveau: “dele” refererer til DNA-fragmenter med en bestemt funktion, såsom en promotor, en kodningssekvens, en terminator, en oprindelse af replikation; ii) Transskriptionsenheder (TU): en TU består af en promotor, en kodningssekvens og en terminator, der er i stand til at transskribere et enkelt gen iii) Multigenniveau: Et multigenplasmid indeholder flere TU’er, der ofte består af en hel metabolisk vej. Denne hierarkiske samling banebrydende af BioBrick samfund er det grundlæggende koncept for samling af store sæt af DNA’er i syntetisk biologi3.

I det seneste årti4,5,6,7har Golden Gate-kloningsteknikken i høj grad lettet hierarkisk DNA-samling2. Mange andre multi-del kloning metoder, såsom Gibson kloning8, ligation-uafhængig kloning (SLIC)9, uracil excision-baseret kloning (USER)10, ligase cykling reaktion (LCR)11, og in vivo rekombination (DNA Assembler)12,13, er også blevet udviklet hidtil. Men Golden Gate kloning er en ideel DNA-samling metode, fordi det er uafhængig af gen-specifikke sekvenser, så ar-mindre, retningsbestemt, og modulopbygget samling i en one-pot reaktion. Golden Gate kloning drager fordel af type IIS-begrænsningsenzymer, der genkender en ikke-palindromisk sekvens for at skabe forskudte udhæng uden for anerkendelsesstedet2. En ligase slutter sig derefter til de udglødede DNA-fragmenter for at opnå en samling i flere dele. Anvendelse af denne kloningsstrategi på det modulære kloningssystem (MoClo) har gjort det muligt at samle op til 10 DNA-fragmenter med over 90% transformanter screenet, der indeholder den korrekt samlede konstruktion4.

MoClo-systemet tilbyder enorme fordele, der har fremskyndet design-build-testcyklussen for syntetisk biologi. For det første gør de udskiftelige dele det muligt for kombinatorisk kloning hurtigt at teste et stort rum af parametre. For eksempel kræver optimering af en metabolisk vej normalt cykling gennem mange initiativtagere for hvert gen for at afbalancere stien flux. MoClo-systemet kan nemt håndtere sådanne krævende kloningsopgaver. For det andet er man nødt til at sekvensere den del plasmid, men typisk ikke TU eller multi-gen plasmider. I de fleste tilfælde er screening ved koloni PCR eller begrænsning fordøjelse tilstrækkelig til verifikation på TU og multi-gen plasmid niveau. Dette skyldes, at kloning af del plasmid er det eneste skridt, der kræver PCR, som ofte introducerer mutationer. For det tredje er MoClo-systemet ideelt til opbygning af multigenkomplekse metaboliske veje. Endelig, på grund af den universelle udhæng, kan den del plasmids genbruges og deles med hele bioengineering samfund. I øjeblikket MoClo kits er tilgængelige for planter14,15,5,16,17, svampe6,18,19,20,21,22, bakterier7,23,24,25,26,27, og dyr28,29. En multi-kongerige MoClo platform er også blevet indført for nylig30.

For Saccharomyces cerevisiae, Lee et al.6 har udviklet en alsidig MoClo værktøjskasse, en glimrende ressource for gær syntetisk biologi samfund. Dette sæt leveres i et praktisk 96-brønds format og definerer otte typer udskiftelige DNA-dele med en forskelligartet samling af velkaraktererede promotorer, fluorescerende proteiner, terminatorer, peptidmærker, markeringsmarkører, replikations oprindelse og genomredigeringsværktøjer. Denne værktøjskasse gør det muligt at samle op til fem transskriberingsenheder i et multigenplasmid. Disse funktioner er værdifulde for gær metabolisk teknik, hvor delvis eller hele veje er over-udtrykt til at producere målrettede kemikalier. Ved hjælp af dette kit, forskere har optimeret produktionen af geraniol, linalool31, penicillin32, muconic syre33, indigo34, og betalain35 i gær.

