Summary

Mærkning og visualisering af mitokondriegenomudtryksprodukter i Baker's Yeast Saccharomyces cerevisiae

Published: April 11, 2021
doi:

Summary

Bakers gær mitokondrie genom koder otte polypeptider. Målet med den aktuelle protokol er at mærke dem alle og efterfølgende visualisere dem som separate bånd.

Abstract

Mitokondrier er essentielle organeller af eukaryote celler, der er i stand til aerobt åndedræt. De indeholder cirkulært genom og genekspressionsapparat. Et mitokondriegenom af bagergær koder otte proteiner: tre underenheder af cytochrom c oxidase (Cox1p, Cox2p, og Cox3p), tre underenheder af ATP synthase (Atp6p, Atp8p, og Atp9p), en underenhed af ubiquinol-cytochrom c oxidoreductase enzym, cytochrom b (Cytb), og mitokondrie ribosomal protein Var1p. Formålet med den her beskrevne metode er specifikt at mærke disse proteiner med 35S methionin, adskille dem ved elektroforese og visualisere signalerne som diskrete bånd på skærmen. Proceduren omfatter flere trin. For det første dyrkes gærceller i et galactoseholdigt medium, indtil de når den sene logaritmiske vækstfase. Dernæst blokerer cykloheximidbehandling cytoplasmisk oversættelse og tillader kun 35S methionininkorporering i mitokondrieoversættelsesprodukter. Derefter udvindes alle proteiner fra gærceller og adskilles af polyacrylamidgelelektrophoresis. Endelig tørres gelen og inkuberes med opbevaringsfosforskærmen. Skærmen scannes på en fosformager, der afslører båndene. Metoden kan anvendes til at sammenligne biosyntesehastigheden af en enkelt polypeptid i mitokondrier af en mutant gærstamme i forhold til den vilde type, hvilket er nyttigt til at studere mitokondrie genekspressionsdefekter. Denne protokol giver værdifulde oplysninger om oversættelseshastigheden for alle gær mitokondrie mRNA’er. Det kræver dog flere kontroller og yderligere eksperimenter at drage ordentlige konklusioner.

Introduction

Mitokondrier er organellerne dybt involveret i metabolismen af en eukaryote celle. Deres elektronoverførselskæde forsyner cellen med ATP, den vigtigste energiske valuta, der bruges i flere biokemiske veje. Desuden er de involveret i apoptose, fedtsyre og hemesyntese og andre processer. Dysfunktion af mitokondrier er en velkendt kilde til menneskelig sygdom1. Det kan skyldes mutationer i nukleare eller mitokondriegener, der kodper strukturelle eller regulerende komponenter i organellerne2. Baker’s gær Saccharomyces cerevisiae er en fremragende model organisme til at studere mitokondrie genekspression på grund af flere grunde. For det første er deres genom helt sekventeret3, godt kommenteret, og en stor sum data er allerede tilgængelig i litteraturen takket være den lange historie med undersøgelser udført med denne organisme. For det andet er manipulationerne med deres nukleare genom relativt hurtige og lette på grund af deres hurtige vækstrate og yderst effektive homologe rekombinationssystem. For det tredje er bagergær S. cerevisiae en af de få organismer, for hvilke manipulationerne med mitokondriegenomer udvikles. Endelig bagergær er en aerobe-anaerobe fakultetsorganisme, som tillader isolering og undersøgelse af respiratoriske defekte mutanter, da de kan vokse i medier, der indeholder fermenterbare kulstofkilder.

Vi beskriver metoden til at studere mitokondrie genekspression af bagergær S. cerevisiae på oversættelsesniveau4. Hovedprincippet kommer fra flere bemærkninger. For det første koder gæren mitokondriegenom kun otte proteiner: tre underenheder af cytochrom c oxidase (Cox1p, Cox2p, og Cox3p), tre underenheder af ATP synthase (Atp6p, Atp8p, og Atp9p), en underenhed af ubiquinol-cytochrom c oxidoreductase enzym, cytochrom b (Cytb), og mitokondrie ribosomal protein Var1p5. Dette tal er lille, og alle af dem kan adskilles ved elektroforese på en enkelt gel under passende forhold. For det andet tilhører mitokondrie ribosomer den prokaryote klasse snarere end eukaryote6, og derfor er følsomheden over for antibiotika anderledes for gærcytoplasmiske og mitokondrie ribosomer. Det gør det muligt at hæmme cytoplasmisk oversættelse med cykloheximid, hvilket giver betingelserne, når den mærkede aminosyre (35S-methionin) kun er indarbejdet i mitokondrieoversættelsesprodukter. Som følge heraf giver eksperimentet oplysninger om hastigheden af aminosyreinkorporering i mitokondrieproteiner syntetiseret de novo, hvilket afspejler den samlede effektivitet af mitokondrieoversættelse for hvert af de otte produkter.