Her leverer vi en detaljeret, trin-for-trin protokol til at guide brugen af MoClo værktøjskassen til at generere multi-gen veje til enten episomal eller genomisk udtryk. Gennem omfattende brug af dette sæt har vi fundet ud af, at nøjagtig måling af DNA-koncentrationer er nøglen til at sikre equimolarfordelingen af hver del i Golden Gate-reaktionen. Vi anbefaler også T4 DNA ligase over T7 DNA ligase, fordi førstnævnte fungerer bedre med et større antal udhæng36. Endelig skal alle interne anerkendelsessteder for BsmBI og BsaI fjernes eller tæmmes inden montering. Alternativt kan man overveje at syntetisere dele for at fjerne flere interne websteder og for at opnå samtidig codon-optimering. Vi demonstrerer, hvordan man bruger dette værktøjssæt ved at udtrykke en fem-gen vej til β-caroten og lycopen produktion i S. cerevisiae. Vi viser endvidere, hvordan man slår ADE2-locus ud ved hjælp af genomredigeringsværktøjerne fra dette sæt. Disse farvebaserede eksperimenter blev valgt for nem visualisering. Vi demonstrerer også, hvordan man genererer fusionsproteiner og skaber aminosyremutationer ved hjælp af Golden Gate-kloning.

Protocol

BEMÆRK: Den hierarkiske kloningsprotokol, der tilbydes i dette værktøjssæt, kan opdeles i tre hovedtrin: 1. Kloning af delplasmider; 2. Kloning af transskriptionsenheder 3. Kloning af plasmider med flere gener (figur 1). Denne protokol starter fra primer design og slutter med anvendelser af den klonede multi-gen plasmid. 1. Primer design til kloning af del plasmid (pYTK001): Design de forreste og omvendte primere, der indeholder flankerende nukleotid…

Representative Results

Her resultaterne af fire repliktive multi-gen plasmider til β-caroten (gul) og lycopen (rød) produktion. En integrativ multi-gen plasmid for at forstyrre ADE2 locus blev bygget, hvis kolonier er røde. Kloning af CDS’er i indgangsvektoren (pYTK001)ERG20 blev forstærket fra gær genom og de tre carotenoid gener crtE, crtYB, crtI fra plasmid pLM494<sup class="xre…

Discussion

Den MoClo baseret kloning kit udviklet af Lee et al. giver en glimrende ressource for hurtig samling af en til fem transskription enheder i en multi-gen plasmid enten for replikation eller integration i gær genom. Brugen af dette kit eliminerer den tidskrævende kloning flaskehals, der ofte eksisterer for at udtrykke flere gener i gær.

Vi testede fem forskellige betingelser for fordøjelsen / ligation cyklusser af Golden Gate kloning med T4 DNA ligase. Vi konstaterede, at 30 fordøjelsescykl…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev finansieret af Research Foundation for State University of New York (Award #: 71272) og IMPACT Award of University i Buffalo (Award #: 000077).

Materials

0.5 mm Glass beads RPI research products 9831 For lysing yeast cells
Bacto Agar BD & Company 214010 Component of the yeast complete synthetic medium (CSM)
Bacto Peptone BD& Company 211677 Component of the yeast extract peptone dextrose medium (YPD)
BsaI-HFv2 New England Biolabs R3733S a highly efficient version of BsaI restriction enzyme
Carbenicillin Fisher Bioreagents 4800-94-6 Antibiotic for screening at the transcription unit level
Chloramphenicol Fisher Bioreagents 56-75-7 Antibiotic for screening at the entry vector level
CSM-His Sunrise Sciences 1006-010 Amino acid supplement of the yeast complete synthetic medium (CSM)
Dextrose Fisher Chemical D16-500 Carbon source of the yeast complete synthetic medium (CSM)
Difco Yeast Nitrogen Base w/o Amino Acids BD & Company 291940 Nitrogen source of the yeast complete synthetic medium (CSM)
dNTP mix Promega U1515 dNTPs for PCR
Esp3I New England Biolabs R0734S a highly efficient isoschizomer of BsmBI
Frozen-EZ Yeast Trasformation II Kit Zymo Research T2001 For yeast transformation
Hexanes Fisher Chemical H302-1 For carotenoid extraction from yeast cells
Kanamycin Fisher Bioreagents 25389-94-0 Antibiotic for screening at the multigene plasmid level
LB Agar, Miller Fisher Bioreagents BP1425-2 Lysogenic agar medium for E. coli culturing
LB Broth, Miller Fisher Bioreagents BP1426-2 Lysogenic liquid medium for E. coli culturing
Lycopene Cayman chemicals NC1142173 For lycopene quantification
MoClo YTK Addgene 1000000061 Depositing Lab: John Deuber
Monarch Plasmid Miniprep Kit New England Biolabs T1010L For plasmid purification from E.coli
Nanodrop Spectrophotometer Thermo Scientific ND2000c For measuring accurate DNA concentrations
NotI-HF New England Biolabs R3189S Restriction enzyme for integrative multigene plasmid linearization
Nourseothricin Sulphate Goldbio N-500-100 Antibiotic Selection marker for the pCAS plasmid used in this study
Phusion HF reaction Buffer (5X) New England Biolabs B0518S Buffer for PCR using Phusion polymerase
Phusion High Fidelity DNA Polymerase New England Biolabs M0530S High fidelity polymerase for all the PCR reactions
pLM494 Addgene 100539 Plasmid used to amplify crtI, crtYB and crtE used in this study
Quartz Cuvette Thermo Electron 10050801 For quantifing carotenoids
T4 ligase New England Biolabs M0202S Ligase for Golden Gate cloning
Thermocycler BIO-RAD 1851148 For performing all the PCR and cloning reactions
Tissue Homogenizer Bullet Blender Model: BBX24 For homogenization of yeast cells
UV-Vis Spectrophotometer Thermo Scientific Genesys 150 For quantifing carotenoids
Yeast Extract Fisher Bioreagents BP1422-500 Component of the yeast extract peptone dextrose medium (YPD)
β-carotene Alfa Aesar AAH6010603 For β-carotene quantification