Protocol

1. Gær kultur forberedelse Streak gær fra den frosne bestand kulturer på friske plader med passende medium. Sæt pladerne i en dyrkningsinkubator ved 30 °C i 24-48 timer.BEMÆRK: Lad de temperaturfølsomme mutanter vokse ved den eftergivende temperatur. Pod gærkulturer i 2 mL YPGal medium (2% peptone, 1% gærekstrakt, 2% galactose) fra den friske stribe i 15 mL rør og inkuber dem natten over agiterende ved 200 rpm ved 30 °C. Den optiske tæthed af kulturen måles ved en bølgelæn…

Representative Results

Efter den ovenfor beskrevne protokol tildelte vi mitokondrieoversættelsesprodukter fra to S. cerevisiaestammer: den vilde type (WT) og en mutantbærende sletning af AIM23-genet (AIM23Δ), kodning af mitokondrieoversættelsesstartfaktor 3 (tabel 1)8. Mitokondrieoversættelsesprodukter blev radioaktivt mærket og adskilt i SDS-PAAG9. Prøverne blev indsamlet hver 2,5 min før mætning for at opbygge et tidsforløb(Figur 1A</s…

Discussion

Undersøgelser af genekspression indtager en central rolle i moderne biovidenskab. Der er udviklet en lang række metoder, der giver indsigt i denne komplekse proces. Her beskrev vi den metode, der giver adgang til proteinbiosyntese i bagergær S. cerevisiae mitokondrier. Det er normalt anvendes til at sammenligne oversættelse effektivitetsgevinster af mRNA’er i mitokondrier af mutant gær stamme versus vilde type for at få adgang til konsekvenserne af den undersøgte mutation. Dette er et af de grundlæggende…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne forskning blev finansieret af den russiske Foundation for Basic Research, tilskud nummer 18-29-07002. P.K. blev støttet af statsopgaven for Den Russiske Føderations ministerium for videnskab og videregående uddannelse, tilskudsnummer AAAA-A16-116021660073-5. M.V.P. blev støttet af Den Russiske Føderations ministerium for videnskab og videregående uddannelse, tilskudsnummer 075-15-2019-1659 (Program of Kurchatov Center of Genome Research). Arbejdet blev delvist udført på det udstyr, der blev købt inden for rammerne af Moskva State University Program of Development. I.C., S.L., og M.V.B. blev desuden støttet af Moskva State University tilskud “Leading Scientific School Noah’s Ark”.

Materials

2-Mercaptoethanol Sigma-Aldrich M3148
Acrylamide Sigma-Aldrich A9099
Ammonium persulfate Sigma-Aldrich A3678
Bacteriological agar Sigma-Aldrich A5306 
Biowave Cell Density Meter CO8000 BIOCHROM US BE 80-3000-45
BRAND standard disposable cuvettes Sigma-Aldrich Z330361
chloroform Sigma-Aldrich 288306 
cycloheximide Sigma-Aldrich C1988 
D-(+)-Galactose Sigma-Aldrich G5388 
D-(+)-Glucose Sigma-Aldrich G7021 
digital block heater Thermo Scientific 88870001
EasyTag L-[35S]-Methionine, 500µCi (18.5MBq), Stabilized Aqueous Solution Perkin Elmer NEG709A500UC
Eppendorf Centrifuge 5425 Thermo Scientific 13-864-457
GE Storage Phosphor Screens Sigma-Aldrich GE29-0171-33
L-methionine Sigma-Aldrich M9625 
methanol Sigma-Aldrich 34860 
N,N,N′,N′-Tetramethylethylenediamine Sigma-Aldrich T9281
N,N′-Methylenebisacrylamide Sigma-Aldrich M7279
New Brunswick Innova 44/44R Shaker Incubator New Brunswick Scientific
Peptone from meat, bacteriological Millipore 91249 
Phenylmethanesulfonyl fluoride Sigma-Aldrich P7626 
Pierce 660nm Protein Assay Kit Thermo Scientific 22662
PowerPac Basic Power Supply Bio-Rad 1645050
Protean II xi cell Bio-Rad 1651802
Puromycin dihydrochloride from Streptomyces alboniger Sigma-Aldrich P8833
Sodium hydroxide Sigma-Aldrich 221465
Storm 865 phosphor imager GE Healthcare
Trizma base Sigma-Aldrich 93352 
Vacuum Heated Gel Dryer Cleaver Scientific CSL-GDVH
Yeast extract Sigma-Aldrich Y1625 