Referências

  1. Endy, D. Foundations for engineering biology. Nature. 438 (7067), 449-453 (2005).
  2. Engler, C., Gruetzner, R., Kandzia, R., Marillonnet, S. Golden gate shuffling: a one-pot DNA shuffling method based on type IIs restriction enzymes. PLoS One. 4 (5), 5553 (2009).
  3. Shetty, R. P., Endy, D., Knight, T. F. Engineering BioBrick vectors from BioBrick parts. Journal of Biological Engineering. 2, 5 (2008).
  4. Peccoud, J., et al. A Modular cloning system for standardized assembly of multigene constructs. PLoS ONE. 6 (2), (2011).
  5. Sarrion-Perdigones, A., et al. GoldenBraid: an iterative cloning system for standardized assembly of reusable genetic modules. PLoS One. 6 (7), 21622 (2011).
  6. Lee, M. E., DeLoache, W. C., Cervantes, B., Dueber, J. E. A Highly characterized yeast toolkit for modular, multipart assembly. ACS Synthetic Biology. 4 (9), 975-986 (2015).
  7. Andreou, A. I., Nakayama, N. Mobius assembly: A versatile Golden-Gate framework towards universal DNA assembly. PLoS One. 13 (1), 0189892 (2018).
  8. Gibson, D. G., et al. Enzymatic assembly of DNA molecules up to several hundred kilobases. Nature Methods. 6 (5), 343-345 (2009).
  9. Li, M. Z., Elledge, S. J. Harnessing homologous recombination in vitro to generate recombinant DNA via SLIC. Nature Methods. 4 (3), 251-256 (2007).
  10. Geu-Flores, F., Nour-Eldin, H. H., Nielsen, M. T., Halkier, B. A. USER fusion: a rapid and efficient method for simultaneous fusion and cloning of multiple PCR products. Nucleic Acids Research. 35 (7), 55 (2007).
  11. de Kok, S., et al. Rapid and reliable DNA assembly via ligase cycling reaction. ACS Synthetic Biology. 3 (2), 97-106 (2014).
  12. Shao, Z., Zhao, H., Zhao, H. DNA assembler, an in vivo genetic method for rapid construction of biochemical pathways. Nucleic Acids Research. 37 (2), 16 (2009).
  13. Gibson, D. G. Synthesis of DNA fragments in yeast by one-step assembly of overlapping oligonucleotides. Nucleic Acids Research. 37 (20), 6984-6990 (2009).
  14. Engler, C., et al. A golden gate modular cloning toolbox for plants. ACS Synthetic Biology. 3 (11), 839-843 (2014).
  15. Gantner, J., et al. Peripheral infrastructure vectors and an extended set of plant parts for the Modular Cloning system. PLoS One. 13 (5), 0197185 (2018).
  16. Ordon, J., et al. Generation of chromosomal deletions in dicotyledonous plants employing a user-friendly genome editing toolkit. Plant Journal. 89 (1), 155-168 (2017).
  17. Sarrion-Perdigones, A., et al. GoldenBraid 2.0: a comprehensive DNA assembly framework for plant synthetic biology. Plant Physiology. 162 (3), 1618-1631 (2013).
  18. Agmon, N., et al. Yeast Golden Gate (yGG) for the efficient assembly of S. cerevisiae transcription units. ACS Synthetic Biology. 4 (7), 853-859 (2015).
  19. Hernanz-Koers, M., et al. FungalBraid: A GoldenBraid-based modular cloning platform for the assembly and exchange of DNA elements tailored to fungal synthetic biology. Fungal Genetics and Biology. 116, 51-61 (2018).
  20. Prielhofer, R., et al. GoldenPiCS: a Golden Gate-derived modular cloning system for applied synthetic biology in the yeast Pichia pastoris. BMC Systems Biology. 11 (1), 123 (2017).
  21. Celinska, E., et al. Gate Assembly system dedicated to complex pathway manipulation in Yarrowia lipolytica. Microbial Biotechnology. 10 (2), 450-455 (2017).
  22. Pullmann, P. K., et al. A modular two yeast species secretion system for the production and preparative application of fungal peroxygenases. bioRxiv. , (2020).
  23. Wu, D., Schandry, N., Lahaye, T. A modular toolbox for Golden-Gate-based plasmid assembly streamlines the generation of Ralstonia solanacearum species complex knockout strains and multi-cassette complementation constructs. Molecular Plant Pathology. 19 (6), 1511-1522 (2018).
  24. Moore, S. J., et al. EcoFlex: A multifunctional MoClo kit for E. coli synthetic biology. ACS Synthetic Biology. 5 (10), 1059-1069 (2016).
  25. Iverson, S. V., Haddock, T. L., Beal, J., Densmore, D. M. CIDAR MoClo: Improved MoClo assembly standard and new E. coli part library enable rapid combinatorial design for synthetic and traditional biology. ACS Synthetic Biology. 5 (1), 99-103 (2016).
  26. Vasudevan, R., et al. CyanoGate: A modular cloning suite for engineering cyanobacteria based on the plant MoClo syntax. Plant Physiology. 180 (1), 39-55 (2019).
  27. Leonard, S. P., et al. Genetic Engineering of bee gut microbiome acteria with a Ttoolkit for modular assembly of broad-host-range plasmids. ACS Synthetic Biology. 7 (5), 1279-1290 (2018).