Referências

  1. Taylor, R. W., Turnbull, D. M. Mitochondrial DNA mutations in human disease. Nature Reviews. Genetics. 6 (5), 389-402 (2005).
  2. Park, C. B., Larsson, N. G. Mitochondrial DNA mutations in disease and aging. The Journal of Cell Biology. 193 (5), 809-818 (2011).
  3. Goffeau, A., et al. Life with 6000 genes. Science. 274 (5287), 546-563 (1996).
  4. Westermann, B., Herrmann, J. M., Neupert, W. Analysis of mitochondrial translation products in vivo and in organello in yeast. Methods in Cell Biology. 65, 429-438 (2001).
  5. Foury, F., Roganti, T., Lecrenier, N., Purnelle, B. The complete sequence of the mitochondrial genome of Saccharomyces cerevisiae. FEBS Letters. 440 (3), 325-331 (1998).
  6. Desai, N., Brown, A., Amunts, A., Ramakrishnan, V. The structure of the yeast mitochondrial ribosome. Science. 355 (6324), 528-531 (2017).
  7. Sasarman, F., Shoubridge, E. A. Radioactive labeling of mitochondrial translation products in cultured cells. Methods in Molecular Biology. 837, 207-217 (2012).
  8. Kuzmenko, A., et al. Aim-less translation: loss of Saccharomyces cerevisiae mitochondrial translation initiation factor mIF3/Aim23 leads to unbalanced protein synthesis. Science Reports. 6, 18749 (2016).
  9. Laemmli, U. K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature. 227 (5259), 680-685 (1970).
  10. Schneider, C. A., Rasband, W. S., Eliceiri, K. W. NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis. Nature Methods. 9 (7), 671-675 (2012).
  11. Keil, M., et al. Oxa1-ribosome complexes coordinate the assembly of cytochrome c oxidase in mitochondria. Journal of Biological Chemistry. 287 (41), 34484-34493 (2012).
  12. Singhal, R. K., et al. Coi1 is a novel assembly factor of the yeast complex III-complex IV supercomplex. Molecular Biology of the Cell. 28 (20), 2609-2622 (2017).
  13. Mick, D. U., et al. Coa3 and Cox14 are essential for negative feedback regulation of COX1 translation in mitochondria. The Journal of Cell Biology. 191 (1), 141-154 (2010).
  14. Bietenhader, M., et al. Experimental relocation of the mitochondrial ATP9 gene to the nucleus reveals forces underlying mitochondrial genome evolution. PLoS Genetics. 8 (8), e1002876 (2012).
  15. Couvillion, M. T., Churchman, L. S. Mitochondrial ribosome (mitoribosome) profiling for monitoring mitochondrial translation in vivo. Current Protocols in Molecular Biology. 119, 4.28.1-4.28.25 (2017).
  16. Suhm, T., et al. A novel system to monitor mitochondrial translation in yeast. Microbial Cell. 5 (3), 158-164 (2018).
check_url/pt/62020?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Chicherin, I. V., Levitskii, S. A., Baleva, M. V., Krasheninnikov, I. A., Patrushev, M. V., Kamenski, P. A. Labelling and Visualization of Mitochondrial Genome Expression Products in Baker’s Yeast Saccharomyces cerevisiae. J. Vis. Exp. (170), e62020, doi:10.3791/62020 (2021).

View Video