  28. Schwartz, M. L., Jorgensen, E. M. SapTrap, a toolkit for high-throughput CRISPR/Cas9 gene modification in Caenorhabditis elegans. Genética. 202 (4), 1277-1288 (2016).
  29. Martella, A., Matjusaitis, M., Auxillos, J., Pollard, S. M., Cai, Y. EMMA: An extensible mammalian modular assembly toolkit for the rapid design and production of diverse expression vectors. ACS Synthetic Biology. 6 (7), 1380-1392 (2017).
  30. Chiasson, D., et al. A unified multi-kingdom Golden Gate cloning platform. Scientific Reports. 9 (1), 10131 (2019).
  31. Denby, C. M., et al. Industrial brewing yeast engineered for the production of primary flavor determinants in hopped beer. Nature Communications. 9 (1), 965 (2018).
  32. Awan, A. R., et al. Biosynthesis of the antibiotic nonribosomal peptide penicillin in baker’s yeast. Nature Communications. 8, 15202 (2017).
  33. Leavitt, J. M., et al. Biosensor-Enabled Directed evolution to improve muconic acid production in Saccharomyces cerevisiae. Biotechnology Journal. 12 (10), (2017).
  34. Hsu, T. M., et al. Employing a biochemical protecting group for a sustainable indigo dyeing strategy. Nature Chemical Biology. 14 (3), 256-261 (2018).
  35. Grewal, P. S., Modavi, C., Russ, Z. N., Harris, N. C., Dueber, J. E. Bioproduction of a betalain color palette in Saccharomyces cerevisiae. Metabolic Engineering. 45, 180-188 (2018).
  36. Potapov, V., et al. Comprehensive profiling of four base overhang ligation fidelity by T4 DNA ligase and application to DNA assembly. ACS Synthetic Biology. 7 (11), 2665-2674 (2018).
  37. Vazquez-Vilar, M., et al. Software-assisted stacking of gene modules using GoldenBraid 2.0 DNA-assembly framework. Methods in Molecular Biology. 1284, 399-420 (2015).
  38. Pullmann, P., et al. Mutagenesis: An efficient multi-site-saturation mutagenesis approach by Golden Gate cloning with automated primer design. Scientific Reports. 9 (1), 10932 (2019).
  39. Engler, C., Sylvestre, M., Valla, S., Lale, R. . DNA Cloning and Assembly Methods. 1116, 119-131 (2014).
  40. Liu, H., Naismith, J. H. An efficient one-step site-directed deletion, insertion, single and multiple-site plasmid mutagenesis protocol. BMC Biotechnology. 8, 91 (2008).
  41. Chen, X., Zaro, J. L., Shen, W. C. Fusion protein linkers: property, design and functionality. Advanced Drug Delivery Reviews. 65 (10), 1357-1369 (2013).
  42. Mullis, K., et al. Specific enzymatic amplification of DNA in vitro: the polymerase chain reaction. Cold Spring Harbor Symposia on Quantitative Biology. 51, 263-273 (1986).
  43. Naito, Y., Hino, K., Bono, H., Ui-Tei, K. CRISPRdirect: software for designing CRISPR/Cas guide RNA with reduced off-target sites. Bioinformatics. 31 (7), 1120-1123 (2015).
  44. Labun, K., et al. CHOPCHOP v3: expanding the CRISPR web toolbox beyond genome editing. Nucleic Acids Research. 47 (1), 171-174 (2019).
  45. Ryan, O. W., et al. Selection of chromosomal DNA libraries using a multiplex CRISPR system. Elife. 3, (2014).
  46. Gietz, R. D., Schiestl, R. H. High-efficiency yeast transformation using the LiAc/SS carrier DNA/PEG method. Nature Protocols. 2 (1), 31-34 (2007).
  47. Heintz, N., Gong, S. Small-scale preparations of yeast DNA. Cold Spring Harbor Protocols. 2020 (10), (2020).
  48. Hochrein, L., Mitchell, L. A., Schulz, K., Messerschmidt, K., Mueller-Roeber, B. L-SCRaMbLE as a tool for light-controlled Cre-mediated recombination in yeast. Nature Communications. 9 (1), 1931 (2018).
  49. Verwaal, R., et al. High-level production of beta-carotene in Saccharomyces cerevisiae by successive transformation with carotenogenic genes from Xanthophyllomyces dendrorhous. Applied and Environmental Microbiology. 73 (13), 4342-4350 (2007).
  50. Jones, E., Strathern, J. N., Jones, E. W., Broach, J. R., et al. . The Molecular Biology of the Yeast Saccharomyces: Metabolism and Gene Expression. 11, 181 (1982).
  51. Sehgal, N., et al. CRISPR gene editing in yeast: an experimental protocol for an upper-division undergraduate laboratory course. Biochemistry and Molecular Biology Education. 46 (6), 592-601 (2018).
  52. Stepanenko, O. V., Stepanenko, O. V., Kuznetsova, I. M., Verkhusha, V. V., Turoverov, K. K. Sensitivity of superfolder GFP to ionic agents. PLoS One. 9 (10), 110750 (2014).
check_url/pt/61993?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Mukherjee, M., Caroll, E., Wang, Z. Q. Rapid Assembly of Multi-Gene Constructs using Modular Golden Gate Cloning. J. Vis. Exp. (168), e61993, doi:10.3791/61993 (2021).

View Video